Az Euphorbia Supina Raf légi részének antioxidáns és bőrfehérítő hatásai. Kivonat

Kapcsolatfelvétel: Audrey Hu Whatsapp/hp: 0086 13880143964 E-mail:audrey.hu@wecistanche.com

Sa-Haeng Kang1, Yong-Deok Jeon2, Ji-Yoon Cha1, Sung-Woo Hwang1, Hoon-Yeon Lee1, Min Park1, Bo-Ri Lee1, Min-Kyoung Shin2, Su-Jeong Kim3, Sang-Min Shin3, Dae- Ki Kim4, Jong-Sik Jin2* és Young-Mi Lee1

Absztrakt

Háttér: Euphorbia supina(ES) antibakteriális, vérzéscsillapító és gyulladáscsökkentő tulajdonságai miatt széles körben alkalmazzák a népi gyógyászatban. A tanulmány célja az volt, hogy értékelje az ES 70 százalékos etanolos kivonatának antioxidáns és bőrfehérítő hatását.

Mód:A légi részei aESA növényeket 70 százalékos etanollal extraháltuk. A B16F10 sejtek életképességét MTT vizsgálattal értékeltük, hogy meghatározzuk a további kísérletekhez szükséges nem toxikus dózisokat. Aztirozinázés a celluláris tirozináz aktivitást ezután enzim-szubsztrát vizsgálattal mértük. Ezenkívül Western blot segítségével mértük a fehérítéssel kapcsolatos fehérjék expresszióját.

Eredmények:Az ES minták antioxidáns aktivitása dózisfüggő módon nőtt, amit a 2,2-difenil-1-1-pikrilhidrazil és 2,2-azino-bisz-(2)-ben található gyökfogó aktivitásuk is megerősít. 3-etilbenztiazolin-6-szulfonsav) vizsgálatok. AzESkivonat jelentősen csökkenttirozinázaktivitás és melanintartalom dózisfüggő módon. Továbbá csökkentette a -melanocyte-stimuláló hormon (MSH) által kiváltott tirozináz és a mikroftalmia-asszociált transzkripciós faktor (MITF) fehérje expresszióját.

Következtetések:Eredményeink azt mutatják, hogy aESkivonat legyengített-MSH-modulálással serkenti a melanin szintézisttirozinázés MITF kifejezés. Ezért az ES-kivonat ígéretes terápiás szer lehet a hiperpigmentáció kezelésére és a bőrfehérítő kozmetikumok összetevőjeként.

Kulcsszavak: Euphorbia supina(ES), DPPH, melanogenezis,Tirozináz, MITF,-MSH

A Cistanche egy természetes tirozináz inhibitor

Háttér

A melanin egy fő pigment, amely szabályozza a bőr és a hajszínt. Ez egy nagy molekulatömegű vegyület, amely széles körben elterjedt állatokban és növényekben [1]. A melanin védi a bőrt az ultraibolya sugárzástól. Feleslegben termelődő pigment azonban felhalmozódik a bőrben, foltokat és szeplőket képezve, és ezek az elváltozások bőrrákot okozhatnak [2]. Ezért a túlzott bőrpigmentáció megelőzése érdekében gátolni kell a melanin termelődését [3]. Melanociták, amelyek az epidermisz bazális rétegében helyezkednek el, és az általuk irányítotttirozináz, melanogenezis útján melanint termelnek, és olyan enzimeket tartalmaznak, mint a tirozinázzal rokon fehérje-1 (TRP-1) és a dopakrometautomeráz (DCT) [4]. A tirozináz katalizálja a 3,4-dihidroxifenilalanin (DOPA) kinon képződését a DOPA-ból és a melanin képződését a DOPA kinonból autooxidációs és enzimatikus reakciókon keresztül [5]. Ezért a melanintermelés összefügg a tirozináz expressziójával és a TRP{7}} aktiválásával. Így megvizsgáltuk, hogy vajonEuphorbia supina(ES) befolyásolhatja a tirozináz és a melanin közötti kapcsolatot.

Tirozinázaktivitása fontos a bőrfehérítő vizsgálatokban [6]. A bőrfehérítő kozmetikumokban különféle vegyi anyagokat és növényi kivonatokat használnak, mint például az aszkojisavat, arbutint, C-vitamint és hidrokinont. Használatuk azonban korlátozott volt olyan mellékhatásaik miatt, mint az elszíneződés, a szag és a citotoxicitás [7]. Ezért a legújabb tanulmányok a bőrfehérítő szerek bőrbarát természetes termékekből történő kifejlesztésére összpontosítanak.

Ebben a tanulmányban,ESbiztonságos, antioxidáns és bőrfehérítő hatású vegyület kifejlesztésére használták. Az ES egynyári lágyszárú növény, és széles körben használják hagyományos gyógynövénykészítményekben. Széles körben elterjedt a mérsékelt és trópusi területeken, például Koreában, Kínában és Japánban. A népi gyógyászatban különféle gyulladásos betegségek ellen alkalmazzák [8, 9]. Az ES olyan összetevőire összpontosító tanulmányokról számoltak be, mint a tanninok [10, 11], a fenolos anyagok és a flavonoidok [12, 13] és a terpenoidok [14, 15]. Ezenkívül beszámoltak az in vitro rákellenes hatásról a mellrák metasztázisában [16] és az ES fenolos keverékeinek antioxidáns aktivitásáról [17]. Azonban az in vitro antioxidáns aktivitás a 2,2-difenil{{13 A }}pikrilhidrazil (DPPH) és a 2,2'-azino-bisz-3-etilbenztiazolin-6-szulfonsav (ABTS) vizsgálatait, valamint az ES kivonatok bőrfehérítő hatását a melanomasejtekre nem ismerték. Ezért a tanulmány célja az ES antioxidáns és bőrfehérítő hatásának in vitro meghatározása volt, valamint új bőrfehérítő szerként való hatékonyságának megerősítése.

Mód

Az ES kivonat elkészítése

ESa Wonkwang gyógyszergyár (Iksan, Jeonbuk, Korea) biztosította. Az ES (250 g) légi részeit (szár és levél) 70%-os etanolban 70 fokon 2 órán át forraltuk. Szűrés után a maradékot a fent leírtak szerint kétszer felforraljuk. Az egyesített szűrleteket 45 °C-on bepároljuk és liofilizáljuk, így 60 g (24%) nyersextraktumot kapunk. A kivonatot a kísérletek előtt 4 fokon tároltuk. Az utalványmintát (JUHES-1660) ​​letétbe helyeztük a Chonbuk National University (Iksan, Korea) Keleti Orvostudományi Erőforrások Tanszékén.

cistanche kivonat

Sejttenyésztés

A B16F10 egér melanoma sejteket (CRL-6475) az American Type Culture Collection-től (ATCC; Manassas, VA, USA) vásároltuk. A sejteket 2 mM glutamint, 10% magzati borjúszérummal (FBS), 100 egység/ml penicillinnel és 100 ug/ml sztreptomicinnel kiegészített Dulbecco's Modified Eagle's Medium (DMEM) táptalajban tenyésztettük, CO2 inkubátorral ellátott tenyészlombikban. 5 százalékos CO2 párásított atmoszféra 37 fokos levegőben. Az összes kísérletet három párhuzamosban végeztük, és háromszor megismételtük a reprodukálhatóság biztosítása érdekében.

Sejtéletképességi vizsgálat

A biztonság értékeléséhez aESMTT vizsgálatot végeztek a sejtek életképességének meghatározására a kivonattal végzett kezelés után. Ez a módszer a 3-(4,5-dimetil-tiazol-2-il)-2,5-difenil-tetrazólium-bromid (MTT) formazán bymitokondriális enzimekké történő redukcióján alapult. NAD(P)H-függő celluláris oxidoreduktáz) életképes sejtekben [18]. Röviden, a B16F10 sejteket (1 × 104 sejt/lyuk) különböző koncentrációjú ES-kivonattal (8, 40, 200 ug/ml) inkubáltuk egy 96-lyukú mikrolemezen 24 órán át. Ezután MTT-oldatot (500 ug/ml) adtunk minden egyes lyukhoz, és a lemezt 37 °C-on 8 órán át inkubáltuk. Az élősejtek által termelt formazán kristályokat 600 μl DMSO-ban oldottuk fel. Az egyes lyukak abszorbanciáját 540 nm-en mértük Versa Max mikrolemez-leolvasóval (Molecular Devices, Sunnyvale, CA, USA).

Antioxidáns tevékenység

A DPPH gyökfogó aktivitását a [19]-ben leírt módszer szerint értékeltük kis módosításokkal. A különböző koncentrációk (8, 40, 200 ug/ml) aESkivonatot vagy 20 ug/ml aszkorbinsavat (az aszpozitív kontrollt használva) 500 μl koncentrációban adtunk 1 ml 0,1 mM DPPH oldathoz. A reakciót sötétben, szobahőmérsékleten (RT) vortexelés után 30 percig hagytuk lejátszódni. Az abszorbanciát 517 nm-en mértük VersaMax mikrolemez-leolvasóval. Kísérletet végeztünk annak igazolására, hogy az ABTS gyökfogó aktivitásához képest milyen mértékben csökkenti a gyökök mennyiségét az elektrondonor hatás [20]. Gyökképződés után 7,4 mMABTS és 2,6 mM kálium-perszulfát oldatát adjuk hozzá, és a kapott elegyet 12 órán át szobahőmérsékleten hagyjuk reagálni; Az ABTS oldatot megmértük, és amikroplate olvasóval mérve 0,70 ± 0,03 (átlag ± SD) abszorbanciát mutatott. Az ES kivonatot (100 μL) 900 μl ABTS oldathoz adtuk, és 10 percig hagytuk reagálni szobahőmérsékleten. A 200 μl-es oldatkeverék abszorbanciáját 732 nm-en mértük mikrolemez-leolvasóval.

Melanin tartalom mérése

A melanintartalmat a korábban leírt protokoll kisebb módosítása után mértük [21]. A B16F10 melanomasejteket 1 × 105 sejt/lyuk mennyiségben 3 ml táptalajba oltottuk 6-lyukú tenyésztőlemezekre, és egy éjszakán át inkubáltuk, hogy a sejtek megtapadjanak. A sejteket különböző koncentrációknak (8, 40, 200 ug/ml) tették ki.ESkivonat vagy 10 mM arbutin 72 órán keresztül 100 nM -melanocita-stimuláló hormon (-MSH; Sigma-Aldrich, St. Louis, MO, USA) jelenlétében vagy hiányában. A kezelés végén a sejteket PBS-sel mostuk. (pH 7,2) és 300 μl 1 M NaOH-val, amely 10% DMSO-t tartalmazott, lizáltuk 2 órán át 80 °C-on. A 200 μl-es keverék abszorbanciáját 400 nm-en mértük amikrolemez leolvasóval.

A celluláris tirozináz aktivitás meghatározása

Sejtestirozinázaktivitását a Lee és munkatársai által korábban leírt módszer szerint mérték. [22] némi módosítással. A 2 ml DMEM-et tartalmazó hatlyukú lemezeket B16F10 melanomasejtekkel oltottuk be 1 x 105 sejt/lyuk sűrűséggel. Minden egyes lyukat 6 különböző csoportra osztottak az alábbiak szerint; Vehicle: nem kezelt, Kontroll: 100 nM -MSH, ESEE 8: -MSH és ES kivonat (8 ug/mL), ESEE 40: -MSH és ES kivonat (40 ug/ml), ESEE200: -MSH és ES kivonat (200 ug/ml), arbutin:-MSHés arbutin (10 mM). A lemezeket egy éjszakán át nedvesített inkubátorban inkubáltuk 37 °C-on 5% CO2 atmoszférában, hogy lehetővé tegyük a sejtek tapadását. A sejteket ezután 48 órán át 100 nM -MSH hatásának tettük ki, majd növekvő dózisúESA sejteket PBS-sel (pH 6,8) mostuk, majd lízispufferben újraszuszpendáltuk. Ezután a sejteket fagyasztással és felolvasztással feltörtük, és a lizátumot 16, 000 g-vel 20 percig végzett centrifugálással tisztítottuk. A lizátum fehérjetartalmát BCA Protein AssayKit (Thermo Scientific, Vantaa, Finnország) segítségével határoztuk meg. A fehérjeszintek mennyiségi meghatározása után a koncentrációkat úgy állítottuk be, hogy minden minta azonos mennyiségű fehérjét (20 ug) tartalmazzon. Ezeket a lizátumokat ezután egy 2,5 mM L-DOPA-t 0,1 M foszfátpufferben (pH 6,8) tartalmazó lemez lyukaiba adtuk. 37 fokos 1 órás inkubálást követően a különböző lizátumok abszorbanciáját spektrofotométerrel 475 nm-en mértük.TirozinázA fehérje aktivitását a következő képlettel számítottuk ki:

Tirozináz aktivitás ( százalék )=（ODs−ODb）/ Kontroll * 100

ODs: minta abszorbancia értéke

ODb: jármű abszorbancia értéke

A gomba tirozináz aktivitása

A gomba mérésének szubsztrátjaként L-DOPA-t használtunktirozináztevékenység. A kísérletben használt reakciópuffer (összesen 3 ml) 2,8 ml 0,5 mM L-DOPA-t tartalmazott 50 mM Na2HPO4-NaH2PO4 pufferben (pH 6,8) és 100 μl különböző koncentrációjúES.A kevert pufferhez gomba tirozináz vizes oldatát (100 μL) adtuk. Az oldatot (200 μl) azonnal kiértékeltük az optikai abszorbancia lineáris növekedésére 475 nm-en mikrolemez-leolvasóval.

Western blot analízis

A B16F10 melanoma sejteket (1 × 106 sejt/lyuk) 60- mm2-es edényekben tenyésztettük. Ezután a sejteket különböző koncentrációjú (8, 40, 200 ug/ml)ESextraháljuk és 10 mM arbutint 24 órán át. A sejteket ezután 50 mM Tris-HCl-t, pH 7,4-et, 2 mM EGTA-t, 1 mM fenil-metil-szulfonil-fluoridot, 10 mM-glicerofoszfátot, 10 mM-merkapto-etanolt, 1 mM nátrium-ortohovanadátot és 1 mM nátrium-ortohovanadátot tartalmazó pufferben lizáltuk. savas nátriumsó. A lizátumokat (25 ug) 10%-os SDS-poliakrilamid gélelektroforézissel rezolváltuk, majd elektroforetikusan polivinilidén-fluorid membránokra vittük át, és egy éjszakán át blokkoltuk 5%-os sovány tejjel TBST pufferben (20 mM Tris-HCl pH 7,4, 100 mM NaCl, 1% Tween és 0). 20) 4 fokon. Miután a membránokat TBST pufferrel mostuk, 3 órán át inkubáltuk egy primer antitesttel.tirozinázMITF és -aktin (arány 1:1000). Másodlagos antitesttel (1:1000 arány) 1 órán át szobahőmérsékleten végzett inkubálás után a fehérje-antitest komplexeket ECL Western blotting Luminol Reagenssel (Santa Cruz Biotech, CA) tettük láthatóvá. (USA), és a Fluorchem E képanalizátor (Cell Biosciences, CA, USA) segítségével detektáltuk.

GC-MS elemzés

Az etanolos kivonatmintát gyorsvákuumban szárítottuk, és N,O-bisz(trimetil-szilil)-trifluor-acetamiddal (BSTFA) származtattuk (Sigma Aldrich, St. Louis, MO, USA). A GC-MS analízist QP2010gázkromatográf segítségével végeztük tömegspektrométerrel (Shimadzu) 70 eV ionizációs feszültség mellett. A GCanalízist hőmérséklet-programozási módban, Restek oszloppal (0,25 mm, 30 m; XTI-5) ​​végeztük. Az oszlop kezdeti hőmérsékletét 70 °C-ra állítottuk 3 percig, lineárisan 10 °/perc értékkel 300 °C-ra emeltük, majd 5 percig tartjuk. A befecskendezőnyílás hőmérséklete 280 fok volt, a GC/MS interfész 290 fokon tartott. A hélium vivőgáz áramlási sebessége 1,0 ml/perc volt.

Statisztikai analízis

Az adatok a melanin szintézis, citotoxicitás, éstirozinázAz aktivitási vizsgálatot ANOVA-val, majd Dunnett-teszttel értékeltük ki. Az adatok átlag ± SD. Az AP érték < 0,05="" statisztikai="" szignifikanciát="">

Eredmények

Az ES kivonat hatása a B16F10 sejtek életképességére

Az MTT vizsgálatot használtuk a hatás értékeléséreES70 százalékos etanolos kivonat a B16F10 melanoma sejtek életképességére. A sejteket különböző koncentrációjú kivonattal (8, 40, 200 ug/ml) kezeltük 24 órán át, majd elvégeztük az MTT vizsgálatot. Az eredményeket a kontrollhoz viszonyított életképesség százalékában fejezzük ki. Az ES-kivonat nem citotoxikus hatással volt a B16F10 sejtproliferációra (1. ábra). 1000 ug/ml koncentrációnál azonban egyértelmű citotoxicitást figyeltünk meg a B16F10 sejtekben (az adatokat nem mutatjuk be).

Az ES kivonat antioxidáns kapacitása

Az ES kivonat antioxidáns aktivitásának mérésére DPPH és ABTS vizsgálatokat használtunk. Az ES kivonat DPPH gyökfogó aktivitásának mérésére az ES kivonat különböző koncentrációit (8, 40, 200 ug/ml) alkalmaztuk. A DPPH gyökfogó aktivitása aESdózisfüggő módon nőtt a kivonat. A pozitív kontrollként használt aszkorbinsav több mint 50 százalékos DPPH gyökfogó aktivitást mutatott (2a. ábra). Az ABTS plusz 8 és 40 ug/ml ES-kivonat gyökfogó aktivitása szintén szignifikánsan magas volt, ami a pozitív kontrollcsoporthoz hasonló eredményt mutatott. Az ES kivonat 93,05 ± 0,6 százalékos aktivitást mutatott 200 ug/ml-nél, ami majdnem megegyezett az aszkorbinsavéval (2b. ábra).

Az ES kivonat hatása a gomba tirozináz aktivitására, a B16F10 melanintartalomra és az intracelluláris tirozináz aktivitásra

A gátló hatás mérésére aESkivonat gomba tirozináz aktivitását, a tirozináz gátlási vizsgálatot elvégeztük. Az eredmények azt mutatták, hogy az ESextract magas koncentrációban gátolta a gomba tirozináz aktivitását.Tirozinázaktivitása 88,35 ± 1,28 százalék, 7{{10}},81 ± 2,52 százalék és 45,43 ± 0},48 százalék volt 8, 40 és 200 ug utókezeléssel /ml ES-kivonat (3a. ábra). Az ES-kivonat anti-melanogenikus aktivitásának vizsgálatához az ES-kivonat melaninra gyakorolt ​​gátló hatását értékeltük B16F10 sejtekben. A B16F10 sejteket 8, 40 és 200 ug/ml koncentrációjú ES-kivonattal vagy 10 mm-es arbutinnal kezeltük, és -MSH-val (10 nM) stimuláltuk 48 órán át. Az ES kivonat jelentős dózisfüggő gátló hatást fejtett ki a melanin szintézisre. A melanin tartalmat a vivőanyag százalékában adtuk meg. A melanintartalom 146,17 ± 0,07 %, 110 ± 0,1 % és 76,95 ± 0,39 % volt 8, 40 és 200 ug/ml ES-kivonattal végzett kezelés után (3b. ábra). Amikor a B16F10 sejteket pozitív kontroll arbutinnal (10 mM) kezeltük, az intracelluláris melanintartalom 84,82 ± 1,28% volt. Az ESextract melanogenezisre gyakorolt ​​gátló hatásának mechanizmusa érdekében megvizsgáltuk az intracelluláris tirozináz aktivitást B16F10 melanoma sejtekben. Ezért a B16F10 sejtek egy másik csoportját különböző koncentrációjú ES-kivonattal (8, 40, 200 ug/ml) vagy arbutinnal (10 mM) kezeltük, és stimuláltuk-MSH(10 nM) 48 órán át. Az ES kivonat szignifikánsan gátolta az -MSH-indukálttirozinázdózisfüggő módon (3c. ábra).

Az ES kivonat gátló hatása a melanogenezissel kapcsolatos fehérjékre a B16F10 sejtekben

Kivizsgálni, hogy vajonESbefolyásolhatta a melanogén fehérje expresszióját, Western blottingot végeztünk B16F10 melanomasejtek ES-vel kezelt és -MSH-val (10 mM) stimulált lizátumával. A tirozináz és MITF expressziós szinteket Westernblot módszerrel értékeltük (4. ábra). Ezt megerősítettüktirozinázés a MITFexpresszió szignifikánsan megnövekedett, amikor a sejteket stimulálták-MSH. Az ES kivonat dózisfüggő módon képes volt elnyomni a -MSHin által stimulált tirozináz és MITF expressziót.

Az ES kémiai összetétele

A kémiai összetétele aESA kivonatot GC-MS-sel elemeztük (5. ábra). Az ES kivonat két fő komponensének, a gallikánsavnak és a protokatekuinsavnak a retenciós ideje 19,810, illetve 18,290 perc volt. A két vegyületet sikeresen kimutatták az ES kivonatban.

Cistanche kivonat: jótékony hatással van a bőrre

Vita

Ebben a tanulmányban azt értékeltük, hogy aESA kivonat bőrfehérítő hatást fejtett ki azáltal, hogy elnyomja a melanintermelést a B16F10 melanomasejtekben. Az ES kivonat gátolta a tirozináz enzim aktivitását, csökkentette a melanin tartalmat és antioxidáns hatást mutatott. A melanintermelést stimulálhatjuk UV ill-MSHAz -MSH megköti az MC1R-t és aktiválja a jelátviteli fehérje-adenilát-ciklázt, hogy fokozza a ciklikus AMP(cAMP) termelést [23]. A cAMP-re reagáló elemkötő fehérjét (CREB) folyamatosan aktiválja a protein kináz A (PKA), a CREB általi aktiválás pedig növeli a MITF fehérje expresszióját és elősegíti atirozináz[24]. Miután a B16F10 sejteket -MSH-val stimuláltuk melanogenezis indukálására, az ES fehérítő hatását melaninquantifikációval igazoltuk. Azt találták, hogy a melanintartalom dózisfüggő módon szuppresszált, és a kísérletben használt legmagasabb koncentrációnál (200 ug/ml) a melanintartalom több mint 50 százalékos elnyomását figyelték meg a csak -MSH-val kezelt csoporthoz képest.

Az ES-t hagyományos gyógynövénykészítményekben használták. Az Euphorbiaceae családjába tartozik, és hagyományosan Kelet-Ázsiában használják gyógyászati ​​célokra. Az ES számos biológiailag aktív anyagot tartalmaz, beleértve a tanninokat, terpenoidokat és polifenolokat [25]. A DPPH egy viszonylag stabil szabad gyök. A DPPH-tesztet széles körben alkalmazzák a növények antioxidáns aktivitásának mérésére, amit az oldat mélylila színének csökkenése jelez olyan redukálószerek hatására, mint az aszkorbinsav, tokoferol, polihidroxi-aromás vegyületek és aromás aminok [26]. Ezenkívül az ABTS gyökfogó aktivitása hasznosabb, mint a DPPH gyökfogó aktivitása a hidrogént adományozó antioxidánsok, a láncbontó antioxidánsok, valamint a hidrofil és hidrofób anyagok antioxidáns képességének mérése szempontjából [27]. Tanulmányok beszámoltak az ES antioxidáns hatásáról. Bőrfehérítő hatását azonban eddig nem értékelték. Ezért ebben a tanulmányban megerősítettük a bőrfehérítő hatásátES(2. ábra). Ellenőriztük a hatásáttirozinázaktivitást, amely meghatározza a melanogenezis kezdeti sebességét (3. ábra). A melanintermelést elősegítő enzimként a tirozinázt széles körben használják célvegyületként olyan új inhibitorok azonosítására, amelyek elnyomhatják a melanin képződését [28]. Annak érdekében, hogy megvizsgáljuk azt a mechanizmust, amellyel az ES gátolja a melanogenezist, meghatároztuk, hogy az ES kivonat gátolhatja-e közvetlenül a tirozináz aktivitását [29]. . Ehhez a vizsgálathoz arbutint használtunk pozitív kontrollként. Bőrfehérítő hatást figyeltünk meg, amely jelentősen magasabb volt, mint az arbutin (10 mM). Az ES kivonat szignifikánsan csökkentette a gomba tirozináz aktivitását 24 órás kezelés után és gátolta a celluláris tirozináz aktivitást. Így megerősítettük, hogy az ESextract kiváló antioxidáns hatást, valamint bőrfehérítő hatást fejt ki.

Tirozináza melanogenezisben részt vevő fő enzim [30]. A MITF transzkripciós faktorok fontos szabályozók a melanociták fejlődésében és differenciálódásában [31]. Az ES kivonat tirozináz és MITFexpresszió szuppressziója dózisfüggő módon nőtt. Ezek az eredmények arra utalnakESelnyomja a MITF transzkripciós faktort, és így gátolja a tirozináz expresszióját.

Megnőtt az érdeklődés a különféle bőrfehérítő és ránctalanító hatású természetes termékek, mint élelmiszer- és kozmetikai alapanyagok iránt. A különféle bőrvédő tulajdonságokkal rendelkező összetevőket, például ránctalanító, hidratáló, fehérítő és gyulladáscsökkentő összetevőket tartalmazó termékek használata megnövekedett a globális szépségápolási piacon [32]. Ebben a tanulmányban azt találtuk, hogy az ESextract erős antioxidáns hatással bír, gátolta a tirozinázt és szabályozta a fehérítéshez kapcsolódó fehérjeexpressziót. Az aktivitások az ES-kivonatban kimutatott gallicsavnak és protokatekuinsavnak tulajdoníthatók[33, 34]. Ezért úgy tűnik, hogy az ES alkalmas természetes kozmetikumok kifejlesztésére bőrfehérítésre a bőr túlzott melanin pigmentációjának hatékony csökkentésére vagy megelőzésére.

a cistanche hatásai: gátoljáktirozináztevékenység a bőr fehérítésére

Következtetések

Összefoglalva,ESkivonat szabályozotttirozinázaktivitások és MITF fehérje expressziója B16F10 sejtekben. Az ESextract antioxidáns aktivitást mutatott a DPPH és az ABTS vizsgálatokban. Ez a tanulmány kísérleti bizonyítékot szolgáltat arra vonatkozóan, hogy az ES hasznos terápiás szer lehet bőrbetegségek kezelésében.

A Cistanche gátolja a tirozináz aktivitást