A szerző hozzájárulásai:A szemle szerkezetét és tartalmát az SB és a YEK alkották meg és alakították ki. Az SB elemezte az adatokat és megírta a kéziratot. Az EEM, MS, HB, NM, LK és YEK közreműködött az írásban – az áttekintésben és a szerkesztésben. A YEK felügyelte a projektet. Minden szerző elolvasta és elfogadta a kézirat közzétett változatát.

A cisztanche glikozidja növelheti az SOD aktivitását a szív- és májszövetekben, és jelentősen csökkentheti az egyes szövetek lipofuscin- és MDA-tartalmát, hatékonyan megkötve a különböző reaktív oxigéngyököket (OH-, H2O₂ stb.) és megvédheti a DNS-károsodást. OH-gyökök által. A Cistanche feniletanoid glikozidok erős szabad gyökfogó képességgel rendelkeznek, nagyobb redukáló képességgel rendelkeznek, mint a C-vitamin, javítják a SOD aktivitását a spermiumszuszpenzióban, csökkentik az MDA-tartalmat, és bizonyos védő hatást fejtenek ki a spermium membrán működésére. A cistanche poliszacharidok fokozhatják a SOD és a GSH-Px aktivitását a D-galaktóz által okozott kísérletileg öregedő egerek eritrocitáiban és tüdőszöveteiben, valamint csökkenthetik a tüdő és a plazma MDA- és kollagéntartalmát, valamint növelhetik az elasztintartalmat. jó eltávolító hatás a DPPH-ra, meghosszabbítja a hipoxia idejét öregedő egerekben, javítja a SOD aktivitását a szérumban, és késlelteti a tüdő fiziológiás degenerációját kísérletileg öregedő egerekben A sejtmorfológiai degenerációval a kísérletek kimutatták, hogy a Cistanche jó antioxidáns képességgel rendelkezik és potenciálisan gyógyszer lehet a bőröregedési betegségek megelőzésére és kezelésére. Ugyanakkor a Cistanche-ban található echinakozid jelentős mértékben képes megkötni a DPPH szabad gyököket, és képes megkötni a reaktív oxigénfajtákat és megakadályozza a szabad gyökök által kiváltott kollagén lebomlását, valamint jó helyreállító hatással van a timin szabad gyökök anionjainak károsodására.

Kattintson a Cistanche tabletta előnyei elemre

【További információ:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Finanszírozás:Ezt a kutatást az OCP Phosboucraâ Foundation finanszírozta, Laâyoune, Marokkó, PR008 számú támogatás.

Az intézményi felülvizsgálati bizottság nyilatkozata:Nem alkalmazható.

Tájékozott beleegyező nyilatkozat:Nem alkalmazható.

Adatelérhetőségi nyilatkozat:Az adatmegosztás nem vonatkozik erre a cikkre, mivel a jelen tanulmány során nem hoztak létre vagy elemeztek adatkészleteket.

Összeférhetetlenség:A szerzők kijelentik, hogy a kutatást olyan kereskedelmi vagy pénzügyi kapcsolatok hiányában végezték, amelyek potenciális összeférhetetlenségnek tekinthetők.

Hivatkozások

1. Növényi sejttechnológia – az Ön partnere a növényi szövetkultúrában. A növényi sejttechnológia alkalmazása a kozmetikai iparban. Online elérhető:

2. Precedenciakutatás. A növényi kivonatok piacának mérete 2030-ra körülbelül 22,49 milliárd USD lesz.

3. Precedenciakutatás. A növényi kivonatok piaca 2030-ra körülbelül 22,49 milliárd USD értékű.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Növényi őssejtek a kozmetikában: jelenlegi trendek és jövőbeli irányok. Future Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Szlavov, A.; Vaszileva, I.; Pavlov, A. A növényi sejtkultúra, mint az aktív kozmetikai összetevők előállítására szolgáló új technológia. Eng. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, CA; García-Lara, S. In vitro növényi szövettenyésztés: Eszközök biológiailag aktív vegyületek előállításához. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Előrelépések a bioaktív vegyületek szaporításának és előállításának növényi biotechnológiai megközelítésében. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Környezeti stresszorok a bőr öregedésére. Mechanistic Insights. Elülső. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. anatómia, bőr (bőr), felhám; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. A bőröregedés molekuláris mechanizmusai és az öregedésgátló megközelítések. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Bioaktív vegyületek a bőr egészségéért: áttekintés. Tápanyagok 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Bőrrezidens veleszületett limfoid sejtek – a bőr veleszületett őrzői és szabályozói. Trends Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Az SLC és ABC transzporterek jelenlegi állapota a bőrben és kapcsolatuk a verejtékanyagcsere-termékekkel és a bőrbetegségekkel. Proteomes 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. A celluláris öregedés és a bőröregedés biomarkerei. Elülső. Közönséges petymeg. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Bőrváltozások az öregedés során. In Biochemistry and Cell Biology of Ageing: II. rész Klinikai tudomány; Springer: Berlin/Heidelberg, Németország, 2019; 91. évfolyam, 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, A.; Richter, K. Oxidatív stressz az öregedő emberi bőrben. Biomolecules 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. A Fernblock megakadályozza a látható és infravörös sugárzás által okozott bőrsejtek károsodását. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Oxidációs események és bőröregedés. Aging Res. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Ultraviolet Photobiology in Dermatology. Ultraibolya fényben az emberi egészségben, betegségekben és környezetben; Springer: Berlin/Heidelberg, Németország, 2017; 996. évfolyam, 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM. A növényi élelmiszerekből származó bioaktív komponensek lehetséges egészségügyi előnyei: áttekintés. Foods 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmitrieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. A Ximenia Americana Var. levélkivonat fitokémiai profilozása. Caffra és antioxidáns, antibakteriális és öregedésgátló hatásai in vitro és Caenorhabditis Elegansban: Kozmeceutikai és bőrgyógyászati ​​megközelítés. oxid. Med. Sejt. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Növényi eredetű bioaktív anyagok 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Növényi és állati alapú antioxidánsok szerkezete, hatékonysága, mechanizmusai és alkalmazásai: áttekintés. Antioxidants 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Polifenolok és antioxidánsok fenntartható előállítása növényi in vitro kultúrákkal. In Bioprocessing of Plant In Vitro Systems; Springer: Berlin/Heidelberg, Németország, 2018; 225–269.

26. Namdeo, A. Növényi sejtek kiváltása másodlagos metabolitok termelésére: áttekintés. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Növényi sejtkultúrák biofeldolgozása célvegyületek tömegtermeléséhez. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, MJ gyümölcs minőség, antioxidáns kapacitás és flavonoid tartalma bio és hagyományosan termesztett áfonya. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Terpenoidok előállítása és tervezése növényi sejtkultúrában. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ A szabályozott hiányos öntözés hatása a különféle paradicsomfajták (Solanum Lycopersicum L.) minőségi paramétereire, karotinoidjaira és fenoltartalmára. Food Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. A karotinoidok bioszintézisének összehasonlító fiziológiai és transzkripciós vizsgálata fehér és vörös grapefruitban (Citrus Paradisi Macf.). Fa Genet. Genomes 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, TC; Show, PL A Haematococcus Pluvialisból származó asztaxantin biofinomítójának legutóbbi fejlesztései. Bioresour. Technol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC A karotinoidok alacsony költségű szubsztrátokkal történő biotechnológiai előállítását a termesztési paraméterek befolyásolják: áttekintés. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Növényi polifenolok: kémiai tulajdonságok, biológiai aktivitások és szintézis. Angew. Chem. Int. Szerk. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. A resveratrol heterológ termelése bakteriális gazdaszervezetekben: jelenlegi állapot és perspektívák. World J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Resveratrol előállítása rekombináns mikroorganizmusokban. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Engineering Yeast for High Level Production of Stilbenoid Antioxidants. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gáspár, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis for Stilbene Production. In Proceedings of the 28th International Conference on Polyphenols 2016, Bécs, Ausztria, 2016. július 11.; DTU Denmark: Kongens Lyngby, Dánia, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gätgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Corynebacterium Glutamicum platformtörzs készítése sztilbének és (2S)-flavanonok előállítására. Metab. Eng. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: A növényi források, szintézis, stabilitás, módosítás és élelmiszer-alkalmazás áttekintése. J. Sci. Élelmiszer Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. A malonil-CoA metabolizmus szabályozása szintetikus antiszensz RNS-eken keresztül a természetes termékek fokozott bioszintéziséért. Metab. Eng. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA A fitoén bioaktivitása és biológiai hozzáférhetősége, valamint a termelésének javítására vonatkozó stratégiák. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, hatékony stratégia bioaktív, magas hozzáadott értékű vegyületek biotechnológiai előállítására növényi sejtgyárakban. Molecules 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. A taxol és a kapcsolódó taxoidok biotechnológiai termelése: jelenlegi helyzet és kilátások. Rákellenes szerek Med. Chem. Korábbi. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. A Coptis Japonica sejtek nagy sűrűségű tenyésztése növeli a berberintermelést. J. Chem. Technol. Biotechnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Podophyllotoxin előállítása Podophyllum Hexandrum növényi sejttenyészeteivel bioreaktorban. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Fényhatás a karotinoidokra A karotenogenezis gének termelése és kifejezése négy genotípusú citruskalluszban. Acta Physiol. Növény. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Betekintés a Centella Asiatica (L.) kalluszkivonat antioxidáns aktivitásába és a bőröregedés elleni potenciálba. Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. pentaciklikus triterpenoidokban gazdag kalluszkivonatának hatása. Ex Spach a normál emberi bőrfibroblasztok életképességéről, morfológiájáról és proliferációjáról. Molecules 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. A transz-fahéjsav gyengíti az UVA által kiváltott fotoöregedést az AP-1 aktiválásának gátlása és a Nrf{10}}közvetített antioxidáns gének indukciója révén az emberi bőr fibroblasztjaiban. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW A citrus Junos kalluszkivonat helyi öregedésgátló összetevőinek előkészítése, jellemzése és biológiai aktivitásai. Molecules 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. A Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos Extract jótékony hatásai az öregedésre és az antioxidánsokra in vitro és in vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Granny Smith almagyümölcs kallusz- és sejtszuszpenziós kultúráinak létrehozása és kivonatuk antitirozináz aktivitása. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM A fitokémiailag standardizált olíva (Olea Europaea L.) levélkivonat fényvédő potenciáljának valorizálása UVA-besugárzott humán bőrfibroblasztokban. Molecules 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. A ginsenoside RG3 új szerepe az öregedésgátló mitokondriumokon keresztül az ultraibolya-besugárzott humán dermális fibroblasztokban. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Piper Cambodianum P. Fourn öregedésgátló hatásai. Kivonat normál humán bőrfibroblaszt sejtekről és egy sebgyógyító modell egereken. Clin. Interv. Öregedés 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Pueraria Candollei Var. A Mirifica szuszpenziós sejtek antioxidáns potenciált ígérnek, ami öregedésgátló aktivitást jelent. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW A Pyrus Pyrifolia Var Cult növényi kalluszkivonat öregedésgátló hatásai. Trop. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. A Tiarella Polyphylla D. Don Callus Extract hatása a fotoöregedésre emberi fitymafibroblasztokban Hs68 sejtekben. Nat. Prod. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Növényi vegetatív részek helyettesítése kalluszsejt-kivonatokkal: Esettanulmány Woodfordia Fruticosa Kurz-val – A bőrápoló készítmények hatékony összetevője. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Az UVB által kiváltott fotoöregedés védelme Fuzhuan-Brick Tea vizes kivonattal MAPK-kon/Nrf-on keresztül2- Az MMP közvetített leszabályozása-1. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ó, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. A Lindera Erythrocarpából származó lucidone bőrvédő hatásai Nrf{10}}közvetített antioxidáns gének indukcióján keresztül UVA-besugárzott emberi bőrkeratinocitákban. J. Funct. Foods 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Jo, Y.; Choi, H.; Lee, JH A Leontopodium Alpinum (Edelweiss) kalluszkultúra kivonat öregedésgátló hatásai a transzkriptom profilozáson keresztül. Genes 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Három rizsfajtából származó kalluszkultúra antioxidáns és öregedésgátló hatásai. Cosmetics 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Az amla (Phyllanthus Emblica L.) gyümölcskivonat lehetséges felhasználása a bőr keratinocitáinak gyulladástól és apoptózistól való védelmére UVB besugárzás után. Antioxidánsok 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, MP; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) mint bioaktív vegyületek forrása: polifenolos profil, citotoxicitás és citoprotektív tulajdonságok különböző sejtvonalakban. Elülső. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Pyrus Pyrifolia kalluszkivonat készítése és jellemzése, valamint a bőrregenerációra gyakorolt ​​hatásainak vizsgálata. Kozmetika 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petruk, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Myricitrin és 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin izolálása a Syzygium Samarangense-ból és a keratinociták oxidatív stresszel szembeni védelmében való részvételük értékelése az Nrf-2 útvonal aktiválásával. Molecules 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. A gyömbér (Zingiber Officinale Roscoe) "Bentong" mikroszaporítása és másodlagos metabolitjainak és antioxidáns aktivitásának értékelése a hagyományosan szaporított növényekkel összehasonlítva. Plants 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Az antocianin pigment 1 (PAP1) termelésének méhen kívüli kifejeződése Javítja a ginzeng (Panax Ginseng CA Meyer) szőrös gyökereinek antioxidáns és anti-melanogén tulajdonságait. Antioxidants 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapa szőrgyökér-kivonatok elősegítik a bőr depigmentációját a melanin termelésének és eloszlásának modulálásával. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petruk, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM malvidin és cianidin származékok Açai Fruitból (Euterpe Oleracea Mart.) Ellensúlyozzák az UV-A által kiváltott oxidatív stresszt az immortalizált fibroblasztokban. J. Photochem. Photobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ. A növényi sejtfalakból származó peptidek és cukrok keveréke fokozza a növények stresszre adott védelmi válaszait, és mérsékli az öregedéssel összefüggő molekuláris változásokat a tenyésztett bőrsejtekben. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Z.; Park, SY; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris enyhíti az UVB sugárzás által kiváltott bőrkárosodást a MAPK/AP-1 gátlásával és a Nrf2-ARE antioxidáns rendszer aktiválásával. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Antioxidáns vegyületeket és fémkelátképző faktorokat tartalmazó paradicsom őssejt-kivonat megvédi a bőrsejteket a nehézfémek által okozott károsodásoktól. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Az Isatis Tinctoria L. Hairy Root Cultures a flavonoid termelékenység és a génexpresszió és a kapcsolódó antioxidáns aktivitás fokozására szolgáló kitozán kiváltása. Ind. Crops Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma képviselő; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Gyógyszerkészítmények másodlagos metabolizmusa a növényben in vitro kultúrákban: stratégiák, megközelítések és korlátok a magasabb hozam elérésére. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Biomassza és bioaktív vegyületek előállítása Polygonum multiflorum járulékos gyökértenyészeteiből Air-Lift bioreaktorok segítségével. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Hairy Root Cultures: A Suitable Biological System for Studying Secondary Metabolic Pathways in Plants. Eng. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Salvia Officinalis L. Szőrös gyökérkultúrák létrehozása rozmarinsav előállítására. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. A Dracocephalum Moldavica szőrös gyökerei: Rozmarinsavtartalom és antioxidáns-potenciál. Acta Physiol. Növény. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Az Ocimum Basilicum elit szőrös gyökerei, mint a rozmarinsav és az antioxidánsok új forrása. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Összehasonlító tanulmány a rozmarinsav tartalmáról a Labiatae család egyes növényeiben. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Növényi szövettenyészetek mint összetevők forrásai bőrápoló alkalmazásokhoz. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. A szőrös gyökérkultúrák sokfélesége: termékeny lehetőségek. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, M.-A.; Póréhagyma.; Kim, K.; Hyun, TK Az antocianin túltermelése a ginzeng szőrös gyökereiben fokozza az antioxidáns, antimikrobiális és elasztáz aktivitást. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Opuntia és más kaktuszok mikroszaporítása hónaljhajtással: Átfogó áttekintés. Elülső. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. A levendulák (Lavandula spp.) in vitro kultúrája és a másodlagos metabolitok termelése. Biotechnol. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. A mikroszaporítás nemcsak a kisbokor áfonya (Vaccinium Angustifolium Ait.) gyümölcsmorfológiájára, hanem gyógyászati ​​tulajdonságaira is hatással van. In Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Kanada, 2013. június 17–19.; 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Szulejmán, M.; Abbas, S.; Wink, M. A Ziziphora Tenuior L. gyógynövény in vitro szaporítása és antioxidáns aktivitásának értékelése. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Soorimuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Antidepresszáns vegyületek fény által indukált termelése Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae) etiolált hajtáskultúráiban. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Salvia Officinalis L. in vitro tenyészeteiből származó kivonatok antioxidáns hatása. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. A fenoltartalom in vitro szaporítása és jellemzése, valamint a Cichorium Pumilum Jacq antioxidáns és antimikrobiális hatása. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. A Caralluma tuberculata in vitro szaporítása és az antioxidáns potenciál értékelése. Biologia (Bratisl.) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Az Alocasia Longiloba Miq mikroszaporítása és a szántóföldön termesztett növények etanolos kivonatainak összehasonlító antioxidáns tulajdonságai, in vitro szaporított és in vitro eredetű kallusz. Plants 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plant Callus: Mechanisms of Induction and Repression. Plant Cell 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, Dedifferenciáció, totipotencia, szomatikus embriogenezis: mit jelentenek ezek a kifejezések a molekuláris növénybiológia korszakában? Elülső. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Plant Cell Culture Technologies: Ígéretes alternatívák nagy értékű másodlagos metabolitok előállítására. Arab. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Növényi sejtkultúra technológia: új összetevőforrás. GONDOZÁS 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Sejtkultúra: Innovatív megközelítés a növényi hatóanyagok előállításához; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Egyesült Királyság, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Biomassza és bioaktív vegyületek előállítása Panax Quinquefolium L. és Glycyrrhiza Uralensis Fisch sejtszuszpenziós tenyészetekből. Biomassza és bioaktív vegyületek előállítása során bioreaktor technológiával; Springer: Berlin/Heidelberg, Németország, 2014; 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Az Onosma Bulbotrichom kalluszkultúra által előállított termelése aktív gyógyszerészeti összetevőként. Irán. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Flavonoidok és poliszacharidok előállítása a Glycyrrhiza Uralensis Fisch különböző sejttenyésztési folyamataiban előidéző ​​hozzáadásával. Acta Physiol. Növény. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW A metil-jazmonát serkenti a 20-hidroxi-ekdizon termelést az „Achyranthes Bidentata” sejtszuszpenziós tenyészetekben. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos sejtkultúra kivonat UV-károsodás elleni védelemért. Cosmet WC 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Újszerű, megtervezett dermis in vitro fotokárosodás-kutatáshoz. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. A verbascoside, egy új antioxidáns aktivitási és stabilitási vizsgálatai dermokozmetikai és gyógyszerészeti helyi készítményekben. Molecules 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis ránctalanító és bőr tonizáló alkalmazásokhoz. Kozmetika. WC. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Gyógynövényi sejtszuszpenziós kultúrák: Gyógyszerészeti alkalmazások és nagy hozamú stratégiák a kívánt másodlagos metabolitokhoz. Crit. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Eszköz az élelmiszerek bioaktív összetételének gazdagításához. Molecules 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. A növényekben a másodlagos metabolitok kiváltásának korai szakaszának molekuláris vonatkozásai. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: Biotechnical Tool for Enhanced Production of Secondary Metabolites in Hairy Root Cultures. Eng. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH A széles spektrumú monokromatikus fények interaktív hatásai a Solanum Xanthocarpum kalluszkultúrák fitokémiai termelésére, antioxidáns és biológiai aktivitásaira. Molecules 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Az Abiotikus stresszek kiváltása fokozza a Cardoon Calli termelékenységét, mint speciális metabolitok előállítására szolgáló biogyárak. Antioxidants 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Gene-to-Metabolite Network for Biosynthesis of Lignans in MeJA-Elicited Isatis Indigotica Hairy Root Cultures. Elülső. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Bioaktív vegyület felhalmozódásának javítása Orostachys Cartilaginous sejttenyészeteiben A. Bor. a szalicilsavval történő kiváltás és a sejtkivonat bioaktív aktivitásra gyakorolt ​​hatása révén. Ind. Crops Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Biomassza és gyógyszerészeti fenolos vegyületek előállítása a datolyapálma (Phoenix Dactylifera L.) sejtszuszpenziós tenyészetében. Molecules 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Durán, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC A flavonoid termelés optimalizálása Thevetia Peruviana növényi sejttenyészetében metil-jazmonáttal és szalicilsavval. Braz. Boltív. Biol. Technol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. A metil-jasmonát kiváltása fokozza a glicirrhizin termelést a Glycyrrhiza Inflata szőrös gyökerek kultúrájában. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Fenolvegyületek felhalmozódásának és antioxidáns aktivitásának serkentése Salvia Tebesana Bunge in vitro tenyészetében nano-TiO2 és metil-jazmonát kiváltó hatására. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairoum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Enhancement of Stilbene Compounds and Anti-inflammatatory Activity of Mehyl Jasmonate and Cyclodextrin Elicited Peanut Hairy Root Culture. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Antioxidáns metabolitok kiváltása musa fajokban in vitro hajtástenyészetben szacharóz, hőmérséklet és jázmonsav felhasználásával. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulation of Callus Growth and Secondary Metabolites in Different Thymus Species and Zataria Multiflora Micropropagated under ZnO Nanopartticles Stress. Biotechnol. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.-R. Ezüst nanorészecskék in vitro kallusztenyészetekben biomassza és másodlagos metabolitok felhalmozódására Caralluma Tuberculatában. Artif. Cells Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Az ezüst nanorészecskék hatása a fenolvegyületek termelésére és a biológiai aktivitásokra a Cucumis anguria szőrös gyökérkultúráiban. Acta Biol. Hung. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yücesan, B.; Gürel, E.; Kausar, R.; Zia, M. CuO nanorészecskék jelentős befolyást gyakorolnak in vitro tenyészetben, a Steviol-glikozidok és a Stevia rebaudiana Bertoni antioxidáns hatásai. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanorészecskék bezárt tokoferollal: szintézis, jellemzés és szabályozott kibocsátás. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Identification of Secondary Metabolites in In Vitro Culture of Ammi Majus Treated with Elicitors. In Proceedings of the IV International Symposium on In vitro Kultúra és Kertészeti Nemesítés, Tampere, Finnország, 2000. július 2–7.; 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Biomassza és iparilag fontos másodlagos metabolitok fenntartható előállítása ezüst- és arany nanorészecskék által kiváltott öngyógyító sejtkultúrákban (Prunella Vulgaris L.). Artif. Cells Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Diterpenoid tanshinonok hatékony előállítása és visszanyerése Salvia Miltiorrhiza szőrös gyökértenyészetekben in situ adszorpcióval, kiváltással és félfolyamatos működéssel. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Biotikus kiváltás szkopolamin előállítására a Datura Metel szőrös gyökérkultúráival. Mol. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. A kiváltás hatásai a szaponin termelésére a Panax Ginseng sejtkultúrájában. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Elicitors hatása a podofillotoxin bioszintézis fokozására Linum Album szuszpenziós kultúráiban. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Különböző Panax ginzeng transzformált gyökérfenotípusok kiváltása a jobb ginzenozid termelés érdekében. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Másodlagos metabolitok előállítása sejt- és szervkultúrákból: Stratégiák és megközelítések a biomassza javítására és a metabolitok felhalmozására. Növényi sejtszövet szervkultusz. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Enhancing the Accumulation of Rosavins in Rhodiola Rosea L. Plants Grown In vitro by Precursor Feeding. Agronomy 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan fokozása Linum album szőrös gyökérkultúráiban koniferaldehid és metiléndioxi-fahéjsav felhasználásával. Felkészülés Biochem. Biotechnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Hyperforin és Adhyperforin bioszintézise aminosav prekurzorokból Hypericum Perforatum hajtáskultúráiban. Phytochemistry 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. A ginzenozidok jobb termelése a ginzeng szuszpenziós kultúráiban a közepes feltöltési stratégiával. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Kávésav-származékok jobb előállítása az Echinacea Purpurea szuszpenziós tenyészeteiben közepes utánpótlási stratégiával. Boltív. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Fokozott taxoltermelés és -kibocsátás Taxus Chinensis sejtszuszpenziós kultúrákban válogatott szerves oldószerekkel és szacharóztápozással. Biotechnol. Prog. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. A biomérnöki tervezés áttekintése és alapelvei: Az omics-technológiák mozgatórugói. In Omics Technologies and Bio-Engineering; Elsevier: Amszterdam, Hollandia, 2018; 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Növényi másodlagos metabolitok előállítása biotechnológiai eszközökkel. Második. Metab.-Sources Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG A metabolikus tervezés alkalmazása a gyógynövények alkaloidtartalmának növelésére. Metab. Eng. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Biotechnology for the Production of Plant Secondary Metabolites. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. A tropánalkaloid metabolizmus szabályozása növényekben és növényi sejtkultúrákban. In Metabolic Engineering of Plant Secondary Metabolism; Springer: Berlin/Heidelberg, Németország, 2000; 253–281.

147. Zhong, J.-J. Növényi sejtkultúra paclitaxel és más taxánok előállítására. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Secondary Metabolites of Medicinal Plants, 4 kötet: Etnofarmakológiai tulajdonságok, biológiai aktivitás és termelési stratégiák; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, USA, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Az immobilizáció hatása a sejtnövekedésre és az alkaloidtartalomra Eurycoma Longifolia Jack sejt-aggregátum kultúrájában. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. A kitozanáz termelés fokozása Gongronella Sp. z oo sejtimmobilizálásával. JG. Braz. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Podofillotoxin előállítása Juniperus Chinensis immobilizált sejttenyészeteivel. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130-1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Tanulmányok néhány fontos másodlagos metabolit gyógynövényekből növényi szövettenyészetekkel történő előállításáról. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Current Approaches toward Production of Secondary Plant Metabolites. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Living Between Two Worlds: Two-Phase Culture Systems for Producing Plant Secondary Metabolites. Crit. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Az ajmalicin-tüskés és a gyanta hozzáadása időzítésének hatása a Catharanthus Roseus sejtkultúrákból származó indol-alkaloidok előállítására. Biotechnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraiah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Fokozott plumbagin termelés a Plumbago Rosea immobilizált sejtjeiben kiváltással és in situ adszorpcióval. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Klvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In Situ, Extraction Strategy Affects Benzophenanthridine Alkaloid Production Fluxes in Suspension Cultures of Eschscholtzia Californica. Biotechnol. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, M.-B.; Zhang, W.; Ruan, C. Jelentősen javult a taxuyunnanin C termelése a Taxus Chinensis sejtszuszpenziós tenyészeteiben az ismételt kiváltás folyamatintenzifikációja, szacharóztáplálás és in situ adszorpció révén. World J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Fokozott antrakinon-termelés adszorbenssel kezelt Morinda Elliptica sejtszuszpenziós kultúrákból a termelési közeg stratégiájában. Process Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Felelősség kizárása/kiadói megjegyzés:Az összes publikációban szereplő állítások, vélemények és adatok kizárólag az egyes szerző(k) és közreműködő(k) sajátjai, nem pedig az MDPI-é és/vagy a szerkesztő(k)é. Az MDPI és/vagy a szerkesztő(k) elhárítanak felelősséget a tartalomban hivatkozott ötletek, módszerek, utasítások vagy termékek által okozott személyi vagy vagyoni sérülésekért.

【További információ:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】