Változások a fenil-etanol-glikozidok szintjében, az antioxidáns aktivitásban és más minőségi jellemzőkben a Cistanche Deserticola szeletekben gőzfeldolgozással

Fang Peng, Jun Chen, Xia Wang, Changqing Xu, Tonguing Liu és Rong Xu

Gyógynövényfejlesztési Intézet, Kínai Orvostudományi Akadémia, Peking Union Medical College; 151 Malianwa Road, Peking 100193, Kína

Ningxia Yongning gyógynövény-ültetvény Cistanche; Yonghuang Road, Yinchuan 750100, Kína.

Kapcsolatba lépni:joanna.jia@wecistanche.com

Absztrakt

Megvizsgáltuk a gőzölési idő hatásátCistanchedeserticola YC MA szeletelését a bioaktív vegyületek szintjének, az antioxidáns aktivitásnak és a súlycsökkenésnek a elemzésével a friss, közvetlenül kemencében szárított és blansírozott mintákkal összehasonlítva. A friss minták rendkívül alacsony fenil-etanol-glikozid-szintet és antioxidáns aktivitást mutattak. Alacsonyabb mértékű súlycsökkenést és nagyobb mennyiségű oldható cukrot, poliszacharidot és híg etanolban oldható kivonatot találtak, amikor a szeleteket gőzölték, nem pedig blansírozták. Az 5 és 7 percig párolt szeletek jelentős mértékben (p<0.05) higher="" amounts="" of="" acteoside,="" isoacteoside,="" and="" 2′-acetylacteoside="" than="" directly="" oven-dried="" samples.="" however,="" soluble="" sugars="" and="" dilute="" ethanol-soluble="" extracts="" decreased="" gradually="" throughout="" the="" steaming="" process.="" the="" concentration="" of="" polysaccharides="" fluctuated="" during="" the="" steaming="" process.="" the="" steaming="" time="" had="" a="" consistent="" effect="" on="" antioxidant="" properties="" evaluated="" by="" oxygen="" radical="" absorbance="" capacity="" (orac),="" 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl="" free="" radical="" scavenging="" activity="" (dpph),="" and="" ferric="" reducing="" antioxidant="" property="" (frap),="" showing="" a="" significant="" increase="" and="" reaching="" 108.62,="" 23.08,="" and="" 11.68="" micromoles="" trolox="" per="" mass="" of="" fresh="" slice="" (μmol="" te/g="" fw),="" respectively.="" the="" present="" results="" suggest="" that="" fresh-cut="" c.="" deserticola="" can="" be="" subjected="" to="" approximately="" 5–7="" min="" of="" steaming="" to="" improve="" phenylethanoid="" glycoside="" levels="" and="" antioxidant="" activity,="" while="" still="" preserving="" the="" amounts="" of="" soluble="" sugars,="" polysaccharides,="" and="" dilute="" ethanol-soluble="" extracts.="" these="" results="" would="" help="" to="" improve="" the="" production="" process="" for="" fresh-cut="" chinese="" medicines="" and="" increase="" the="" understanding="" of="" their="" associated="" health="">

cistanchefehérítő hatás a bőrön, antioxidáns

Kulcsszavak: gőzölés;Cistanchedeserticola; fenil-etanol-glikozid; antioxidáns aktivitás; frissen vágott

CistanchedeserticolaA YC MA-t (Orobanchaceae), közismert nevén "Sivatagi ginzeng", régóta használják tonikként Kínában és Japánban. A húsos szárakat szeletekre vágják különféle betegségek kezelésére, beleértve az impotenciát, a női meddőséget, az ágyékban és a térdben fellépő hidegérzetet, valamint az időskori székrekedést. Az elmúlt években számos tanulmány tárta fel hatékonyságát olyan kísérleti modellekben, amelyek neurológiai rendellenességekkel, különösen az Alzheimer-kórral és a Parkinson-kórral kapcsolatosak.1) Az egészséges élelmiszerek piacán egyre inkább érdeklődik ez a hasznos, természetes étrend-kiegészítő iránt. A zamatos szárból készült bor és tea népszerű egészségügyi élelmiszerek, amelyek enyhítik a fáradtságot, javítják a tanulást és a memóriát. A C. deserticola gazdag forrása a fenil-etanol-glikozidoknak, poliszacharidoknak és oldható cukroknak, amelyek főként antioxidáns, 2,3) neuroprotektív, 4,5) májvédő, 6) immunerősítő, 7–9) hashajtó,10) és antioxidáns hatásúak. -aging11) hatások, amelyek közül az antioxidáns hatást tekintik a többi farmakológiai hatás alapjának. Az echinakozid és az akteozid a minőség-ellenőrzés reprezentatív markereiCistanchesHerbaa Kínai Gyógyszerkönyvben (2015-ös kiadás), uralkodó bőségük, nemzetségspecifikusságuk és jelentős bioaktivitásuk miatt. A híg etanolban oldódó kivonatok meghatározását a minőség-ellenőrzés is tartalmazzaCistanchesHerba. Cisztanozid A, izoakteozid és 2′-acetil-lakteozid szintén bőséges mennyiségben fordul elő C. deserticolában. 12)

A C. deserticola iránti növekvő kereslet nagymértékben ösztönözte termesztését. A C. deserticola egy évelő parazita gyógynövény, amely főként Északnyugat-Kína száraz vagy félszáraz területein nő.13) Közvetlenül a betakarítás után ezeket az erősen cukros, nehéz nyers szárakat meg kell szárítani, hogy megelőzzük a tápanyagtartalom-veszteséget és a romlást. A friss szárak általában 75-85 százalék vizet tartalmaznak, megőrzésük érdekében a vízszintet 10 százalék alá kell csökkenteni. A többségébenCistanche-termelő vidékeken az egész friss szárat szabadföldre helyezik kb. 2 hónapra az előzetes szárítási folyamathoz. A szárított anyagot ezután a gyárakba szállítják, vízbe áztatják, szeletekre vágják, majd újra szárítják. A szeletfeldolgozás késése a rosszul képzett vagy rosszul felszerelt gazdák következménye lehet. A fő probléma azonban a hatékony gyártási folyamatot lehetővé tevő tudás és technológia hiánya.

A magas hőkezelést széles körben alkalmazták zöldségeken és gyümölcsökön, és gátolhatja a mikrobiális növekedést, és meghosszabbíthatja az eltarthatóságot.14–16) Azonban a megjelenés és a tápanyag-összetétel változását is előidézheti. Bizonyos bioaktív komponensek17) és farmakológiai hatások, mint például az antioxidáns aktivitás,18) kimutatták, hogy gőzölést követően megnőnek a gyógynövényekben. Így a C. deserticola gőzölése számos egészségügyi előnnyel járhat. A frissen vágott C. deserticolán a gőzölés vagy blansírozás szintén növeli az echinakozid és az akteozid mennyiségét.19,20) Azonban nem végeztek részletes vizsgálatot a bioaktív vegyületek és az antioxidáns aktivitás változásának összehasonlítására. frissen vágott C. deserticolából a gőzölési folyamat során. A tanulmány célja tehát az volt, hogy megvizsgálja a gőzölési idő (1, 3, 5, 7 perc) hatását a fenil-etanol-glikozidok, poliszacharidok, oldható cukrok, híg etanolban oldódó kivonatok számára, súlycsökkenésre és antioxidáns tulajdonságaira C-ben. deserticola szeletek három másik csoporthoz képest (friss, közvetlenül szárított, blansírozott).

cistanchebőrfehérítő hatásúak ésantioxidáns

Kísérleti

Vegyszerek

Az analitikai minőségű vegyszereket: metanolt, etanolt, D-glükózt, kénsavat, kálium-hidrogén-foszfátot és kálium-dihidrogén-foszfát-monohidrátot a Beijing Chemical Works-tól (Peking, Kína) szereztük be. A hangyasavat és a fenolt a Sinopharm Chemical Reagent Co.-tól (Sanghaj, Kína) vásároltuk. A HPLC minőségű metanolt a Fisher Scientific-től (Toronto, Kanada) vásároltuk. Az ionmentesített vizet Milli-Q rendszerrel (Millipore Corp., Bedford, MA, USA) nyertük. A 2,2-difenil-1-pikrilhidrazilt (DPPH) az Alfa Aesar (Ward Hill, MA, USA) és a 2,2'-azobisz(2-amino-propán)-dihidrokloridot (AAPH) biztosította. ) készítette: Adamas-beta (Sanghaj, Kína). 6-Metoxi-2,5,7,8- te-trametilkromán-2-karbonsav (Trolox), 2,6-di-terc-butil-p-krezol ( A BHT-t és a fluoreszceint (nátriumsót) (FL) a TCI-től (Tokió, Japán), a teljes antioxidáns kapacitást (T-AOC) a Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute-tól (Nanjing, Kína) szereztük be. Az akteozid (111530-200706) és az echinakozid (111670-200503) szabványait a National Institute for Food and Drug Control (Peking, Kína) vásárolta meg. A 2′-acetil-lakteozid, a cisztanozid A és az izoakteozid szabványait Dr. Zhiguo Ma ajándékozta. Az egyes referenciavegyületek tisztaságát 98 százalék felettinek határoztuk meg a HPLC-diódasoros detektor (DAD) által detektált csúcsterület normalizálásával.

Anyagkezelés és fogyás meghatározása

A mintákat 2014 tavaszán gyűjtöttük a Ningxia ültetvényenCistanchesHerba (106.08. É-i fok, 38,24 K-fok, 1124,2 m) Kínában, és egyikünk azonosította (Prof. Jun Chen). Az utalványmintát a Kínai Orvostudományi Akadémia, Peking Union Medical College Gyógynövényfejlesztési Intézetében helyezték letétbe. Körülbelül 3 kg C. deserticola szárát véletlenszerűen összegyűjtöttük és tiszta vízzel leöblítettük. A virágzatrészeket kerámia késsel eltávolítottuk, majd a töveket 3 mm-es szeletekre vágtuk. Minden 10{{30}} g-os szeletet tömegben (W0) mértünk meg ismétlésként. Hét kísérleti kezelést értékeltünk ki kezelésenként három ismétléssel. A pároláshoz négy adag szeletet 93 fokos vízgőzbe tettem 1, 3, 5 vagy 7 percre. A blansírozáshoz egy kezelést 96 fokos vízbe tettünk 5 percre. Ebben a kísérletben a friss és közvetlenül szárított szeletek voltak a másik két kezelés. A kezelt szeleteket lemértük (W1) és kemencében 60 fokon szárítottuk. A szárított szeleteket ezután újra lemértük (W2), őröltük és porítottuk (65 mesh). A mintaporokat az elemzés napjáig vákuumzacskókban tároltuk –20 fokon. A súlycsökkenést a következőképpen számítottuk ki: súlycsökkenés magas hőkezelés után ( százalék )=[(W0−W1)/ W0]×100, súlycsökkenés kemencében történő szárítás után ( százalék )=[(W0 −W2)/W0]× 100, ahol W0 a kezdeti tömeg, W1 és W2 pedig a magas hőkezelés és a kemencében történő szárítás után mért súlyok.

Fenil-etanol-glikozidok és antioxidáns tulajdonságok

Minták kivonása

Egy {{0}}.5-g porított mintát KQ-250DE ultrahanggal (Kunshan Ultrasonic Instrument Co., Jiangsu, Kína) extraháltunk 25 ml 60%-os metanol-vizes oldattal. 40 kHz-en, 200 W-on és 40 fokon 30 percig. Kivonás után a kezelt mintákat 10 percig 4600×g-vel centrifugáltuk (TD5; Hunan Herexi Instrument & Equipment Co., Hunan, Kína). A felülúszót 045-µm-es pórusméretű szűrőn átszűrtük a további elemzésekhez.

Fenil-etanol-glikozidok meghatározása

Az echinakozid, a cisztanozid A, az akteozid, az izoakteozid és a 2′-acetil-lakteozid meghatározását C. deserticola mintákból Ma és mtsai.21) szerint végeztük, némi módosítással. Az analízist 2695–2996 HPLC-készülékkel (Waters Corp., Milford, MA, USA) végeztük, az ultraibolya abszorpciót 330 nm-en ellenőriztük. Az elválasztást Merck Purospher® Star RP-C18 oszlopon (25 0 mm × 4,6 mm, 5 µm) végeztük, 3 0 fokon. Az 1 ml/perc áramlási sebességű mozgófázis A oldószerből (metanol) és B oldószerből ({{30}},1%-os vizes hangyasav, v/v) állt. A gradiens elúció a következőképpen történt: 28 százalék A (0–10 perc), 28–38 százalék A (10–30 perc), 38 százalék A (30–45 perc), és a Az injekció térfogata 10 µl volt. Öt referencia standardot tartalmazó vegyes oldatot készítettünk úgy, hogy a referencia standardokat 60%-os metanolban oldottuk fel 0,20 mg/ml echinakozid, 0,21 mg/ml akteozid, 0,20 mg/ml 2′-acetil-lakteozid, 0,05 mg/ml végső koncentrációig. ml a cisztanozid A, és 0,05 mg/ml az izoakteozid. Az oldatot ezután hét különböző koncentrációra hígítottuk a kalibrációs görbék létrehozásához. A minták fenil-etanoid-glikozidjainak koncentrációját g/kg friss tömegben (FW) fejeztük ki.

Az oxigéngyök abszorpciós kapacitás meghatározása (ORAC)

Az ORAC vizsgálatot Huang és mtsai.22) szerint végeztük, némi módosítással. Pozitív kontrollként a szintetikus antioxidáns BHT-t használtuk. Röviden: 25 µl híg mintakivonatot és 160 µL FL-t kevertünk össze egy 96-lyukú mikrolemezen. Az elegyet 37 °C-on 15 percig inkubáltuk, mielőtt 20 µl AAPH-t adtunk hozzá. A fluoreszcenciát 485 nm-en (gerjesztés) és 520 nm-en (emisszió) követtük 3-perces időközönként 72 percig Fluoroskan Ascent FL (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) segítségével. Referencia standardként Troloxot (2,5–50,0 µmol/L) használtunk, és az eredményeket mikromol Trolox per friss szelet tömegére vonatkoztatva adtuk meg, µmol TE/g FW.

A 2,2-difenil-1-pikrilhidrazil szabadgyökfogó aktivitás (DPPH) meghatározása

A DPPH vizsgálatot Goupy és mtsai.23) szerint végeztük, némi módosítással. Pozitív kontrollként a szintetikus antioxidáns BHT-t használtuk. Röviden, a hígított mintakivonat 1 ml-ét összekevertük 1 ml 0,2 mmol/l DPPH metanolos oldattal. Az oldatokat sötétben, 25 fokon 90 percig tartottuk, majd az abszorbanciát 517 nm-en mértük. Referencia standardként Troloxot (4,0–119,5 µmol/L) használtunk, és az eredményeket mikromol Trolox per friss szelet tömegére vonatkoztatva adtuk meg, µmol TE/g FW.

A vas-redukáló antioxidáns tulajdonság meghatározása (FRAP)

A FRAP vizsgálatot a T-AOC vizsgálati készlettel végeztük a gyártó utasításai szerint.

cistanchebőrfehérítő funkcióval bírnak ésantioxidáns

Oldható cukrok és poliszacharidok

Oldható cukrok mintakészítése

Egy 0.5-g porított mintát 25 ml 80 százalékos etanol-vizes oldattal KQ-250DE ultrahanggal extraháltunk 40 kHz-en, 150 W-on és 80 fokon 30 percig. Az első extrakciós oldatot szűrtük, és egy 50-ml-es mérőlombikba töltöttük. Az üledékeket újra extraháltuk, és a szűrletet az első extrakciós oldattal egyesítettük a 50- ml-es mérőlombikban, és a jelig megtöltöttük 80%-os vizes etanollal. Ezután ebből az oldatból 1 ml-t pipettáztunk egy 10- ml-es üvegcsőbe, hogy az etanolt forrásban lévő vízfürdőben elpárologtassuk. A maradék feloldására 5 ml desztillált vizet adtunk hozzá, majd egy 100- ml-es mérőlombikba töltöttük, és desztillált vízzel jelig megtöltöttük. Végül ebből a hígított oldatból 2 ml-t használtunk fel az oldható cukrok meghatározására.

Poliszacharidok mintaelőállítása

Az oldható cukrok kivonásából származó üledékeket levegőn szárítottuk és 25 ml desztillált vízzel KQ- 250DE ultrahanggal extraháltuk 40 kHz-en, 150 W-on és 80 fokon 30 percig. Az első extrakciós oldatot leszűrtük, és egy 50- ml-es mérőlombikba töltöttük. Az üledékeket újra extraháltuk, és a szűrletet az első extrakciós oldattal egyesítettük a 50- ml-es mérőlombikban, és jelig töltöttük desztillált vízzel. Ezután ennek egy 5- ml-es oldatát egy 50- ml-es mérőlombikba pipettáztuk, és jelig töltöttük desztillált vízzel. Végül ebből a hígított oldatból 2 ml-t használtunk fel a poliszacharidok meghatározására.

Oldható cukrok és poliszacharidok meghatározása

Az oldható cukrok és poliszacharidok meghatározását a Wang és munkatársai által leírt fenol-kénsav módszerrel végeztük.24) 1 ml 6%-os fenolos oldatot adtunk 2 ml mintaoldathoz és jól összekevertük. Ezután gyorsan hozzáadunk 5 ml tömény kénsavat, és 5 percig rázzuk. Az elegyet forrásban lévő vízfürdőbe helyeztük 15 percre, és gyorsan szobahőmérsékletre hűtöttük az ultraibolya detektáláshoz. Az ultraibolya abszorpciót 49{10}} nm-en követtük UV2550 spektrofotométeren (Shimadzu Co., Kyoto, Japán). Vakmintaként desztillált vizet használtunk. A referencia standard vízmentes D-glükózt pontosan lemértük, és desztillált vízben feloldottuk 0,10 mg/ml végkoncentrációig. Ezután 1, 2, 3, 4, 5, 6 és 7 ml törzsoldatot pipettáztunk hét 10- ml-es mérőlombikba, és jelig töltöttük desztillált vízzel. Ezután a hét különböző koncentrációjú standard oldatot használtuk a kalibrációs görbék felállításához.

Híg etanolban oldható kivonatok

A mintákat (4.0 g) pontosan lemértük, hogy meghatározzuk híg etanolban oldódó kivonatukat a Kínai Gyógyszerkönyvben (2015-ös kiadás) leírt módszer szerint.25) A porított mintát lemértük (W3) és extraháltuk 100 ml 50 százalékos etanolos vizes oldatot egy 250- ml-es Erlenmeyer-lombikba, alkalmankénti rázatással 6 órán át, majd 18 órán át állni hagyjuk. Az extrakciós oldatot leszűrjük, a szűrlet 20 ml-ét szárazra pároljuk, 105 °C-on 3 órán át szárítjuk, majd exszikkátorban (szilikagél) 30 percig hűtjük. Végül a mennyiséget pontosan lemértük (W4). A híg etanolban oldható kivonat tartalmát a minta g/kg FW-ben fejeztük ki. A híg etanolban oldható kivonatok kiszámítása a következőképpen történt: híg etanolban oldható kivonatok (g/kg FW)=[(W4×5)/W3]×(100−W5)×10, ahol W3 a kezdeti tömeg , W4 az extrakció után mért tömeg, W5 pedig a kemencében történő szárítás utáni tömegveszteség ( százalék).

Statisztikai analízis

A kezelési csoportok közötti különbségek tisztázása érdekében egyutas ANOVA-t alkalmaztunk az SPSS 13 segítségével.0 (SPSS Inc., Chicago, IL, USA). A különbségeket a Duncan-teszt segítségével értékeltük 0,05 szignifikanciahatárral. Az adatokat átlag±szórásban (SD) (n=3) fejeztük ki.

Eredmények és megbeszélés

Fogyás

A C. deserticola szeletek súlya közvetlenül meghatározza kereskedelmi értékét a gyógynövénypiacon. Amint az 1. táblázatban látható, a C. deserticola súlycsökkenését nagy hőkezelés és kemencében történő szárítás után elemeztük. Alacsonyabb mértékű súlycsökkenést észleltek, ha a szeleteket közvetlenül a sütőben szárították, nem pedig gőzölték vagy blansírozták. A blansírozott mintákban volt a legmagasabb a súlycsökkenés. A párolt minták nagyobb mértékű súlycsökkenést mutattak a hosszabb gőzölési idő mellett. Hét perc gőzölés, a frissen vágott szeletek leghosszabb ideig tartott alakja jelentősen mutatott (p<0.05) higher="" levels="" of="" weight="" loss="" after="" oven-drying="" than="" 5="" min="" of="" steaming.="" since="" phenylethanoid="" glycosides="" had="" been="" detected="" in="" the="" hot="" water="" (data="" not="" shown),="" it="" suggested="" that="" blanching/steaming="" promoted="" more="" water-soluble="" compounds="" to="" be="" dissolved="" in="" the="" hot="" water.="" concerning="" weight="" loss="" after="" high-heat="" exposure,="" samples="" steamed="" for="" 1="" min="" exhibited="" extremely="" low="" weight="" loss.="" therefore,="" 1="" min="" of="" steaming="" was="" too="" short="" to="" make="" the="">Cistancheszövet törékeny, így kevésbé tudott bioaktív vegyületeket (például fenil-etanoid-glikozidokat) felszabadítani az ezt követő extrakciós eljárás során, mint a hosszabb ideig gőzölt minták.

Fenil-etanol-glikozidok

Az echinakozid, a cisztanozid A, az akteozid, az izoakteozid és a 2′-acetil-lakteozid szintje a különböző módszerekkel feldolgozott C. deserticola szeletekben az 1. ábrán látható. A 7 percig párolt minták 2,16 g/kg FW echinakozidot és {{6} },29 g/kg FW cisztanozid A, ami -140-szeres, illetve -6-szoros növekedést jelent a friss szeletekhez képest. A fenil-etanoid glikozidok tartalma meredeken emelkedett a friss minták magas hőkezelése és szárítása során, különösen az akteozid, az izoakteozid és a 2′-acetil-lakteozid, míg a friss mintákban nem volt kimutatható. Ennek egyik lehetséges oka a feniletanoid-glikozidok peroxidáz és -glükozidáz általi lebomlása lehet.26) Ezek az enzimek inaktiválódnának a magas hőmérsékleten és a csökkentett víztartalommal szárított mintákban, ami a fenil-etanoid-glikozidok magas szintjéhez vezetne a kivonatokban. Ezenkívül a fenil-etanoid-glikozidok fenolos vegyületek, amelyek friss növényekben szintetizálódnának a magas hőmérséklet és a nedvességvesztés okozta stressz hatására.27)

A frissen vágott C. deserticola gőzölése és blansírozása egyaránt növeli az echinakozid és az akteozid tartalmát.19,20) A jelen vizsgálatban azonban a blansírozás jelentős (p<0.05) lower="" concentration="" of="" acteoside="" and="" cistanoside="" a="" than="" drying="" directly.="" regarding="" the="" total="" concentration="" of="" the="" five="" phenylethanoid="" glycosides,="" the="" blanched="" samples="" were="" still="" lower="" than="" the="" directly="" oven-dried="" ones="" (1.73,="" 2.35="" g/kg="" fw,="" respectively).="" slices="" steamed="" for="" 5="" and="" 7="" min="" contained="" significantly=""><0.05) higher="" amounts="" of="" acteoside,="" isoacteoside,="" and="" 2′-acetylacteoside="" than="" directly="" oven-dried="" samples.="" in="" general,="" the="" highest="" levels="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" were="" found="" in="" the="" steamed="" samples,="" suggesting="" that="" the="" above-mentioned="" pharmacological="" activities="" produced="" by="" phenylethanoid="" glycosides="" in="" c.="" deserticola="" slices="" may="" be="" enhanced="" by="" steaming="">

Továbbá azt találtuk, hogy a gőzölési idő döntő fontosságú a fenil-etanoid-glikozidok tartalmának meghatározásában. Az echinakozid, a cisztanozid A, az akteozid és az izoakteozid hasonló növekvő tendenciát mutatott a gőzölési folyamat során, amelyek meredeken emelkedtek (1, 3 percnél), és 7 percnél értek el maximális szintjüket. A 3-7 perces gőzölési folyamat során a fent említett négy fenil-etanol-glikozidban nem figyeltünk meg szignifikáns változást. Éppen ellenkezőleg, a 2'-acetil-

az akteozid jelentősen megnőtt (o<0.05) with="" processing="" time.="" notably,="" the="" levels="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" in="" slices="" steamed="" for="" 1="" min="" were="" significantly=""><0.05) lower="" than="" directly="" oven-dried="" slices,="" except="" isoacteoside.="" therefore,="" 1="" min="" steaming="" of="" 3-mm="" fresh-cut="" c.="" deserticola="" was="" not="" long="" enough="" to="" inactivate="" the="" above-mentioned="" enzymes.="" higher="" total="" levels="" of="" the="" five="" phenylethanoid="" glycosides="" were="" observed="" when="" the="" slices="" were="" steamed="" for="" 5="" and="" 7="" min="" (3.20,="" 3.52="" g/kg="" fw,="" respectively)="" rather="" than="" directly="" oven="" drying.="" steaming="" from="" 5="" to="" 7="" min="" more="" effectively="" promoted="" the="" extraction="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" from="" c.="" deserticola,="" leading="" to="" a="" higher="" level="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" in="" the="">

Antioxidáns aktivitás

A szeletek antioxidáns tulajdonságait az ORAC, DPPH és FRAP módszerekkel vizsgálva a 2. ábra mutatja be. Ahogy az várható volt, az ORAC-értékek nagy eltéréseket mutattak a minták között, 13,34 µmol TE/g FW-től friss mintákban. 108,62 µmol TE/g FW-re 7 perces gőzöléssel. A gőzölési folyamat során az ORAC értéke 4-szeresére nőtt 1 és 7 perces gőzölés között. Hasonló tendenciákat figyeltek meg mind a DPPH, mind a FRAP vizsgálatokban, gyors növekedést mutatva a gőzölő kezelés során. Bár a gőzzel kezelt minták kezdetben (1 percnél) alacsonyabb antioxidáns értékkel rendelkeztek, sokkal jobban megőrizték az antioxidáns kapacitást a folyamat során. A blansírozásnál nem tapasztaltunk szignifikáns különbséget az antioxidáns tulajdonságokban a közvetlen kemencében történő szárításhoz képest.

Korábban nem számoltak be az ORAC antioxidáns aktivitásáról sem a C. deserticola nyers szárában, sem szeleteiben. Azonban a C. deserticola nyers szárából származó etanolos kivonatokat a DPPH és FRAP vizsgálatokban mérték,28), amelyek magas antioxidáns aktivitást mutattak, valamivel alacsonyabb, mint a 2(3)-t-butil-4-hidroxi-anizol (BHA) és magasabb, mint a BHT. Ezenkívül a C. deserticolából izolált fenil-etanol-glikozidok erős DPPH-megkötő aktivitást mutattak, valamivel alacsonyabb, mint az aszkorbinsav29) és magasabb, mint a -tokoferol.2) A C. deserticola az izolált tiszta vegyületek antioxidáns tulajdonságai miatt természetes antioxidánsok potenciális forrása lehet. A C. deserticolától származó antioxidánsok magasabbak voltak, mint egyes szintetikus antioxidánsoké. Amint azt a 2. táblázat mutatja, a BHT szignifikánsan mutatott (p<0.05) higher="" antioxidant="" properties="" than="" c.="" deserticola="" slices="" steamed="" for="" 7="" min.="" therefore,="" there="" is="" still="" a="" big="" gap="" between="" c.="" deserticola="" slices="" and="" synthetic="" antioxidants="" of="" equal="">

A DPPH vizsgálat hidrogénatom transzfer (HAT) és egyelektron transzfer (SET) mechanizmust is használ, míg az ORAC és FRAP assay a HAT, illetve SET reakciók elvét követi.30) Jelen tanulmányban az antioxidáns kapacitás általános trendjei. a három vizsgálati módszerrel értékelve nagyon hasonlóak voltak. Így megerősítettük, hogy a C. deserticola szárított szeletei (párolt, közvetlenül kemencében szárított és blansírozott) szignifikáns (p)<0.05) higher="" levels="" of="" antioxidant="" activity="" than="" fresh="" ones.="" furthermore,="" steaming="" for="" 5="" and="" 7="" min="" significantly=""><0.05) enhanced="" levels="" of="" antioxidant="" activity="" compared="" with="" directly="" oven="" drying="" and="" blanching.="" overall,="" our="" results="" showed="" that="" steaming="" of="" fresh-cut="" c.="" deserticola="" slices="" was="" effective="" in="" preserving="" phenylethanoid="" glycoside="" levels="" and="" antioxidant="">

Oldható cukrok, poliszacharidok és híg etanolban oldódó kivonatok

As shown in Fig. 3, levels of soluble sugars and polysaccharides exhibited the following descending order: fresh>directly oven-dried>steamed>blansírozott. A blansírozott szeletek nagyon kevés oldható cukrot, poliszacharidot és híg etanolban oldható kivonatot tartalmaztak, ami jól megfelelt nagy súlycsökkenésüknek. A friss minták szignifikánsan (p<0.05) higher="" content="" of="" soluble="" sugars="" (62.89="" g/kg="" fw)="" and="" polysaccharides="" (17.36="" g/kg="" fw)="" than="" the="" other="" samples,="" suggesting="" that="" heat="" treatment="" (oven="" drying,="" steaming,="" blanching)="" on="" fresh-cut="" samples="" would="" reduce="" the="" extraction="" of="" soluble="" sugars="" and="" polysaccharides.="" heat="" treatment="" inhibited="" the="" hydrolysis="" of="" phenylethanoid="" glycosides="" to="" release="" glucose,="" rhamnose,="" and="" so="" on.="" moreover,="" heat="" treatment,="" used="" as="" abiotic="" stress="" factors="" on="" fresh="" slices,="" gave="" rise="" to="" the="" synthesis="" of="" several="" phenylpropanoid="" compounds="" including="" phenylethanoid="" glycosides.27)="" particularly,="" sugars="" contained="" in="" the="" slices="" were="" dissolved="" in="" the="" hot="" water="" to="" different="" extents="" by="" steaming="" or="" blanching.="" thus,="" it="" is="" not="" surprising="" to="" see="" that="" the="" content="" of="" soluble="" sugars="" decreased="" by="" 23.88%="" in="" steaming="" and="" by="" 60.82%="" in="" blanching,="" while="" the="" content="" of="" polysaccharides="" decreased="" by="" 41.33%="" in="" steaming="" and="" by="" 53.83%="" in="" blanching,="" compared="" with="" fresh="" slices.="" it="" has="" been="" reported="" that="" the="" steaming="" process="" can="" increase="" reducing="" sugars="" and="" acidic="" polysaccharides="" in="" ginseng="" radix="" et="" rhizoma,18)="" and="" mono="" sugars,="" including="" galactose="" and="" glucose,="" in="" rehmanniae="" radix.17)="" however,="" the="" whole="" dried="" crude="" drugs="" studied="" in="" the="" above-mentioned="" literature="" were="" quite="" different="" from="" the="" fresh-cut="" slices="" used="" in="" the="" present="">

A kemencében szárított szeletek tartalmazták a legtöbb híg etanolban oldható kivonatot (89,26 g/kg FW), míg a blansírozott szeletek a legalacsonyabbat (47,60 g/kg FW). Bár az összes feldolgozott C. deserticola szelet megfelelt a Kínai Gyógyszerkönyv (2015-ös kiadás) Cistanches Herba minősítésére vonatkozó szabványnak, a blansírozott szeletek kevesebb egészségügyi előnnyel járnának, mint a közvetlenül kemencében szárított minták a híg etanolban oldódó anyagok súlyos vesztesége miatt. kivonatok. A gőzölési folyamatot tekintve az oldható cukrok trendje nagyon hasonló volt a híg etanolban oldódó kivonatok esetében megfigyelt trendhez, fokozatosan csökkenve, 3-7 percről nem tapasztalt jelentős változást. A poliszacharidok koncentrációja a gőzölés teljes időtartama alatt enyhe növekedéssel ingadozott. Figyelemre méltó, hogy a 7 perces gőzölés a poliszacharidok jó konzerválódását, de az oldható cukrok nagy veszteségét mutatta, míg az 5 perces gőzölés fordítottan mutatott a közvetlen kemencében történő szárításhoz képest.

Következtetés

Első alkalommal számoltunk be a gőzölés bioaktív vegyületekre és antioxidáns aktivitásra gyakorolt ​​hatásáról frissen vágott C. deserticola esetében, és fontos információkkal szolgáltunk a C. deserticola szárak betakarítás utáni kezelésének hatékony folyamatainak kidolgozásához. A friss szeletek mutatták a legrosszabb hatékonyságot a fenil-etanoid-glikozidok és antioxidáns vegyületek extrakciójában, ami azt mutatja, hogy ezek az anyagok hajlamosak az enzimes lebomlásra. Ezzel szemben a gőzölt mintákban volt a legmagasabb a fenil-etanol-glikozidok és az antioxidáns aktivitás. Bár a blansírozás kismértékben növelte az akteozid, izoakteozid és 2'-acetil-lakteozid tartalmát a kemencében történő közvetlen szárításhoz képest, a tömeg, az oldható cukrok, a poliszacharidok és a híg etanolban oldható kivonatok értékei drámaian csökkentek. A gőzölési folyamat során a fenil-etanol-glikozidok és poliszacharidok szintje enyhén emelkedett az idő múlásával. Gőzölés 5 és 7 percig jelentős mértékben (o<0.05) enhanced="" total="" levels="" of="" the="" five="" phenylethanoid="" glycosides="" than="" directly="" oven="" drying.="" however,="" the="" longer="" the="" steaming="" process,="" the="" greater="" the="" decrease="" in="" weight,="" soluble="" sugars,="" and="" dilute="" ethanol-soluble="" extracts.="" no="" significant="" decrease="" in="" soluble="" sugars="" was="" observed="" when="" slices="" were="" steamed="" from="" 1="" to="" 5="" min="" compared="" with="" directly="" oven-dried="" samples.="" the="" steaming="" time="" had="" a="" consistent="" effect="" on="" the="" antioxidant="" properties,="" with="" a="" significant="" increase="" evaluated="" by="" the="" dpph,="" orac,="" and="" frap="" assays.="" it="" was="" concluded="" that="" c.="" deserticola="" slices="" can="" be="" successfully="" treated="" with="" 5="" to="" 7="" min="" of="" steaming="" to="" improve="" the="" phenylethanoid="" glycoside="" levels="" and="" antioxidant="" activity,="" while="" preserving="" the="" amounts="" of="" soluble="" sugars,="" polysaccharides,="" and="" dilute="" ethanol-soluble="">

cistancheegy tirozináz inhibitor, amely képesantioxidáns

Köszönetnyilvánítás

Ezt a munkát a Kínai Nemzeti Természettudományi Alapítvány projektje támogatta az U14032224 és 81102748 sz. támogatással, valamint a Ningxia kulcsfontosságú technológiák kutatási és fejlesztési programja is támogatta az YKX-12 számú támogatással. Nagyon köszönjük Dr. Zhiguo Ma-nak a szabványok bemutatását, valamint Yucheng Changnak és Yuan Liu-nak a növényi anyagok betakarítását és összegyűjtését a Ningxia Cistanches Herba ültetvényen.

Összeférhetetlenség

A szerzők nem nyilatkoznak összeférhetetlenségről.

Kiegészítő anyagok

A cikk online változata kiegészítő anyagokat tartalmaz.

Hivatkozások

1) Wang T., Zhang XY, Xie WY, Am. J. Chin. Med., 40, 1123–1141 (2012).

2) Xiong Q., Kadota S., Tani T., Namba T., Biol. Pharm. Bull., 19, 1580–1585 (1996).

3) Sui ZF, Gu TM, Liu B., Peng SW, Zhao ZL, Li L., Shi DF, Yang RY, szénhidrát. Polym., 85, 75–79 (2011).

4) Luo L., Wu XC, Gao HJ, Lv SZ, Wang JH, Wang XW, Chin. Pharm., 24, 2122–2125 (2013).

5) Luo L., Tuerxun A., Wang XW, Chin. J. New Drugs Clin. Rem., 29, 115–118 (2010).

6) Xiong Q., Hase K., Tezuka Y., Tani T., Namba T., Kadota S., Planta Med., 64, 120–125 (1998).

7) Wang XY, Qi Y., Cai RL, Li XH, Yang MH, Shi Y., Acta Lab. Anim. Sci. Sin., 17, 424–427 (2009).

8) Dong Q., Yao J., Fang JN, Ding K., Carbohydr. Res., 342, 1343–1349 (2007).

9) Wang XY, Qi Y., Cai RL, Li XH, Yang MH, Shi Y., Chin. Pharmacol. Bull., 25, 787–790 (2009).

10) Gao JY, Jiang Y., Dai F., Han ZL, Liu HY, Bao Z., Zhang TM, Tu PF, Mod. Áll. Med., 17, 307–310, 314 (2015).

11) Xue DJ, Zhang M., Wu XH, Chen XD, Zhan YC, Chin. J. Chin. Mater. Med., 20, 687-689, 704 (1995).

12) Lu D., Zhang JY, Yang ZY, Liu HM, Li S., Wu BJ, Ma ZG, J. Sep. Sci., 36, 1945–1952 (2013).

13) Xu R., Chen J., Chen SL, Liu TN, Zhu WC, Xu J., Genet. Re savanyú. Crop Evol., 56, 137–142 (2009).

14) Ornelas-Paz Jde J., Yahia EM, J. Sci. Food Agric., 94, 1078–1083 (2014).

15) Yun Z., Gao HJ, Liu P., Liu SZ, Luo T., Jin S., Xu Q., Xu J., Cheng YJ, Deng XX, BMC Plant Biol., 13, 44 (2013).

16) Gorinstein S., Leontowicz H., Leontowicz M., Namiesnik J., Najman K., Drzewiecki J., Cvikrová M., Martincová O., Katrich E., Trakhtenberg S., J. Agric. Food Chem., 56, 4418–4426 (2008).

17) Chang WT, Choi YH, Van Der Heijden R., Lee MS, Lin MK, Kong HW, Kim HK, Verpoorte R., Hankemeier T., Van Der Greef J., Wang M., Chem. Pharm. Bull., 59, 546–552 (2011).

18) Jin Y., Kim YJ, Jeon JN, Wang C., Min JW, Noh HY, Yang DC, Plant Foods Hum. Nutr., 70, 141–145 (2015).

19) Lei L., Wang XY, CN-szabadalom 200810059282.7 (2009).

20) Tu PF, Qi XB, Jiang Y., Feng J., CN Patent 200410048303.7 (2005).

21) Ma ZG, Yang ZL, Li P., Li CH, J. Liquid Chromatogr. Relat. Technol., 31, 2838–2850 (2008).

22) Huang D., Ou BX, Hampsch-Woodill M., Flanagan JA, Prior RL, J. Agric. Food Chem., 50, 4437-4444 (2002).

23) Goupy P., Hugues M., Boivin P., Amiot MJ, J. Sci. Food Agric., 79, 1625–1634 (1999).

24) Wang LN, Chen J., Yang MH, Chen SL, Shi Y., Qi Y., Liu TN, Chin. Pharm., 18, 1620–1623 (2007).

25) „Kínai Gyógyszerkönyv Bizottság, Kínai Népköztársaság Gyógyszerkönyve, 2015”, IV. kötet, China Medical Science Press, Peking, 2015, p. 202.

26) Tamura Y., Nishibe S., J. Agric. Food Chem., 50, 2514-2518 (2002).

27) Hossain MB, Barry-Ryan C., Martin-Diana AB, Brunton NP, Food Chem., 123, 85–91 (2010).

28) Chen BQ, Liu YX, Kang WY, Fine Chem., 27, 342–345 (2010).

29) Yang JH, Hu JP, Rena K., Du NS, J. Chin. Med. Mater., 32, 1067–1069 (2009).

30) Prior RL, Wu X., Schaich K., J. Agric. Food Chem., 53, 4290-4302 (2005).