Az Aspergillus Oryzae-vel és Aspergillus Cristatus-szal fermentált rizs Koji metabolitprofilozása és öregedésgátló tevékenysége: Összehasonlító vizsgálat Ⅱ

3. Megbeszélés

A rizs különböző részei, mint például a héj, a korpa, az embrió és az endospermium, a felszíntől a belsejéig eltérő kémiai összetételűek (26). Különösen a rizskorpa tartalmaz különfélefenolsavakésflavonoidok, amelyekről ismert, hogy kiállítanakantioxidáns aktivitás.Ezenkívül a rizs sejtfala egy arabinoxilán szerkezetből áll, amely xilózt, arabinózt, ferulasavat és ferulinsavat tartalmaz (27). A rizs sejtfalán általában nehéz áthatolni, és a rizskoji előnye, hogy könnyen behatol a rizsbe. a rizs sejtfalát különböző enzimek, például proteáz és glükozidáz által az oltómikrobákból (24. Ezért a rizs koii megmutatjamagasabb szintű tirozináz gátló aktivitásésantioxidáns tevékenységmint alapanyagai, mert értékes dúsított vegyületeket tartalmaz (28.

Kattintson ide, ha többet szeretne megtudni a Cistanche antioxidáns tevékenységéről

A két különböző fonalas gombával fermentált rizs koji esetében a metabolomikai megközelítést követtük, amely jelentős különbségeket mutatott ki az enzimaktivitásban, a metabolitok termelésében és a bioaktivitásban. A beoltott A. cristatus és A. oryzae által termelt különféle enzimek, például a-amiláz, &glükozidáz és -glükozidáz aktivitása a fermentációs idővel növekedett (3. ábra). Mivel ezek az enzimek lebontják az arabinoxilán szerkezetét, mindkét mintában különböző fenolsavakat választottak el a rizs sejtfalától, amint az a 2. ábrán látható. Ezek a fenolos savak potenciális antioxidánsok, amelyek enyhítik az oxidatív stresszt 291. Így az antioxidáns aktivitás és a TPC vizsgálat nőtt a fermentációs idő növelése a fenolsavtartalom növekedésével (2. és 4. ábra) Különösen a RAC-ban magasabb a flavonoidok tartalma, mint a RAO-ban, mivel magasabb a -glükozidáz szintje, amely hidrolizálja a -glikozidos kötést a rizs sejtfaláról az A. cristatus növekedése rizs kojiban. Amellett, hogy leválik a rizs sejtfaláról, a glükozidáz a flavonoid glükozid formát aglikon formává hidrolizálja, amely magasabb antioxidáns aktivitással rendelkezik30]. A megnövekedett flavonoid glükozid forma és az aglikon forma növeli az antioxidáns aktivitásokat, mint például az ABTS, DPPH FRAP és TFC, amelyek befolyásolhatják a RAC antioxidáns aktivitását, amint azt a korrelációs hálózat térképe mutatja (4. ábra). Ezt a jelenséget egy korábbi tanulmányban is megfigyelték, amely kimutatta a glükozid izoflavonok biotranszformációját aglikonokká és az antioxidáns aktivitás növekedését a mentációs idő függvényében a vele fermentált szójababban. cristatus [311.

A RAO magasabb szintű a-glükozidáz aktivitással rendelkezik, amely felhasítja az a-glikozid kötéseket, és magasabb glükóztartalmat generál. Amellett, hogy a gombák fő szénforrása a glükóz, a RAC-ban a glükózszint az erjedést követően csökkent, mert másodlagos metabolitok, például auroglaucin származékok szintézisére használták, amelyek az A. cristatus által termelt jellegzetes pigmentvegyületek, nem pedig az A. oryzne. Korábbi tanulmányok arról számoltak be, hogy az auroglaucin-származékok aktivitást mutatnak a DPPH-ban, és potenciális antioxidáns vegyületeknek tekinthetők [32]. Ezenkívül az összeomlott rizs sejtfala lehetővé teheti az enzimek behatolását a rizs legbelső részeibe [24]. Így egyre több metabolitot lehetett szabadon, megszakítás nélkül kivonni a rizs külső falából.

A RAO és a RAC bioaktivitásai és metabolitjai közötti korrelációs hálózattérképen (4. ábra) a közös tendencia az volt, hogy a flavonoidokat, szerves savakat, cukorszármazékokat és zsírsavakat javasolták a bioaktivitások lehetséges hozzájárulóinak. A flavonoidok és a fenolsavak híres antioxidánsok, és számos előnnyel rendelkeznek a különböző funkciók tekintetében. Az oxidatív stresszt enyhítő képességük miatt az élelmiszerek minőségének javítására és a bőr öregedésének enyhítésére használják [33]. Ezenkívül egy korábbi tanulmány arról számolt be, hogy a zsírsavak és az antioxidánsok szinergikus hatást fejtenek ki a bőröregedés megelőzésében és kezelésében [34].

Másrészt az auroglaucin és a lizofoszfolipid származékok további hozzájáruló anyagként szolgálnak a RAC metabolitjaihoz [35]. Az auroglaucin-származékok antioxidáns hatással rendelkeznek, amint azt fentebb említettük, ezért feltételezzük, hogy képesek megállítani a szabad gyökös láncreakciókat a bőr stresszének enyhítése érdekében. Yahagi et al. kimutatták, hogy a lizofoszfolipidek képesek fenntartani a bőr hidratáltságát azáltal, hogy fokozzák a bőr barrier- és hidratációs funkcióival kapcsolatos faktorok expresszióját [36]. A hidratálás az egészséges bőr létfontosságú tényezője, mivel a szárazság bőrkárosodást okoz, amelyet érdesség, hámló bőr és finom ráncok jellemeznek [37,38]. Becsléseink szerint az auroglaucin és a lizofoszfolipidek jobb bőröregedésgátló hatást fejtenek ki a RAC végső fermentációs szakaszában, mint a RAO-ban. Zhao et al. kimutatták, hogy a Fuzhuan téglatea, amely a domináns A. cristatus gombát tartalmazza, képes gátolni a fotoöregedést a ROS kioltásával és a Nrf2 jelátviteli kaszkádok beindításával [21]. Ezért feltételezzük, hogy a RAC magasabb öregedésgátló potenciált kínál, mint a RAO, mivel közvetett utakon hat, például jobb bőrfeltételeket teremt a bőséges nedvességhez ésa szabad gyökök által okozott stressz oldása.

Összességében úgy gondoljuk, hogy a megnövelt zsírsavak, fenolsavak, flavonoidok, lizofoszfolipidek és hidrokinonok fokozhatják az antioxidáns aktivitást és javíthatják az elasztin és a kollagén RNS-expresszióját, valamint elnyomhatják az MMP RNS-expresszióját-1. erjesztés. Ezek a vegyületek a metabolitokban eltérő változási mintákat mutattak az oltógomba szerint, és különböző bioaktivitásokat befolyásoltak. Ez a tanulmány metabolomikai megközelítéssel tisztázta az azonos Aspergillus nemzetség különböző fajai közötti általános anyagcsere különbségeket. Ezenkívül a különböző enzimaktivitások befolyásolták a különböző metabolitok termelődését, és eltérő bioaktivitást indukáltak RAO-ban és RAC-ban

4. Anyagok és módszerek

4.1. Vegyszerek és reagensek

4.2. Minta előkészítés és extrakció

Az A. oryzae KCCM 11372 (Koreai Mikroorganizmus Kultúra Központ, KCCM; Koreai Köztársaság) és az A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF a Cosmax BTI kutatási és innovációs központtól; Seongnam, Korea) koji penészgombákat rizs fermentálására használták, és külön oltották be. . Mindegyik mikroorganizmust malátakivonat-agaron tartottuk (malátakivonat, 20 g; glükóz, 20 g; pepton, 1 g; agar, 20 g/l) 28 °C-on. A koji előállításához szükséges fermentációs lépések biofolyamatát Lee et al. [11]. Az A. oryzae-vel és A. cristatus-szal fermentált rizs koji mintákat 2 naponta (0. naptól 8. napig) gyűjtöttük, és mélyhűtött körülmények között (-80 ◦C) tároltuk a további elemzésekig. Minden mintát két biológiai ismétléssel készítettünk.

A rizs koji minta extrakciójának módszerét Lee et al. enyhe módosításokkal [11]. Röviden, a porított, fagyasztva szárított rizskoji-mintákat (5 g) 8% vizes etanol (40 ml) hozzáadásával extraháltuk, és szobahőmérsékleten 200 fordulat/perc 24 órán át végzett rázógépen kevertük. A minták 10, 000 fordulat/perc sebességgel, 5 percig 4 ◦C-on végzett centrifugálása után a felülúszókat 0,22 µm-es Millex GP szűrővel (Merck Millipore, Billerica, MA, USA) szűrtük. A leszűrt mintakivonatokat gyorsvákuum-koncentrátorral (Hanil, Szöul, Korea) szárítottuk, és megmértük a száraz tömeget az extrakciós hozam értékeléséhez.

4.3. GC–TOF–MS elemzés

Az extrahált rizs koji minták származékképzési lépéseit Lee et al. [11]. A GC–TOF–MS elemzést Agilent 7890A GC rendszeren (Santa Clara, CA, USA) végeztük Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, USA) segítségével. A vivőgázt (héliumot) RTx-5MS-vel (30 m hosszúság × 0,25 mm belső átmérő, J&W Scientific, Folsom, CA, USA) használjuk állandó 1,5 ml/perc áramlási sebesség mellett. Az injektor és az ionforrás hőmérsékletét 250, illetve 230 ◦C-on tartottuk. A kemence hőmérsékletét 2 percig 75 ◦ C-on tartottuk, majd 15 ◦ C/perc sebességgel 300 ◦ C-ra emeltük, amit 3 percig tartottunk. Ezután 1 µl mintát fecskendeztünk be, m/z 50-800 tömegszkennelési tartományban. Minden mintaelemzést három analitikai ismétléssel végeztünk.

4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS elemzés

Az extrahált rizs koji mintákat a másodlagos metabolitokra nézve ultranagy teljesítményű folyadékkromatográfiás lineáris csapda kvadrupól orbitrap tandem tömegspektrometriával (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) elemeztük a Kwon és munkatársai által leírt protokollok alkalmazásával. [39]. Mindegyik mintát Phenomenex KINETEX® C18 oszlopon választottuk el (100 mm 2,1 mm, 1,7 m részecskeméret; Torrance, CA, USA). A tömegspektrumot és a fotodiódasor tartományt mind pozitív, mind negatív ion módban m/z 100-1000, illetve 200-600 nm-re hangoltuk.

4.5. Adatfeldolgozás és statisztikai elemzés

A nyers GC–TOF–MS és UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS adatokat netCDF (*.cdf) formátumba transzformáltuk a Leco ChromaTOF, illetve Thermo Xcalibur szoftverrel. A megfelelő net CDF (*.cdf) fájlokat MetAlign (hozzáférve július 13-án 021)) szoftveres adatfeldolgozásnak vetették alá a Lee és munkatársai által leírt protokollok segítségével. [11,24]. A tömegspektrometriai adatokat, amelyek változóként a megfelelő csúcstömeget (m/z), retenciós időket (perc) és csúcsterület-információt reprezentálják, a SIMCA-P plus 12.{13}} szoftverrel (Umetrics, Umea, Svédország) többváltozós statisztikai elemzéshez. A főkomponens-analízis (PCA), a részleges legkisebb négyzetek diszkriminanciaanalízis (PLS-DA) és az ortogonális részleges legkisebb négyzetes diszkriminancia analízis (OPLS-DA) előtt az adatkészleteket log-transzformáltuk, és az egységvarianciát skáláztuk a rizskoji összehasonlításához. különböző gombákkal erjesztve. A PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) segítségével teszteltük a szignifikáns különbségeket (p-érték < 0,05) egyirányú varianciaanalízissel, és kiszámították a korrelációs együttható értékeket. korrelációs térképhez. A 0,5-nél nagyobb Pearson-féle korrelációs együttható értékkel rendelkező metabolitok és a bioaktivitások közötti korrelációs hálózat térképét a Cytoscape szoftverrel (https://www.cytoscape.org/ (letöltve 2021. július 13-án) állítottuk össze. A kísérleti metabolitok azonosítását a molekulatömegek és a molekulaösszetétel, a retenciós idő, a tömegfragmentumok egyeztetésével végeztük.

minták, valamint az irodalomból és a házon belüli könyvtárunkból származó ultraibolya (UV) adatok elnyelése

4.6. Az enzimaktivitások meghatározása

Az -amiláz, -glükozidáz és -glükozidáz enzimaktivitási vizsgálatait korábbi tanulmányok szerint végezték [25,40,41]. Minden rizskoji mintából 10 g-ot extraháltunk 90 ml vízben orbitális rázógépen 120 órai hőmérsékleten és 25 ◦C-on 1 órán át rázva. A minták szűrése után a felülúszókat az enzimaktivitások értékelésére használtuk.

4.7. Az antioxidáns aktivitás és az összes fenol- és flavonoidtartalom meghatározása

A rizs koji minták antioxidáns aktivitásának meghatározására ABTS, DPPH, vasredukáló antioxidáns teljesítmény (FRAP), teljes fenoltartalom (TPC) és teljes flavonoid tartalom (TFC) vizsgálatokat végeztünk három párhuzamosban.

Az ABTS és FRAP vizsgálatokat a Lee és munkatársai által leírt módszerrel végeztük. [24]. Röviden, a desztillált vízzel hígított ABTS törzsoldatot 0,7 ± 0.02 végső abszorbanciája eléréséhez 750 nm-en (180 µL) minden mintakivonathoz (20 µL) hozzáadva egy 96-lyukú lemezen. A reakciót 6 percig hagyjuk lejátszódni sötétben, szobahőmérsékleten. Az abszorbanciát 750 nm-en mértük spektrofotométerrel. A FRAP vizsgálathoz 300 mM acetát puffer (pH 3,6), 20 mM vas(III)-klorid és 10 mM 2,4,6-tripiridil-S-triazin (TPTZ) 40 mM sósavoldat keveréke. (10:1:1, v/v/v). A mintát (10 µl) összekevertük 300 µl FRAP reagenssel, és szobahőmérsékleten 6 percig inkubáltuk. Az abszorbanciát 570 nm-en mértük. A DPPH vizsgálatot Won és munkatársai által adaptált módszer szerint végeztük. [42], ahol 180 µl DPPH törzsoldatot (0,2 mM etanolban) kevertünk össze 20 µl rizskojival két különböző gombakivonattal 96-lyukú lemezeken, és hagyjuk 20 percig reagálni szobahőmérsékleten. sötétben. A DPPH szabadgyök-abszorbanciáját 515 nm-en mértük. Az ABTS, FRAP és DPPH eredményeit a Trolox egyenértékű antioxidáns kapacitás (TEAC) koncentrációja (mM) a koji milligrammjára vonatkoztatva ábrázolja. A standard koncentrációgörbék 0,0078 mM és 1 mM TEAC között voltak.

A TFC és TPC vizsgálatokhoz Lee és mtsai. [25] követték. A TFC vizsgálathoz minden rizs koji mintából 20 µl-t kevertünk össze 20 µL 1 N NaOH-val és 180 µL 90 százalékos dietilénglikollal. egy 96-kúttányér. Az elegyet 60 percig szobahőmérsékleten inkubáltuk, majd az abszorbanciát 405 nm-en mértük. A TFC a naringin ekvivalens (NE) koncentrációja (mM) milligramm kojira vonatkoztatva. A standard koncentrációgörbe lineáris volt 0,0027 és 0,3445 mM NE között. A TPC vizsgálat elemzéséhez minden mintából 20 µl-t inkubáltunk 100 µl 0,2 N Folin-Ciocalteu reagenssel 96-lyukú lemezeken szobahőmérsékleten 6 percig. Ezután 80 µl 7,5%-os nátrium-karbonát (Na2CO3) oldatot adunk az elegyhez, és 60 percig hagyjuk reagálni szobahőmérsékleten. Végül az abszorbanciát 750 nm-en értékeltük. Az eredmények galluszsav-ekvivalens (GE) koncentrációban (mM) a koji milligrammjára vonatkoztatva a 0,0230–2,9391 mM GE standard koncentrációtartományban.

4.8. Sejtkultúrák

4.9. Valós idejű polimeráz láncreakció

A teljes RNS izolálásához és mennyiségi meghatározásához a sejtpelletekből Trizol reagenst használtunk, és az analízist spektrofotométerrel végeztük. A cDNS szintézisét 20 µl teljes reakciótérfogatban végeztük; a reakcióelegy 2 µg teljes RNS-t, oligo-t (dT) és reverz transzkripciós premixet tartalmazott a következő reakciókörülmények között: 45 °C 45 percig, majd 95 °C 5 percig. RT-PCR-t használtunk a génexpresszió mennyiségi meghatározására, majd az eredményeket a StepOne PlusTM rendszerszoftver (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) segítségével elemeztük. Az RT-PCR amplifikációkat SYBR Green PCR Master Mix segítségével végeztük előre összekevert ROX-szal (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) és primerekkel (Bioneer, Daejeon, Korea) ABI 7300 készülékben, a gyártó protokollja szerint. A reakciókörülmények a következők voltak: iniciálás 95 ◦C-on 10 percig, majd 95 ◦C-on 15 másodpercig, 60 ◦C-on 30 másodpercig és 72 °C-on 30 másodpercig 40 ciklusig. -aktint alkalmaztunk belső kontrollként.

Összefoglalva, a rizs koji különböző metabolitok és bioaktivitások termelődését mutatta ki a különböző használt Aspergillus fajok szerint. A magasabb szintekflavonoidoka RAC-ban az auroglaucin származékok pedig magasabbantioxidáns aktivitásmint a RAO-ban. Emellett a zsírsavak szinergikus hatásai ésantioxidáns vegyületekmind a kojiban megtalálhatók az RNS expressziójához kapcsolódnak abőr öregedésgátló faktor. A RAC-ban található auroglaucin származékok és lizofoszfolipidek szintén olyan jelöltek voltak, amelyek összefüggésbe hozhatókA bőr öregedésgátló faktorainak RNS expressziója. Ezért annak ellenére, hogy a rizs kojit ugyanazon nemzetség (Aspergillus) tagjaival fermentálják, a különböző fajok enzimaktivitásai és metabolitjai jelentős eltéréseket mutatnak, és ezek hatással vannak.bioaktivitásokmint példáulantioxidánsésöregedésgátló tevékenységek. Ezért ez a tanulmány átfogó betekintést nyújt, valamint logikát ad az oltási mikrobák ésszerű kiválasztásához, tekintettel a

metabolomika, a koji kereskedelmi előállításának minőségének javítása érdekében.

Kiegészítő anyagok:Az alábbiak elérhetők online: S1 ábra: A rizs PLS-DA pontszám diagramja (A, B) és OPLS-DA pontszám diagramja (C)koji-vel erjesztettékAspergillus cristatusvagyA. oryzaeUHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A, C) és GC–TOF–MS (B) termékből nyertük. S1 táblázat: A rizsből származó, jelentősen eltérő metabolitok listájakojikülönbözővelAspergillus spp. az UHPLC-LTQ-Orbitrap-MS/MS által azonosított fermentáció során, S2 táblázat: A rizstől jelentősen eltérő metabolitok listájakojikülönbözővelAspergillus spp. A GC-TOF-MS által azonosított fermentáció során S2 ábra: A bioaktivitások (bőrsejt-hatás és antioxidáns aktivitás) és a rizs korrelációs térképekoji-vel erjesztettékAspergillus cristatusvagyA. oryzaemetabolitok a Pearson-féle korrelációs együttható szerint. Minden négyzet Pearson korrelációs együttható értékeit (r) jelzi.

A szerző hozzájárulásai:Fogalomalkotás, CL és SL; módszertan, HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) és JR; érvényesítés, HL, SL és SK (Seoyeon Kyung); formális elemzés, HL és SK (Seoyeon Kyung); nyomozás, HL és SL; források, JR, SK (Seunghyun Kang) és MP; írás – eredeti tervezet előkészítése, HL; írás – áttekintés és szerkesztés, HL és SL; vizualizáció, HL; felügyelet, SL és CL; projekt adminisztráció, SK (Seunghyun Kang), MP és CL; finanszírozás megszerzése, CL Minden szerző elolvasta és beleegyezett a közzétételbea kézirat változata.

Finanszírozás:Ezt a munkát a Koreai Élelmiszer-, Mezőgazdasági és Erdészeti Technológiai Tervezési és Értékelési Intézet (IPET) támogatta a Mezőgazdasági, Élelmiszerügyi és Vidéki Minisztérium által finanszírozott Mezőgazdasági Mikrobiom K+F Programon (A mezőgazdasági és élelmiszeripari mikrobiomokra vonatkozó stratégiai kezdeményezés) keresztül. Ügyek (MAFRA) (a támogatás száma: 918011-04-3-HD020). Ezenkívül ezt a munkát a Koreai Élelmiszer-, Mezőgazdasági, Erdészeti Technológiai Tervezési és Értékelési Intézet (IPET) támogatta a Mezőgazdasági, Élelmiszerügyi és Vidéki Minisztérium (MAFRA) által finanszírozott, magas hozzáadott értékű élelmiszertechnológiai fejlesztési programon keresztül. (adományszám: 318027-04-3-HD030)

Adatelérhetőségi nyilatkozat:A jelen tanulmányban bemutatott adatok kérésre rendelkezésre állnak aLevelezési cím

Köszönetnyilvánítás:A kutatást a Konkuk Egyetem Kutatói Alapja támogatta2020.

Hivatkozások

1. Sanlier, N.; Gokcen, BB; Sezgin, AC A fermentált élelmiszerek egészségügyi előnyei. Crit. Rev. Food Sci. Nutr. 2019, 59, 506–527. [CrossRef]

2. Yu, K.-W.; Lee, S.-E.; Choi, H.-S.; Suh, HJ; Ra, KS; Choi, JW; Hwang, J.-H. Optimalizálás a rizs koji elkészítéséhez egy hagyományos koreai mejuból izolált Aspergillus oryzae CJCM{5}} használatával. Food Sci. Biotechnol. 2012, 21, 129–135. [CrossRef]

3. Yang, Y.; Xia, Y.; Lin, X.; Wang, G.; Zhang, H.; Xiong, Z.; Yu, H.; Yu, J.; Ai, L. Kínai rizsbor ízprofiljainak javítása kiváló etanoltűrő és fermentációs aktivitású erjesztő élesztő létrehozásával. Food Res. Int. 2018, 108, 83–92. [CrossRef] [PubMed]

4. Ichikawa, E.; Hirata, S.; Hata, Y.; Yazawa, H.; Tamura, H.; Kaneoke, M.; Iwashita, K.; Hirata, D. A koji starter hatása a Koshitanrei szaké rizsből készült japán alkoholos ital szaké metabolitjaira. Biosci. Biotechnol. Biochem. 2020, 84, 1714–1723. [CrossRef]

5. Phetpornpaisan, P.; Tippayawat, P.; Jay, M.; Sutthanut, K. Egy helyi thai fajta nyálkás fekete rizskorpa: funkcionális vegyületek forrása az immunmodulációban, a sejtek életképességében és a kollagénszintézisben, valamint a mátrix metalloproteináz-2 és -9 gátlásában. J. Funct. Foods 2014, 7, 650–661. [CrossRef]

6. Kim, AJ; Choi, JN; Kim, J.; Kim, HY; Park, SB; Yeo, SH; Choi, JH; Liu, KH; Lee, CH Aspergillus törzsek által fermentált rizs koji metabolitprofilja és bioaktivitása. J. Microbiol. Biotechnol. 2012, 22, 100–106. [CrossRef] [PubMed]

7. Ames, BN; Shigenaga, MK; Hagen, TM Oxidánsok, antioxidánsok és az öregedés degeneratív betegségei. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 1993, 90, 7915–7922. [CrossRef] [PubMed]

8. Valko, M.; Leibfritz, D.; Moncol, J.; Cronin, MT; Mazur, M.; Telser, J. Szabad gyökök és antioxidánsok normál élettani funkciókban és emberi betegségekben. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2007, 39, 44–84. [CrossRef]

9. Uttara, B.; Singh, AV; Zamboni, P.; Mahajan, RT Oxidatív stressz és neurodegeneratív betegségek: Az upstream és downstream antioxidáns terápiás lehetőségek áttekintése. Curr. Neuropharmacol. 2009, 7, 65–74. [CrossRef]

10. Yen, G.-C.; Chang, Y.-C.; Su, S.-W. Az Aspergillus candidusszal fermentált rizs koji antioxidáns hatása és aktív vegyületei. Food Chem. 2003, 83, 49–54. [CrossRef]

11. Lee, DE; Lee, S.; Singh, D.; Jang, ES; Shin, HW; Hold, BS; Lee, CH Időben feloldott összehasonlító metabolomok Koji fermentációhoz barna, fehér és óriás embrió rizzsel. Food Chem. 2017, 231, 258–266. [CrossRef] [PubMed]

12. Jarrar, M.; Behl, S.; Shaheen, N.; Fatima, A.; Nasab, R. A retinol és az alfa-hidroxisav öregedésgátló hatásai a mesterségesen fényképezett humán bőrfibroblaszt sejtvonalak elasztinszálaira. Int. J. Med Health Biomed. Pharm. Eng. 2015, 7, 328.

13. Bolla, SR; Al-Subaie, AM; Al-Jindan, RY; Balakrishna, JP; Ravi, PK; Veeraraghavan, alelnök; Pillai, AA; Gollapalli, SSR; Joseph, JP; Surapaneni, KM Az Aristolochia saccata metanolos levélkivonatának in vitro sebgyógyító hatását valószínűleg a kollagén-1 expresszióra gyakorolt ​​serkentő hatása közvetíti. Heliyon 2019, 5, e01648. [CrossRef] [PubMed]

14. Meinke, MC; Nowbary, CK; Schanzer, S.; Vollert, H.; Lademann, J.; Darvin, ME Az orálisan szedett karotinoidban gazdag göndör kelkáposzta kivonat hatása a bőr kollagén I/elasztin indexére. Nutrients 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. Majeed, M.; Bhat, B.; Anand, S.; Sivakumar, A.; Paliwal, P.; Geetha, KG UV-indukált ROS és kollagén károsodás gátlása Phyllanthus emblica kivonattal normál humán dermális fibroblasztokban. J. Cosmet. Sci. 2011, 62, 49–56. [PubMed]

16. Masuda, M.; Murata, K.; Naruto, S.; Uwaya, A.; Isami, F.; Matsuda, H. A Morinda citrifolia magkivonat és összetevői mátrix metalloproteináz-1 gátló hatása UVA-sugárzással besugárzott humán dermális fibroblasztokban. Biol. Pharm. Bika. 2012, 35, 210–215. [CrossRef] [PubMed]

17. Seo, Y.-K.; Jung, S.-H.; Song, K.-Y.; Park, J.-K.; Park, C.-S. Fermentált rizskorpa kivonat öregedésgátló hatása UV-indukált normál bőrfibroblasztokon. Eur. Food Res. Technol. 2010, 231, 163–169. [CrossRef]

18. Goufo, P.; Trindade, H. Rizs antioxidánsai: fenolsavak, flavonoidok, antocianinok, proantocianidinek, tokoferolok, tokotrienolok, -oryzanol és fitinsav. Food Sci. Nutr. 2014, 2, 75–104. [CrossRef]

19. Bechman, A.; Phillips, RD; Chen, J. A rizs és árpa koji kiválasztott fizikai tulajdonságainak és enzimaktivitásának változásai fermentáció és tárolás során. J. Food. Sci. 2012, 77, M318–M322. [CrossRef]

20. Kang, D.; Su, M.; Duan, Y.; Huang, Y. Eurotium cristatum, a Fuzhuan téglateából származó potenciális probiotikus gomba, a bélmikrobióta modulálásával enyhítette az egerek elhízását. Élelmiszer funkció. 2019, 10, 5032–5045. [CrossRef]

21. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, SH Az UVB által kiváltott fotoöregedés védelme Fuzhuan-Brick Tea vizes kivonattal MAPK-kon/Nrf-on keresztül2- Az MMP közvetített leszabályozása-1. Nutrients 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22. Hur, SJ; Lee, SY; Kim, YC; Choi, I.; Kim, GB A fermentáció hatása a növényi alapú élelmiszerek antioxidáns aktivitására. Food Chem. 2014, 160, 346–356. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; Lin, Y.-F.; Xia, H.-Y.; Huang, L.; Dong, M.-S. Az Eurotium cristatum-mal fermentált Angelica dahurica szabad gyökfogó vegyületek online szűrése és azonosítása HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS rendszerrel. Food Chem. 2019, 272, 670–678. [CrossRef] [PubMed]

24. Lee, S.; Lee, DE; Singh, D.; Lee, CH Metabolomics feltárja az optimális szem előfeldolgozást (őrlést) a rizs-koji fermentáció felé. J. Agric. Food Chem. 2018, 66, 2694–2703. [CrossRef]

Kérdezz többet:

E-mail:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: plusz 86 15292862950