2. rész: Miért lehetnek a gyógynövénykivonatok potenciális antioxidáns, öregedésgátló, gyulladáscsökkentő és fehérítő kozmetikai összetevők

Kapcsolatba lépni:joanna.jia@wecistanche.com/ WhatsApp: 008618081934791

AZ 1. RÉSZHEZ KATTINTSON IDE

Következtetések

Gyógynövény kivonatokKülönböző növényi anyagoktól eltérő külső megjelenés, beleértve a színt és az ízt. A 16 gyógynövénykivonat közül az SR tartalmazta a legjelentősebb mennyiségben fenolokat és flavonoidokat, így az SR rendelkezett a legjelentősebb antioxidáns hatással mind a DPPH, mind a FRAP vizsgálatokban (p < 0,05).="" ezen="" kívül="" az="" rd="" és="" a="" pe="" is="">antioxidáns activities comparable to those of SR (p >0.05). Ezenkívül az SR, RD és PE ​​ígéretesnek bizonyultfehérítéshatás a legjelentősebb anti-tirozináz aktivitással a többihez képest (p < 0.05).="" a="" legjelentősebb="" öregedésgátló="" hatású="" gyógynövénykivonat="" azonban="" az="" ep="" volt,="" amely="" 78,5="" ±="" 0.0="" százalékkal="" gátolta="" a="" kollagenáz,="" elasztáz="" és="" hialuronidáz="" aktivitást,="" 69.0="" ±="" 1,4="" százalék="" ,="" illetve="" 64,2="" ±="" 0,3="" százalék="" .="" ezenkívül="" az="" ma="" és="" az="" ms="" rendelkezett="" a="" legjelentősebb="" gyulladásgátló="" hatással,="" mivel="" gátolta="" az="" il-6="" és="" a="" tnf-szekréciót="" (p="">< 0,05).="" ezért="" a="">gyógynövény kivonatokA fent említett anyagok ígéretes jótékony hatással vannak a bőrre, és potenciálisan felhasználhatók kozmetikai/kozmetikaiTermékek. A vizes oldatok formájú gyógynövény-kivonatokat kozmetikai termékek számos formájaként, például tonikként, arcpermet és arcszérumként közvetlenül felvihetjük a bőrre. Többféle kozmetikai termék is kifejleszthető belőlük, beleértve a krémet, testápolót és gélt. Ezek szállítására azonban nano-szállító rendszereket javasolnakgyógynövény kivonatokmélyebb bőrrétegbe, hogy teljesítsékkozmetikaitulajdonságait. Ezen túlmenően a liofilizálás vagy az oldószer eltávolítása javasolt további eljárásként olyan szárított extraktum előállítására, amely nemcsak az extrahált anyag mennyiségét adja meg részletesebben, hanem hosszabb ideig is eltartható.

cistanchetabletek

További információért kattintson ide

Kísérleti szakasz

Növényi anyagok

A G. extension és az M. alba leveleit a thaiföldi Chiang Mai Mae Rim körzetében található helyi farmról gyűjtöttük be 2018 októberében. A friss leveleket csapvízzel mostuk, és szobahőmérsékleten hagytuk megszáradni. A leveleket apró darabokra vágtuk, és körülbelül 5-10 percig pároltuk. Ezt követően a kifolyt leveleket alacsony hőmérsékleten 15 percig pörköltük, végül 45 oC-ra állított kemencében (UF110, Memert, Németország) szárítottuk 3 napig. Ezenkívül a szárított M. alba leveleket gőzölés vagy pörkölés nélkül készítették el. A szárított E. purpurea virágokat a thaiföldi Chiang Mai helyi farmjáról vásárolták. A szárított A. elatior és G. pentaphyllum leveleket a thaiföldi Chiang Mai-i Royal Project Foundation üzletből vásároltuk. Szárított C. tinctorius, C. morifolium, C. ternatea, H. sabdarifa és J. sambac virágok, szárított P. amaryllifolius levelek, szárított R. Damascena virágok, szárított S. rebaudiana levelek, szárított C. verum kéregpor és szárított A P.emblica gyümölcsport a thaiföldi Chiang Mai helyi piacáról vásárolták. Az összes szárított növényi anyagot finom porrá őröltük Moulinex keverővel (Moulinex, Párizs, Franciaország), és a 10. ábrán látható módon lezárt tartályokban tartottuk a további felhasználásig.

10. ábra Különféle növényi anyagok szárított gyógynövényei (a) és szárított porai (b).

Szárított növényi anyagok mikroszkópos elemzése

A növénymintákat Ms. Wannaree Charoensup, a Chiang Mai Egyetem Gyógyszerésztudományi Karának Gyógyszertudományi Tanszékének Herbárium botanikusa azonosította és hitelesítette. Az egyes növényi anyagok szárított portjait Nikon ECLIPSE E200 Microscope (Nikon Solutions Co., Ltd., Konan, Japán) segítségével elemeztük, amely Canon EOS750D fényképezőgéphez (Canon Inc., Tochigi, Japán) volt csatlakoztatva.[54] A tárgylemezek elkészítéséhez a mintákat híg glicerinbe szereltük fel. Az egyes minták mikroszkópos jellemzőit és sejtösszetevőit megvizsgáltuk, és 400-szoros lencsenagyítású mikroszkóppal fényképeztük.

ciszterna növényfehérítéshatása bőrön, hogyantioxidáns

Vegyi anyagok

L-aszkorbinsav, kojsav, galluszsav, kvercetin, oleanolsav, hialuronsav, Folin-Ciocalteu reagens, lipopoliszacharid (LPS), szarvasmarha szérumalbumin (BSA), 2,4,6-Tris({{4) }}piridil)-s-triazin (TPTZ), 2,2'-difenil-1-pikrilhidrazil (DPPH), 3-(4,5-dimetil-tiazolil-2) { {15}},5-difenil-tetrazólium-bromid (MTT), kollagenáz Clostridium histolyticumból (EC 3.4.24.3), sertés hasnyálmirigyből származó elasztáz (EC 3.4.4.7), hialuronidáz szarvasmarha heréből (EC 3.2.1.35). ), N-[3-(2-furil)akriloil]-Leu-Gly-Pro-Ala (FALGPA), N-szukcinil-Ala-Ala-Ala-p-nitroanilid (AAAPVN), dihidroklorid a gomba tirozinázt (EC 1.14.18.1), az L-3,4-dihidroxifenilalanint (L-DOPA) és az L-tirozint a Sigma Aldrich-től (St. Louis, MO, USA) vásároltuk. A Tricine és Tris bázist a Fisher Chem Alerttől vásároltuk (Fair Lawn, NJ, USA). A Dulbecco módosított sas táptalajt (DMEM), az L-glutamint, az RPMI{52}}-t, a penicillint/sztreptomicint és a tripánkéket az Invitrogen™-től (Grand Island, NY, USA) vásároltuk. Az AR minőségű sósavat és ecetsavat a Mercktől (Darmstadt, Németország) vásároltuk. Alumínium-klorid (AlCl3), kalcium-klorid (CaCl2), vas-klorid (FeCl2), vas-klorid (FeCl3), vas-szulfát (FeSO4), kálium-acetát (CH3CO2K), kálium-klorid (KCl), kálium-dihidrogén (KH2PO4), kálium-dihidrogén (KH2PO4). a perszulfátot (K2S2O8), a nátrium-acetátot (C2H3NaO2), a nátrium-karbonátot (Na2CO3), a nátrium-kloridot (NaCl), a nátrium-hidroxidot (NaOH), a mononátrium-foszfátot (NaH2PO4) és a dinátrium-foszfátot (Na2HPO4) a Fisher Chemicals-tól (UKoughborough) vásároltuk. ). Az AR minőségű etanolt és dimetil-szulfoxidot (DMSO) a Labscan-tól (Dublin, Írország) vásároltuk.

Gyógynövénykivonás

A növényi anyagokat forralt vízben infúzióval vonták ki. Röviden, minden szárított gyógynövényporból 1 g-ot teászacskóba csomagoltunk és 50 ml forralt DI vízbe merítettünk. A teafiltert ezután 1, 3, 5, 10 és 15 perces infúzió után eltávolítottuk. Az infundált kivonatot szobahőmérsékletre hagytuk lehűlni, és további vizsgálatokhoz használtuk fel.

cistanche herbakivonat

Összes fenoltartalom meghatározása Folin–Ciocalteu módszerrel

Az egyes gyógynövénykivonatok összes fenoltartalmát a Folin–Ciocalteu módszerrel határoztuk meg, amely Chaiyana és munkatársai [55] módszerén alapult, amelyet Li és munkatársai módszerével módosítottak.[56] szabványos görbe. A fenolos vegyület szintje milligramm galluszsav-ekvivalens (GAE) milliliterenként.gyógynövény kivonatok. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Összes flavonoid tartalom meghatározása alumínium-klorid módszerrel

Az egyes gyógynövénykivonatok összes flavonoid tartalmát alumínium-kloridos módszerrel határoztuk meg Do és munkatársai módszere alapján.[57]A standard görbe felállításához kvercetint használtunk. A flavonoid szinteket kvercetin egyenérték (QE) milligrammban adják meg milliliterenként.gyógynövény kivonatok. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

2,2'-difenil-1-pikrilhidrazil-reagens (DPPH) vizsgálat

Az egyes gyógynövénykivonatok DPPH gyökök (DPPH) elleni megkötő aktivitását Chaiyana és munkatársai [55] módszerén alapuló DPPH-teszt segítségével értékelték ki, amelyet Blois módszerével módosítottak.[58] Az öblítési aktivitást az egyenlet segítségével számítottuk ki

százalékos öblítési tevékenység={((AB)-(CD))/(AB)} x 100 (1)

ahol A a DPPH oldat UV-abszorbanciája, B az oldószerek UV-abszorbanciája, C a keverék UV-abszorbanciájagyógynövény kivonatokés DPPH oldat, D pedig a gyógynövénykivonat oldat UV-abszorbanciája. A pozitív kontroll L-aszkorbinsav volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Vas-redukáló antioxidáns teljesítmény (FRAP) vizsgálat

A vasredukálóantioxidánsAz egyes gyógynövénykivonatok teljesítményét a FRAP vizsgálattal értékelték ki, amely Chaiyana és munkatársai [55] módszerén alapult, amelyet Saeio és munkatársai módszerével módosítottak. A vasredukáló teljesítményt ekvivalens kapacitásban (EC1) adjuk meg, amely a minta egy milliliterére vonatkoztatott FeSO4 ekvivalens mennyisége volt. A pozitív kontroll L-aszkorbinsav volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Anti-tirozináz aktivitás meghatározása

Az egyes gyógynövénykivonatok tirozináz enzim elleni gátló hatását Laosirisathian és munkatársai [60] módszerén alapuló spektrofotometriás vizsgálattal értékelték ki, amelyet Pomerantz módszerével módosítottak.[61] Az anti-tirozináz aktivitást az egyenlet segítségével számítottuk ki

százalékos anti-tirozináz aktivitás={((AB)-(CD))/(AB)} x 100 (2)

ahol A egy tirozináz enzim UV-abszorbanciája a szubsztráttal kombinálva, B az oldószer UV-abszorbanciája, C agyógynövény kivonatoktirozináz enzimmel és a szubsztráttal kombinálva D a gyógynövénykivonat oldat UV-abszorbanciája. A pozitív kontroll kojsav volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Cistancheegytirozináz inhibitor

Kollagenáz gátló aktivitás meghatározása spektrofotometriás módszerrel

Az egyes gyógynövénykivonatok kollagenáz gátló aktivitását Chaiyana és munkatársai módszerén alapuló spektrofotometriás vizsgálattal értékelték ki.[44] enyhe módosításokkal. Először is, a 0,16 egység/ml kollagenáz oldat a Clostridium histolyticumból származó kollagenáz, 80 mM NaCl, 2 mM CaCl2 és 50 mM Tricine puffer (pH 7,5) kombinációja volt. Ezt követően a kapott kollagenáz oldatból 200 µl-t vittünk fel minden egyes gyógynövénykivonat 20 µl-ére egy lapos fenekű lemezen (Costar, Corning Ltd., Sunderland, Egyesült Királyság), és 15 percig állni hagytuk. Ezt követően 80 µl 1 mg/ml FALGPA-t a Tricine pufferben (pH 7,5) alkalmaztunk szubsztrátként az enzimes reakcióhoz, és további 20 percig állni hagytuk. A kapott keverék UV-abszorbanciáját 340 nm-en mértük multimódusú detektor (Beckman CoulterDTX880, Fullerton, CA, USA) segítségével. A kollagenáz gátló aktivitást az egyenlet segítségével számítottuk ki

százalékos antikollagenáz aktivitás={((AB)-(CD))/(AB)} x 100 (3)

ahol A a kollagenáz oldat és a FALGPA oldat UV-abszorbanciája, B az oldószerek UV-abszorbanciája, C agyógynövény kivonatokkollagenázzal és FALGPA oldattal kombinálva, D pedig a gyógynövénykivonat oldat UV-abszorbanciája. A pozitív kontroll EGCG volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Elasztáz gátló aktivitás meghatározása spektrofotometriás módszerrel

Az egyes gyógynövénykivonatok elasztáz gátló aktivitását Chaiyana és munkatársai módszerén alapuló spektrofotometriás vizsgálattal értékelték ki.[44] Az elasztáz gátló aktivitást az egyenlet segítségével számítottuk ki

százalékos antielasztáz aktivitás={((AB)-(CD))/(AB)} x 100, (4)

ahol A az elasztáz oldat és az AAAPVN oldat UV abszorbanciája, B az oldószerek UV abszorbanciája, C az elasztáz oldat UV abszorbanciájagyógynövény kivonatokelasztázzal és AAAPVN oldattal kombinálva, a D pedig a gyógynövénykivonat oldat UV-abszorbanciája. EGCG-t használtunk pozitív kontrollként. A pozitív kontroll EGCG volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Hialuronidáz gátló aktivitás meghatározása spektrofotometriás módszerrel

Az egyes gyógynövénykivonatok hialuronidáz gátló aktivitását Chaiyana és munkatársai módszerén alapuló spektrofotometriás vizsgálattal értékelték ki.[44] A hialuronidáz gátló aktivitást az egyenlet segítségével számítottuk ki

százalékos hialuronidáz aktivitás={((AB)-(CD))/(AB)} x 100 (5)

ahol A a hialuronidáz oldat és a hialuronsav oldat UV abszorbanciája, B az oldószerek UV abszorbanciája, C agyógynövény kivonatoka hialuronidáz oldattal és a hialuronsav oldattal kombinálva, és D a gyógynövénykivonat oldat UV-abszorpciója. A pozitív kontroll oleanolsav volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Gyulladásgátló aktivitás meghatározása enzimhez kötött immunszorbens vizsgálattal (ELISA)

Az egyes gyógynövénykivonatok gyulladáscsökkentő hatását az IL-6 és a TNF-szekréció elleni gátló hatások segítségével értékelték Chaiyana és munkatársai [44] módszere alapján, amelyet Mueller és munkatársai módszerével módosítottak. al.[62]Az LPS-t a gyulladásos folyamat stimulálására használták egér monocita makrofág RAW 264.7 sejtekben (American Type Culture Collection, ATCCTIB-71). Az LPS-sel inkubált sejt vivőanyagként szolgált, a citokinek 100 százaléka szekretált, míg a nem kezelt RAW 264.7 sejtek negatív kontrollként szolgáltak. Az MTT-tesztet használták a RAW 264.7 sejtek életképességének értékelésére ELISA-val együtt.[62]Az IL-6 és a TNF-szekréció gátlását az egyenlet segítségével számítottuk ki.

százalékos citokin-gátlás={((AB)-(CD))/(AB)} x 100 (6)

ahol A az optikai sűrűségegyógynövény kivonatokaz MTT vizsgálatból B az MTT vizsgálatból származó negatív kontroll optikai denzitása, C az ELISA-ból származó gyógynövénykivonatok optikai denzitása, és D az ELISA-ból származó vivőanyag-kontroll optikai sűrűsége. A pozitív kontroll dexametazon volt. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

Statisztikai analízis

Minden eredményt átlag ± standard deviáció (SD) formájában mutatunk be. A statisztikai szignifikancia meghatározására az egytényezős varianciaanalízist (ANOVA) használtuk, majd Törökország post-hoc tesztjei következtek az SPSS 17.0 for Windows (SPSS Inc., Chicago, IL, USA) segítségével. P < 0,05="" statisztikailag="" szignifikánsnak="">

Hivatkozások

[1] M. Kong, XG Chen, DK Kweon, HJ Park, „Investigations on skin permeation of hyaluronsav-based nanoemulsion as transdermális hordozó”, Carbohydr. Polym. 2011, 86, 837-843.

[2] H. Takigawa, H. Nakagawa, M. Kuzukawa, H. ori, G. Imokawa: „A hexadecénsav hiányos termelése a bőrben részben az atópiás dermatitiszben szenvedő betegek sérülékenységével függ össze a Staphylococcus aureus kolonizációjával szemben”. Bőrgyógyászat. 2005, 211, 240-248.

[3] SH Lee, SK Jeong, SK Ahn, „A bőr védekező védőgát funkciójának frissítése”, Yonsei Med. J. 2006, 47, 293-306.

[4] F. Bonté, D. Girard, JC Archambault, A. Desmouliere, „Bőrváltozások az öregedés során”, In Biochemistry and Cell Biology of Ageing: Part II Clinical Science, Springer: Szingapúr, 2019, 249-280.

[5] AK Langton, HK Graham, CE Griffiths, REB Watson, „Az öregedés jelentősen befolyásolja a bőr biomechanikai funkcióját és szerkezeti összetételét”, Exp. Dermatol. 2019, 28, 981-984.

[6] T. Schikowski, A. Hüls, „Air Pollution and Skin Aging”, Curr. Environ. Egészségügyi Rep. 2020, 1-7.

[7] N. Amberg, C. Fogarassy, ​​„Green Consumer Behavior in the Cosmetics Market”, Resources. 2019, 8, 137.

[8] J. Azmir, ISM Zaidul, MM Rahman, „A bioaktív vegyületek növényi anyagokból történő extrakciójának technikái: Áttekintés, J. Food Eng. 2013, 117, 426-436.

[9] M. Gašperlin, M. Gosenca, „Az antioxidáns vitaminok bőrön keresztüli szállításának főbb módjai a bőr öregedésének megelőzésére”, szakértő. Opin. Drug Deliv. 2011, 8, 905-919.

[10] SM Salavkar, RA Tamanekar, RB Athawale, „Antioxidants in skin aging – Future of dermatology”, Int. J. Green Pharm. 2011, 5. (3). 161-168.

[11] J. Calleja-Agius, Y. Muscat-Baron, Brincat képviselő, „Skin aging”, Menopause Int. 2007, 13, 60-64.

[12] GJ Fisher, T. Quan, T. Purohit, Y. Shao, MK Cho, T. He, J. Varani, S. Kang, JJ Voorhees: „A kollagén fragmentációja elősegíti az oxidatív stresszt és emeli a mátrix metalloproteinázt{{1} } fibroblasztokban idős emberi bőrben”, Am. J. Pathol. 2009, 174, 101-114.

[13] AC Weihermann, M. Lorencini, CA Brohem, CM De Carvalho, „Elasztin szerkezete és szerepe a bőr fotoöregedésében, Int. J. Cosmet. Sci. 2017, 39, 241-247.

[14] S. Abhijit, D. Manjushree, „Anti-hyaluronidase, the anti-elastase activity of Garcinia Indica, Int. J. Botanika. 2010, 6(3), 299-303.

[15] T. Pillaiyar, M. Manickam, V. Namasivayam, Bőrfehérítő szerek: tirozináz inhibitorok gyógyszerkémiai perspektívája. J. Enzyme Inhib. Med. Chem. 2017, 32, 403-425.

[16] M. Ashawat, M. Banchhor, S. Saraf, S. Saraf, „Herbal Cosmetics: Trends in Skin Care Formulation” Pharmacogn. Rev. 2009, 3, 82-89.

[17] FN Muanda, R. Soulimani, B. Diop, A. Dicko, „Tanulmány az illóolaj és a Stevia rebaudiana Bertoni leveléből származó kivonatok kémiai összetételéről és biológiai aktivitásairól”, LWT-Food Sci. Technol. 2011, 44, 1865-1872.

[18] NG Baydar, H. Baydar, „Olajtartalmú rózsa (Rosa damascena Mill.) kivonatok fenolos vegyületek, gyökellenes aktivitása és antioxidáns kapacitása”, Ind. Crops Prod. 2013, 41, 375-380.

[19] SM Ghoreishi, A. Hedayati, SO Mousavi, „Kvercetin extrakció a Rosa damascena Millből szuperkritikus CO2-n keresztül: Neurális hálózat és adaptív neuro-fuzzy interfészrendszer modellezése és válaszfelület-optimalizálása, J. Supercrit. Folyadékok. 2016, 112, 57-66.

[20] TEA Ardjani, JR Alvarez-Idaboy, „Az aszkorbinsav-analógok gyökfogó aktivitása: kinetika és mechanizmusok”, Theor. Chem. Acc. 2018. 137., 69.

[21] L. Panzella, „Természetes fenolvegyületek egészségügyi, élelmiszeripari és kozmetikai alkalmazásokhoz”, Antioxidánsok. 2020, 9, 427.

[22] DS Menamo, DW Ayele, MT Ali, „Réz nanorészecskék zöld szintézise, ​​jellemzése és antibakteriális aktivitása L-aszkorbinsavat redukálószerként használva”, Ethiop. j. sci. technol. 2017, 10, 209-220.

[23] NG Quilantang, SH Ryu, SH Park, JS Byun, JS Chun, JS Lee, J. p. Rodriguez, YS. Yun, SD Jacinto, S. Lee, „Különböző színű virágokból származó metanolos kivonatok gátló hatása aldóz-reduktázra és kvercetin HPLC-UV-analízisére”, Hortic. Environ. Biotechnol. 2018, 59, 899-907.

[24] SM Sabir, RH Shah, AH Shah, „A pakisztáni Phyllanthus emblica tizenkét különböző ökotípusának teljes fenol- és aszkorbinsavtartalma és antioxidáns hatásai”, Chiang Mai J. Sci. 2017, 44, 904-911.

[25] JF Morton, „The emblic (Phyllanthus emblica L.)”, Econ. Bot. 1960, 14, 119-128.

[26] NN Barthakur, NP Arnold, „Az embléma (Phyllanthus emblica L.) kémiai elemzése és táplálékforrásként való potenciálja”, Sci. Hortic. 1991, 47, 99-105.

[27] D. Huang, B. Ou, RL Prior, „The chemistry behind antioxidant capassays”, J. Agric. Food Chem. 2005, 53, 1841-1856.

[28] V. Bondet, W. Brand-Williams, CLWT Berset, „Kinetics and Mechanisms of Antioxidant Activity using the DPPH Free Radical Method”, Food Sci. Technol.-Zürich. 1997, 30, 609-615.

[29] S. Nam, HW Jang, T. Shibamoto, „Gyógynövényekből készített teák kivonatainak antioxidáns hatásai, Morus alba L., Camellia sinensis L. és Cudrania tricuspidata, valamint illékony összetevőik”, J. Agric. Food Chem. 2012, 60, 9097-9105.[30] J. Harrathi, H. Attia, M. Neffati, „Só hatása a hajtásnövekedésre és az illóolaj hozamára és összetételére pórsáfrányban (Carthamus tinctorius L.)”, J. Essent. Oil Res. 2013, 25, 482-487.

[31] A. Mar, AA Mar, PP Thin, „Study on the Phytochemical Constituents in Essential oil of Pandanus amaryllifolious Roxb. Levelek és antibakteriális hatékonyságuk”, Yadanabon Univ. Res. J. 2019, 10, 1-9.

[32] M. Rinnerthaler, J. Bischof, MK Streubel, A. Trost, K. Richter, „Oxidative stress in aging human skin”, Biomolecules. 2015, 5, 545-589.

[33] NR Perron, JL Brumaghim, „A vaskötéssel kapcsolatos polifenolvegyületek antioxidáns mechanizmusainak áttekintése”, Cell Biochem. Biophys. 2009, 53, 75-100.

[34] A. Karadag, B. Ozcelik, S. Saner, „Review of methods to meghatározni az antioxidáns kapacitást”, Food Anal. Mód. 2009, 2, 41-60.

[35] RJ Wang, ML Hu, „Öt eperfa genotípus gyümölcskivonatainak antioxidáns kapacitása különböző vizsgálatokkal és főkomponens-analízissel, Int. J. Food Prop. 2011, 14, 1-8.

[36] S. Mirunalini, M. Krishnaveni, „A Phyllanthus emblica (amla) terápiás potenciálja: az ayurvédikus csoda”, J. Basic Clin. Physiol. Pharmacol. 2010, 21, 93-105.

[37] R. Jakmatakul, R. Suttisri, P. Tengamnuay, „A Raphanus sativus gyökér antitirozináz és antioxidáns aktivitásának értékelése: fagyasztva szárított gyümölcslé és metanolos kivonat összehasonlítása”, Thai J. Pharm. Sci. 2009, 33. 22-30.

[38] SJ Lee, WJ Lee, SE Chang, GY Lee, „A ginzenozid Rg3 antitimelanogén hatása a mikroftalmiával összefüggő transzkripciós faktor extracelluláris szignál-szabályozott kináz-mediált gátlásán keresztül” J. Ginseng Res. 2015, 39, 238-242