Party1: A Srí Lankán termesztett ujjköles (Eleusine Coracana (L.) Gaertn.) gyulladásgátló és antioxidáns tulajdonságai

További információért. kapcsolatba lépnitina.xiang@wecistanche.com

A gyulladásos és oxidatív stressz okozta betegségek előfordulása világszerte növekszik, ami egyre nagyobb keresletet teremt az új források iránt.gyulladáscsökkentőügynökök ésantioxidánsok. Ez a vizsgálat a Ravi (Rawana) arachidonát {0}}lipoxigenáz (A5-LOX), xantin-oxidáz (XO), hialuronidáz, oxidatív burst gátló aktivitásának és antioxidáns tulajdonságainak meghatározására összpontosított. , és Oshadha ujj köles fajták etanolos és metanolos kivonatokkal. Az összes kivonat közül az Oshadha metanolos kivonata mutatta a legmagasabb A5-LOX (ICsvalue∶ 484,42 ug/ml) és XO (ICsvalue∶764,34 ug/ml) gátló hatást. Valamennyi kivonat kevesebb, mint 5{18}} százalékos hialuronidáz-gátló aktivitást mutatott 1 mg/ml koncentráció mellett, a metanolos kivonatok mérsékelt gátló hatást mutattak a teljes vér fagocitáiból generált reaktív oxigénfajtákra (ROS), az ICs{20}}értékek között 26,9 és 27,7 ug/ml között van, az ibuprofénhez képest (IC-érték: 11,18 ug/ml). Minden kivonat erős gátlást mutatott az emberi vérből izolált polimorfonukleáris neutrofilekből termelődő ROS-ban az ibuprofénhez képest (IC-érték: 2,47 ug/ml), a metanolos és etanolos kivonatok IC-értékei pedig 0,29-0,47 ug/ml és 1,35 ug/ml között voltak. illetőleg. Minden kivonat jelentősen nagy mennyiségű fenolos vegyületet tartalmazott, beleértveflavonoidokés a 2,2'-azino-bisz(3-etilbenzotiazolin-6-szulfonsav) (ABTS)kation,2,2-difenil-1-pikril-hidrazil( DPPH) és oxigéngyökök. Emellett képesek voltak a fémionok redukálására és a fémionok kelátozására, amelyek lezárták a gyökképző reakciókat. Ez az első jelentés az A5-LOX-ról, XO-ról, a hialuronidázról és az oxidatív kitörést gátló tulajdonságokról a Srí Lankán termesztett kölesfajták bármely kivonatában. Az eredmények felfedték, hogy ezek az ujjköles-kivonatok gyulladáscsökkentő gyógyszerjelöltek természetes forrásaiként használhatók. Ezenkívül az eredmények azt mutatták, hogy a Ravi, Rawana és Oshadha fajták jó antioxidánsforrások. Ezért ezeknek a kölesfajtáknak a rendszeres fogyasztása fontos szerepet játszhat az oxidatív stresszel összefüggő betegségek megelőzésében és étrendi kezelésében.

További termékekért kattintson ide

1. Bemutatkozás

Gyulladásvédekező reakciója aimmunisrendszer a káros ingerek, például kórokozók, sérült sejtek, allergiás vagy kémiai irritációk megszüntetésére, valamint a gyógyulási folyamat elindítására. Bár a gyulladás normális válasz, ha nem kontrollálják, a túlzott gyulladás számos akut és krónikus betegséghez vezet. Jelenleg világszerte növekszik a gyulladásos betegségek prevalenciája, ami egyre nagyobb keresletet teremt új és hatékony gyulladásgátló szerek iránt [1, 2].

Az arachidonát 5-lipoxigenáz(A5-LOX) kulcsfontosságú enzim, amely részt vesz a gyulladásos betegségek és allergiás reakciók erős mediátorainak bioszintézisében. Katalizálja a leukotriének képződését arachidonsavból [3]. A leukotriének endogén mediátorok számos gyulladásos betegség, köztük az asztma, allergiás rhinitis, krónikus bronchitis, rheumatoid arthritis, gyulladásos bélbetegség és allergiás reakciók patogenezisében [3,4]. Ezért az A5-LOX gátlása fontos a különböző gyulladásos betegségek megelőzésében és kezelésében.

A xantin-oxidáz (XO) katalizálja a hipo-xantin xantinná és a xantin húgysavvá történő oxidációját[5]. Az XO-gátlók gátolják a húgysav bioszintézisét, és ennek következtében csökkentik a húgysav szintjét, valamint a vaszkuláris oxidatív stresszt. Az XO katalitikus hatása során reaktív oxigénfajták (ROS) képződnek, így az XO más gyulladásos betegségekben is patogenetikai szerepet játszik. Következésképpen az XO inhibitorok fontosak az XO katalitikus hatásával kísért különféle gyulladásos betegségek kezelésében [2,5].

A hialuronidáz egy lizoszomális enzim, amely katalizálja a mukopoliszacharidok, például a hialuronsav hidrolízisét. Rheumatoid arthritisben a hialuronidáz túlzott mértékben lebontja a hialuronsavat, csökkenti annak mennyiségét és molekulatömegét, ami ízületi tüneteket okoz [6]. A hialuronsav lebomlásának gátlása kritikus és elengedhetetlen a hialuronidáz által közvetített kóros állapotok szabályozásában[7].

Gyulladásos állapotokban az immunsejtek a gyulladás helyéhez vonzódnak. A védekezési és immunológiai reakciók során az immunsejtekben található NADPH-oxidázok aktiválódnak, és nagy mennyiségben termelnek ROS-t, oxidatív robbanást okozva [1, 8]. Alacsony és mérsékelt mennyiségű ROS előnyös a különböző élettani folyamatokban. A ROS túltermelése azonban deregulálja a sejtfunkciókat, ami viszont fokozza a gyulladásos állapotot [8,9]. Ezért a ROS által kiváltott oxidatív robbanás gátlása potenciális gyógymód a gyulladásos betegségek megelőzésében és kezelésében.

Az oxidatív foszforiláció soránszabad radikálisokmelléktermékként képződnek a ROS-ok is [10]. A normál sejtanyagcsere mellett számos egyéb tényező is vezethet szabad gyökök képződéséhez, és ha a szabad gyökök képződésének sebessége meghaladja a semlegesítés sebességét, oxidatív stressz létrejön, és jelentősen hozzájárul minden gyulladásos betegséghez. Mivel az antioxidánsok képesek megakadályozni a szabad gyökök képződését és kioltják a szabad gyököket, az antioxidánsok és a szabad gyökök egyensúlya elengedhetetlen a fiziológiai funkciók megfelelő fenntartásához [8, 11, 12].

Az ujjköles (Eleusine coracana(L.)Gaertn.) a legfontosabb kis köles a trópusokon, és az ujjköles számos terápiás tulajdonságáról számoltak be korábban [13-17]. A jelenleg Srí Lankán termesztett és fogyasztott kölesfajták esetében azonban hiányzik a tudományos bizonyíték a terápiás tulajdonságokról.

és potenciális egészségügyi előnyök a fogyasztók számára. Következésképpen elengedhetetlen a Srí Lanka-i ujjkölesfajták gyulladáscsökkentő és antioxidáns tulajdonságainak tanulmányozása, valamint a fogyasztók táplálkozási és egészségi állapotának javításában rejlő lehetőségek felismerése. A gyulladásos és oxidatív stresszel összefüggő betegségek előfordulása világszerte növekszik, ami egyre növekvő keresletet teremt a gyulladásgátló szerek és antioxidánsok új forrásai iránt[1, 2]. Ezzel a háttérrel a jelen tanulmány a Srí Lanka-i ujjkölesfajták in vitro gyulladásgátló tulajdonságainak értékelésére összpontosított az A5-LOX, XO, hialuronidáz, oxidatív kitörést gátló hatások és antioxidáns tulajdonságok tekintetében, különböző antioxidáns tesztek segítségével. .

2. Anyagok és módszerek

2.1.Mintagyűjtés és -előkészítés. A Mezőgazdasági Minisztérium által Srí Lankán termesztésre javasolt ujjas kölesfajtákat, nevezetesen Ravi, Rawana és Oshadha, a Srí Lanka-i Mahailuppallama-i Field Crops Research and Development Institute-tól (FCRDI) gyűjtötték be. Ezeket a fajtákat kísérleti parcellákon termesztették a Low Country Dry Zone-ban, az FCRDI-ben, Mahailuppallama államban, és a magokat a Srí Lanka-i Mezőgazdasági Minisztérium Vetőmag-tanúsítási Szolgálata tanúsította.

Az ujjköles magjait hántoltuk (TM 05C, Satake Cor-poration, Japán), a teljes kiőrlésű gabonából származó lisztet pedig őrléssel (Pulverisette 14, Fritsch, Németország) és 0,5 mm-es szitán való átszúrással nyertük. A teljes kiőrlésű gabonából készült lisztet külön-külön etanollal és metanollal extraháltuk. A teljes kiőrlésű lisztet (100 g) az oldószerrel (400 ml) egy éjszakán át szobahőmérsékleten (28±2 fok) mágneses keverővel extraháltuk, és 4000 fordulat/perc sebességgel 20 percig centrifugáltuk. A felülúszót külön gyűjtöttük, és a maradékot kétszer extraháltuk azonos körülmények között. A felülúszókat egyesítettük, és csökkentett nyomáson 40 °C-on rotációs bepárló (R-114, Büchi Labortechnik AG, Svájc) alkalmazásával szárazra pároltuk. Az oldószermentes kivonatokat légmentesen záródó üvegedényekben -20 fokon tároltuk az elemzéshez való felhasználásig.

2.2.Enzimek, vegyi anyagok és berendezések. Folin-Ciocalteu fenol reagens, alumínium-klorid, 2,4,6-Tri(2-piridil)-s-triazin (TPTZ), 2,2'-azobisz (2-amidinopropán)-dihidroklorid (AAPH),2,2-difenil-1-pikrilhidrazil (DPPH), kvercetin, 6-hidroxi-2,5,7,8-tetrametilkromán{{19} }karbonsav (Trolox), etilén-diamin-tetraecetsav (EDTA), 2,2'-azino-bisz(3-etilbenzotiazolin-6-szulfonsav) diammóniumsó (ABTS), fluoreszcein, 3-( 2-Piridil)-5,6-difenil-1,2,4-triazin-p,pdiszulfonsav-mononátriumsó

hidrát (ferrozin), arachidonát 5-lipoxigenáz, linolsav, baicalein, xantin-oxidáz, xantin, allopurinol, hialuronidáz, hialuronsav-nátriumsó, p-dimetilaminobenzaldehid, galluszsav, csersav, dimetil-szulfoxid, és mástól vásárolták Sigma-Aldrich, MO, USA. A HBS* plus-t és a HBSS-t a Thermo Fisher Sci-entific Inc.-től (Massachusetts, USA) vásároltuk. A Zymosant a Wako Pure Chemical Industries Ltd.-től (Oszaka, Japán) vásárolták.

A Luminolt (3-aminoftálhidrazid) az Alfa Aesar GmbH & Co KG, Karlsruhe, Németország vásárolta. A limfocita elválasztó tápközeget az MP Biomedicals, Inc.-től (Ohio, USA) vásároltuk. A kísérletekben használt összes többi vegyszer és reagens ACS, HPLC és analitikai minőségű volt. Az oxigéngyök abszorbancia kapacitásának meghatározásához fluoreszcens mikrolemez-leolvasót (SpectraMax-Gemini EM, Molec-ular Devices Inc., USA) használtunk. A kemilumineszcenciás vizsgálatokhoz luminométert (Luminoskan RS, Labsystems, Finnország) használtunk. Az összes többi biológiai vizsgálathoz mikrolemez-leolvasót (Spectra-Max Plus384, Molecular Devices Inc, USA) használtunk.

2.3.A teljes fenoltartalom meghatározása. A teljes fenoltartalmat (TPC) a Folin-Ciocalteu módszerrel határoztuk meg (【18】). Ujjköleskivonatot (2{12}}ul) összekevertünk 110 ul frissen készített, 10-szer hígított Folin-Ciocalteu reagenssel és 70 ul nátrium-karbonát-oldattal (10 tömegszázalék), és szobahőmérsékleten (RT) 30 percig inkubáltuk. Az abszorbanciát 765 nm-en mértük. Gallusavat használtunk a standard görbe ábrázolásához (y=0.0532x plusz 0.0339;r=0.9992), és a TPC-t mg galluszsav-ekvivalensben (GAE) számítottuk ki 100 g lisztre, szárazon. súly alapján.

2.4. A teljes flavonoidtartalom meghatározása. A teljes flavonoid tartalmat (TFC) alumínium-klorid kolorimetriás módszerrel határoztuk meg [19]. Az ujjköles-kivonatot (100 ul) összekevertük alumínium-klorid-oldattal (2 tömeg/térfogat százalék, 100 ul), 10 percig szobahőmérsékleten inkubáltuk, és az abszorbanciát 415 nm-en mértük. A standard görbe ábrázolásához kvercetint használtunk (y=0.0349x-0.2091; r²=0.9974), a TFC-t pedig mg kvercetin-ekvivalensként számítottuk ki 100 g lisztre számítva, száraz tömegre vonatkoztatva.

2.5. A DPPH gyökfogó aktivitásának meghatározása. A DPPH gyökök megkötő képességét Blois [20] által leírt módszer szerint határoztuk meg. Finger mil-let kivonatot (50 ul) összekevertünk 90 ul metanollal és 60 ul DPPH oldattal (0,02 tömeg/térfogat%), és szobahőmérsékleten inkubáltuk sötétben 10 percig. A minta (As) és a kontroll (Ac) abszorbanciaértékeit 517 nm-en mértük. A Troloxot standardként használták. A DPPH gyökfogó aktivitását százalékos gátlásként az (1) egyenlet segítségével számítottuk ki. Az ICs értéket dózis-válasz grafikonok segítségével számítottuk ki.

2.6. Az ABTS kation gyökfogó aktivitásának meghatározása. Az ABTS kationgyökök megkötő képességét a Re és munkatársai által leírt módszer szerint határoztuk meg. [21] némi módosítással. Az ABTS kationgyökoldatot úgy állítottuk elő, hogy 10 mg ABTS-t 2,5 ml kálium-perszulfátban 37 °C-on sötétben 16 órán át inkubáltunk, majd 7-szer hígítottunk 50 mM foszfátpuffer sóoldattal (pH 7,4). Az ujjköles-kivonatot (12,5 ul) összekevertük foszfát puffer sóoldattal (147,5 ul) és frissen készített ABTS kation gyök oldattal (40 ul), és szobahőmérsékleten inkubáltuk sötétben 10 percig. A minta (As) és a kontroll (Ac) abszorbanciaértékeit 734 nm-en mértük. A Troloxot standardként használták. Az ABTS kation gyökfogó aktivitását százalékos gátlás formájában a (2) egyenlet segítségével számítottuk ki. Az ICs értéket dózis-válasz grafikonok segítségével számítottuk ki.

2.7. Az oxigén gyök abszorpciós kapacitásának (ORAC) meghatározása. Az ORAC-t az Ou és munkatársai által leírt módszer szerint értékelték ki.[22] néhány módosítással.Fluoreszcein (4,8 uM) és AAPH (40 mg/ml) oldatokat készítettünk 75 mM foszfát pufferben (pH 7,4). Az ujjköles-kivonatot (10 ul) összekevertük 40 ul foszfát pufferrel és 100 ul fluoreszceinnel, és 37 fokon 10 percig inkubáltuk. AAPH-t (50 ul) adtunk hozzá, és a fluoreszcein bomlását 494 nm-es, illetve 535 nm-es gerjesztési és emissziós hullámhosszon mértük 37 °C-on 35 percig 1 perces időközönként fluoreszcens mikrolemez-leolvasóval. Standardként Tro-loxot használtunk. Feljegyeztük a minta (AUC), a kontroll (AUC) és a Trolox (AUC-) görbe alatti területét (AUC). Az ORAC értéket a (3) egyenlet segítségével számítottuk ki, ahol konc. a koncentrációt jelenti. Az eredményeket mg Trolox-ekvivalensben fejeztük ki 100 g lisztre számítva, száraz tömegre vonatkoztatva.

2.8. A vas-ion kelátképző (FIC) aktivitásának meghatározása. A vasionok kelátképző képességét Carter [23] által leírt módszerrel határoztuk meg. Az ujjköles-kivonatot (100 ul) összekeverjük 1 mM vas-szulfát oldattal (20 ul) és 40 ul desztillált vízzel. Ezután 1 mM ferrozin oldatot (40 ul) adtunk hozzá, és 10 percig szobahőmérsékleten inkubáltuk. A minta (As) és a kontroll (Ac) abszorbanciaértékeit 562 nm-en rögzítettük. Standardként EDTA-t használtunk. A FIC-aktivitást százalékos kelátképzésben a (4) egyenlet segítségével számítottuk ki.

2.9. A vas-redukáló antioxidáns teljesítmény (FRAP) meghatározása. A FRAP meghatározása Benzine és Szeto [24] által leírt módszer szerint történt, némi módosítással. A FRAP reagenst úgy állítottuk elő, hogy 300 mM acetát puffert (pH 3,6), 20 mM vas-kloridot és 10 mM TPTZ-t kevertünk össze 10:1:1 arányban, és 37 °C-on 10 percig inkubáltuk. Az ujjköles kivonatot (20 ul) összekevertük 30 ul acetát pufferrel és 150 ul frissen készített FRAP reagenssel, szobahőmérsékleten inkubáltuk 8 percig, és az abszorbanciát 600 nm-en rögzítettük. A Troloxot használták a standard görbe (y=0,17x plusz 0,15; 产=1,00) ábrázolására, a FRAP pedig mg Trolox-egyenértékben számolta ki 100 g liszt száraz tömegére vonatkoztatva.

2.10. Az A5-LOX-gátló aktivitás meghatározása. A {{0}}LOX-gátló aktivitást Tappel [25] által leírt módszer szerint értékeltük, némi módosítással. Az ujjköleskivonatot (10ul) összekevertük 115 ul 100 mM nátrium-foszfát pufferrel (pH 8,0) és 50 ul A5-LOX oldattal (5000 U/ml), és szobahőmérsékleten inkubáltuk 10 percig. A reakciót 25 ul 0,08 mM linolsav hozzáadásával indítottuk el. Az abszorbancia változását 234 nm-en, 1 perces időközönként 10 percig szobahőmérsékleten rögzítettük, és a minta (Vmaxs) és a kontroll (Vmaxc) maximális sebességét (Vmxk) rögzítettük. Baicaleint használtak standardként. A 5-LOX-gátló aktivitást százalékos életkor-gátlásként az (5) egyenlet segítségével számítottuk ki. Az ICs.értéket dózis-válasz grafikonok segítségével számítottuk ki.

2.11. Az XO-gátló aktivitás meghatározása. Az XO-gátló aktivitást a Lee és munkatársai által leírt módszer szerint határoztuk meg. [26] némi módosítással. Az ujjköles-kivonatot (1{7}}ul) összekevertük 15 0ul 50 mM nátrium-foszfát pufferrel (pH 7,4) és 20 ul XO-val (0,15 U/ml), és 10 percig szobahőmérsékleten inkubáltuk. A reakciót 20 ul 0,1 mM xantin hozzáadásával indítottuk el. Az abszorbancia változását 295 nm-en, percenként 15 percig szobahőmérsékleten rögzítettük, és a minta (Vmaxs) és a kontroll (Vmaxc) Vmax értékeit rögzítettük. Standardként allopurinolt használtunk. Az XO-gátló aktivitást százalékos gátlás formájában a (6) egyenlet segítségével számítottuk ki. Az ICs-értéket dózis-válasz grafikonok segítségével számítottuk ki.

2.12.A hialuronidáz gátló aktivitás meghatározása. A hialuronidáz gátló aktivitást a Sahasrabudhe és Dedhar [27] által leírt módszer szerint értékelték, néhány módosítással. Az ujjköles-kivonatot (5{15}}ul) összekevertük 1 0ul hialuronidázzal (8400 U/ml), és 37 fokon 10 percig inkubáltuk. Az enzimet úgy aktiváltuk, hogy 20 ul kalcium-kloridot (12,5 mM) adtunk hozzá, és 37 fokon 10 percig inkubáltuk. A reakciót nátrium-hialuronát (50 ul) hozzáadásával indítottuk meg, és 37 °C-on 40 percig inkubáltuk. Ezután 10 ul 0,9 M nátrium-hidroxidot és 20 ul 0,2 M nátrium-borátot adtunk hozzá, és 100 °C-on 3 percig inkubáltuk. Szobahőmérsékletre hűtés után 50 ul 67 mM p-dimetil-amino-benzaldehidet adtunk hozzá, és 37 °C-on 10 percig inkubáltuk. A minta (As) és a kontroll (Ac) abszorbanciaértékeit 585 nm-en mértük. Standardként csersavat használtunk. A hialuronidáz gátló aktivitást százalékos gátlás formájában a (7) egyenlet segítségével számítottuk ki.

2.13. Az oxidatív robbanást gátló hatások meghatározása. A teljes emberi vérben és az izolált polimorfonukleáris neutrofilekben az oxidatív burst gátló aktivitások gyulladásgátló potenciálját a luminol-fokozott kemilumineszcencia vizsgálattal [28, 29] határoztuk meg, néhány módosítással. A kísérleteket Dr. Panjwani Molekuláris Orvostudományi és Gyógyszerkutatási Központjában, a Nemzetközi Kémiai és Biológiai Tudományok Központjában, a Karacsi Egyetem, Pakisztánban végezték, és az intézet rendelkezik a független etikai bizottság, az ICCBS, UoK etikai engedélyével az emberi vérrel kapcsolatos vizsgálatokhoz. . No:ICCB-S/IEC-008-BC-2015/Protocol/1.0.

2.13.1. Az oxidatív kitörést gátló aktivitás meghatározása teljes emberi vérben. Emberi vért (1 ml) aszeptikus körülmények között vettünk véna punkcióval egy heparinizált csőbe egy egészséges, nemdohányzó önkéntestől, aki egy hétnél hosszabb ideig nem szedett semmilyen gyógyszert vagy étrend-kiegészítőt, és hígítottuk (1:20 hígítás) HBS plusz*(Hanks Balanced) oldattal. Kalciumot és magnéziumot tartalmazó sóoldat). Az ujjköles-kivonatot (25 ul) hígított teljes vérrel (25 ul) kevertük, és 37 °C-on 15 percig inkubáltuk. Ezután 25 ul szérum opszonizált zimozánt és 25 ul luminolt adtunk hozzá. Az oxidatív burst ROS termelést 50 percig követtük luminométerrel, 30 másodperces időközönként ismételt szkenneléssel és 1 másodperces mérési idővel. Az ibuprofent standard gyógyszerként használták. A gátlási százalékot a (8) egyenlet segítségével számítottuk ki.

ahol RLU a luminométer leolvasása relatív fényegységben (RLU) kifejezve a vezérléshez, és RLU a luminométer leolvasása RLU-ban a mintára vonatkozóan. Az ICs értéket dózis-válasz grafikonok segítségével számítottuk ki.

2.13.2. Az oxidatív burst gátló aktivitás meghatározása izolált polimorfonukleáris neutrofilekben. Teljes emberi vért (10 ml) összekevertünk egyenlő térfogatú HBSS-sel (Hanks Balanced Salt Solution, kalcium és magnézium nélkül) és limfocita-leválasztó tápközeggel (LSM), és hagytuk, hogy az eritrociták leülepedjenek 30 percig szobahőmérsékleten. Ezután a plazmát óvatosan LSM-re helyeztük, és 400 x g-vel 20 percig szobahőmérsékleten centrifugáltuk. A felülúszót eltávolítottuk; A kapott pellet vörösvértesteit hideg ionmentes vízzel való keveréssel lizáltuk, hideg HBSS7-tel kevertük, és 300 × g-vel centrifugáltuk 10 percig 4 fokon. A pelletet kétszer mostuk, és a kapott polimorfonukleáris neutrofilek életképességét Trypan blue kizárási módszerrel ellenőriztük. A sejtek koncentrációját 1×10 fokos sejt/ml értékre állítottuk be. Az izolált polimorfonukleáris neutrofileket (25 αl) összekevertük ujjköleskivonattal (25 ul) és 15 percig 37 °C-on inkubáltuk. Ezután 25 ul szérum opszonizált zimozánt és 25 ul luminolt adtunk hozzá, és az oxidatív burst ROS termelést 50 percig követtük luminométerrel, 30 másodperces időközönként ismételt szkenneléssel és 1 s pontos mérési idővel. Az ibuprofent standard gyógyszerként használták. A gátlási százalékot a (8) egyenlet segítségével számítottuk ki.

2.14. Statisztikai analízis. Az egyes kísérletek adatait az IBM SPSS Statistics (20-as verzió) szoftverrel statisztikailag elemeztük, és az eredményeket átlag±standard hiba (SE) formában fejeztük ki. A statisztikai szignifikanciát 95 százalékos konfidenciaszintre állítottuk be. Az egytényezős varianciaanalízist (ANOVA) és a Tukey-tesztet alkalmaztuk a fajták és kivonatok közötti különbségek meghatározására. A korrelációs elemzéshez Pearson-féle korrelációs együtthatót használtunk.

A gyulladás osztályozása

Akut gyulladás: elsősorban bőrpír, duzzanat, fájdalom stb. jellemezhető, vagyis főleg az érrendszer reakciójából álló gyulladás.

Krónikus gyulladások: főként egyes krónikus gyulladásos betegségek, például krónikus gyomor-bélhurut, krónikus hepatitis, visszatérő nőgyógyászati ​​gyulladások és egyéb betegségek.

Gyulladás oka

Minden olyan tényező, amely szövetkárosodást okozhat, gyulladást okozhat, vagyis a gyulladásos tényezők a következő kategóriákba sorolhatók:

(1) Biológiai tényezők

A gyulladások leggyakoribb okai a baktériumok, vírusok, mikoplazmák, gombák, spirocheták és paraziták. A biológiai kórokozók által okozott gyulladást fertőzésnek is nevezik. A baktériumok által termelt exotoxinok és endotoxinok közvetlenül károsíthatják a szöveteket; a vírus replikációja a fertőzött sejtekben sejtnekrózishoz vezet; bizonyos antigén kórokozók károsítják a szöveteket a fertőzést követően kiváltott immunválaszok révén, például parazitafertőzések és tuberkulózis esetén.

2) Fizikai tényezők

Magas hőmérséklet, alacsony hőmérséklet, radioaktív anyagok, ultraibolya sugarak stb., valamint mechanikai sérülések.

(3) Kémiai tényezők

Exogén vegyszerek, például erős sav, erős lúg és terpentin. Endogén toxikus anyagok, mint például a nekrotikus szövetek bomlástermékei és metabolitjai, mint például a karbamid, bizonyos patológiás körülmények között felhalmozódnak a szervezetben.

(4) Idegen test

Az emberi szervezetbe különféle úton bejutott idegen testek, például különböző fémek, fatörmelék, levegőben lévő por, műtéti varratok stb., eltérő antigenitásuk miatt eltérő mértékű gyulladásos reakciókat válthatnak ki.

(5) Nekrotikus szövet

Az olyan okok, mint az ischaemia vagy a hipoxia, szöveti nekrózist okozhatnak, amely potenciális gyulladásos tényező. A pangásos vérzéses sávok és a gyulladásos sejtek infiltrációja a friss infarktusok szélein egyaránt a gyulladás megnyilvánulása.

(6) Allergia

Ha a szervezet immunválasza rendellenes, az nem megfelelő vagy túlzott immunválaszt válthat ki, szövet- és sejtkárosodást és gyulladást okozva. Például allergiás rhinitis, vastagbélgyulladás, csalánkiütés, tuberkulózis, glomerulonephritis és más betegségek.

Az antibiotikumok baktériumölő és gyulladáscsökkentő hatásúak, hosszú távú használatuk elpusztítja az emberi szervezet normális flóráját, elpusztítja a jó baktériumokat, felborítja a bélflóra egyensúlyát, különféle bélműködési zavarokat és mellékhatásokat okoz, másodlagos fertőzést okoz, csökkenti a szervezetet. ellenállás. Ezenkívül az antibiotikumok többnyire a májban és a vesében metabolizálódnak, és az antibiotikumokkal való visszaélés nagy valószínűséggel károsítja a májat és a vesét. Minden gyulladáscsökkentő gyógyszernél figyelni lehet a "rossz máj- és veseműködésű betegeknél óvatosan kell alkalmazni" feliratra. Ezenkívül az antibiotikumok növelhetik a gyógyszerekre adott allergiás reakciókat is. Az elmúlt években az allergiás rhinitis és az allergiás asztma magas előfordulása az antibiotikumokkal való visszaéléshez kapcsolódik.

Kísérletek kimutatták, hogy a Cistanche pipiensis echinakozidban gazdag kivonata jó javító hatással van a vastagbélgyulladásra; A Cistanche glikozid K és a pipozid B jó gátló hatással bír a nitrogén-monoxid szekréciójára a sejtekben, ami azt mutatja, hogy jó gyulladáscsökkentő hatása van.Cistancheegy kínai gyógyászati ​​anyag, amelynek eredete megegyezik a gyógyszerekkel és az élelmiszerekkel. Hazámban a tíz legnépszerűbb kínai gyógynövényes gyógyszer egyike. A sivatag mélyéről származó kincs és természetes tonik. Cistanche A Cistanche közel 2,000 éves gyógyászati ​​múlttal rendelkezik. Először a "Shen Nong's Materia Medica"-ban rögzítették. 2005-ben a Cistanche valódi gyógyászati ​​anyagként bekerült a "Kínai Népköztársaság Gyógyszerkönyvébe". A Cistanche ősidők óta jó tonik, minden toxicitási rekord nélkül, ami teljes mértékben bizonyítja biztonságosságát.