Poliszacharidok ultrahangos kivonása Cistanche Tubulosa-ból: folyamatoptimalizálás, frakcióizolálás, szerkezeti jellemzés és fáradtság elleni hatások

 

Absztrakt:A tanulmány célja a Cistanche tubulosa poliszacharidok (CP) extrakciós folyamatának optimalizálása, valamint szerkezeti jellemzőik és fáradtság elleni hatásuk vizsgálata volt. Az egytényezős kísérletek alapján és a válaszfelület módszertanával optimalizálva az optimális feltételek a 20 perces ultrahangos kezelés, az oldószer-anyag arány 20:1 és a 220 W ultrahang teljesítmény, 8,55% CP-t eredményeztek. A cellulóz oszlopkromatográfia ezt követően egy semleges frakciót (CPN) és három savas frakciót (CPA-1, CPA-2, CPA-3) hozott létre. Közülük a CPN mutatta a legnagyobb visszanyerést (40,3%), a legmagasabb szénhidráttartalmat (39,5%), és a CPA-2-vel összehasonlítható erős antioxidáns aktivitást; ezért a CPN-t választották a mélyreható jellemzéshez. A szerkezeti elemzések jellegzetes poliszacharid funkciós csoportokat, a glükóz és a mannóz túlsúlyát, valamint két, markánsan eltérő molekulatömegű komponenst tártak fel. In vivo a CPN szignifikánsan meghosszabbította az egerek súlyhordozási idejét, csökkentette a szérum karbamid-nitrogén- és laktátszintjét, valamint megnövelte a máj glikogénszintjét, megerősítve a fáradtság elleni aktivitást. Ezek az eredmények tudományos alapot adnak a Cistanche tubulosa poliszacharidok fáradtság elleni funkcionális termékekké és kapcsolódó kereskedelmi alkalmazásokká történő fejlesztéséhez.

Kulcsszavak: Cistanche tubulosa poliszacharidok; válaszfelület módszertana; extrakciós folyamat; szerkezeti jellemzés; fáradtság gátló; új előnyök a CP számára a funkcionális élelmiszerekben és a tápanyagokban

 

Bevezetés

Cistanche tubulosa (Schenk) Wight,a "sivatag ginzengjeként" ismert, nagyra becsült gyógyászati ​​és ehető homológ növényt Kínában régóta használják [1]. Fő bioaktív összetevői közé tartoznak a poliszacharidok, fenil-etanol-glikozidok és iridoidok; ezek közül a poliszacharidok fontos élettani funkciókat mutatnak, mint például immunmoduláló [2], antioxidáns [3], fáradtság gátló [4] és hipoglikémiás hatások [5], amelyek széles körű alkalmazási lehetőségeket mutatnak a gyógyszerekben, egészségügyi termékekben és funkcionális élelmiszerekben [6]. A hagyományos poliszacharid extrakciós módszerek (pl. forró vizes merítés és reflux) gyakran szenvednek a hosszú időtartamtól, az alacsony hatékonyságtól, a magas energiafogyasztástól, valamint a poliszacharid szerkezetének és aktivitásának esetleges károsodásától [7–9]. A forró vizes extrakción [10] és a refluxon [11] túl Teng et al. [12] összehasonlította az ultrahangos, a mikrohullámú és a kombinált ultrahang-mikrohullámos extrakciót, és megállapította, hogy a szinergikus ultrahang-mikrohullámú módszer a legjobb hozamot (11,00%), 1,28%-kal magasabb, mint a forró vizes extrakció, ezt követte a mikrohullámú és ultrahang önmagában.

A poliszacharidok szétválasztása és tisztítása nagy tisztaságú, szerkezetileg meghatározott és bioaktív monoanyagok vagy specifikus frakciók előállítása a fehérjéket, nukleinsavakat, lipideket és egyéb szennyeződéseket tartalmazó nyers poliszacharidokból. Ailadan Maimaitiaili [11] a nyers Cistanche poliszacharidokat AB-8 makroporózus gyantával színtelenítette és fehérjementesítette, majd DEAE-650M cellulózzal ionmentesített víz és NaCl gradiens felhasználásával elválasztotta őket, így egy semleges és öt savas poliszacharidot kaptak; in vitro a semleges frakció kiváló antioxidáns aktivitást mutatott. Jelenleg a Cistanche poliszacharidokon végzett bioaktivitási vizsgálatok főként az antioxidáns, gyulladásgátló és öregedésgátló hatásokra összpontosítanak [13], míg a fáradtság elleni vizsgálatok viszonylag ritkák.

Újabb természetes termék-extrakciós technikaként az ultrahanggal segített extrakció (UAE) rövid extrakciós időt, nagy hatékonyságot, egyszerű működést és fűtés nélküli vagy alacsony fűtést kínál, így elkerülhető a hőérzékeny komponensek termikus lebomlása, és javítható a hozam és a tisztaság; széles körben használták növényi poliszacharidokhoz [14]. A Cistanche tubulosa poliszacharidok (CP) extrakciójának egyesült arab emírségekbeli feltételei azonban további optimalizálást igényelnek a hatékonyság maximalizálása érdekében. A válaszfelületi módszertan (RSM), egy matematikai modellezésen alapuló hatékony tervezési és optimalizálási megközelítés, amely lehetővé teszi több tényező és kölcsönhatásuk átfogó elemzését az optimális paraméterek meghatározásához.

Ebben a tanulmányban RSM-et használtunk az Egyesült Arab Emírségek CP-re vonatkozó folyamatának optimalizálására, elkülönítettük és azonosítottuk a kapott nyers poliszacharidokat, összehasonlítottuk a frakciók in vitro antioxidáns aktivitását, és a legerősebb antioxidáns aktivitás alapján értékelt fáradtság elleni hatások alapján in vivo. A cél az, hogy tudományos és technikai támogatást nyújtsunk a Cistanche tubulosa erőforrások értéknövelt hasznosításához, és felgyorsítsuk az átültetést funkcionális termékekké a wellness-ipar számára.

Cistanche tubulosa poliszacharidok: Előnyök

 

 

 

A Cistanche előnyeinek listája

 

 

Szerezzen magas poliszacharidot a Cistanche tubulosa-ból

 

 

1 Anyagok és módszerek

1.1 Anyagok és műszerek

Cistanche tubulosa was purchased from the Urumqi dried fruit market; polysaccharides were prepared in-house at Xinjiang Agricultural University. Absolute ethanol, acetone, and ether were analytical grade (Tianjin Zhiyuan Chemical Reagent Co., Ltd.). DPPH was from Shanghai Ruji Biotechnology Development Co., Ltd. ABTS and shiitake polysaccharide (purity >98%-a Solarbióból (Peking) származott.

Fő felszerelés: XL‑02A daráló (Yechang Machinery Co., Ltd.); HH-S digitális állandó hőmérsékletű vízfürdő (Jiangsu Jintan Medical Instrument Factory); JBT/C-YCL400T/3P(D) ultrahangos gyógyszerészeti processzor (Jining Jinbait Special Engineering Machinery Co., Ltd.); VP50 vákuumszűrő egység (Beijing Labtech); RE-52B rotációs elpárologtató (Shanghai Yarong Biokémiai Műszergyár); 80-1 centrifuga (Jintan Hengfeng Instrument Factory); UV-2550 spektrofotométer (Shimadzu, Shanghai).

Állatok: Ötven hím SPF Kunming egér, testtömeg 20,00 ± 2,00 g, 3-4 hetesek, a Xinjiang Medical University Laboratory Animal Centertől vásárolták (SYXK-Xin 2024-0001 engedély).

 

Cistanche tubulosa poliszacharidok: Előnyök

 

 

1.2 Módszerek

1.2.1. A poliszacharidok extrakciós eljárása

A Cistanche szeleteket porrá törjük, és egy 50 mesh-es szitán átpasszírozzuk. A port egy gömblombikba helyeztük, 8 térfogat 80%-os etanollal összekevertük, 2 órán át 90 fokon visszafolyató hűtő alatt forraltuk, és leszűrtük. A maradékot levegőn szárítottuk. A szárított maradékhoz desztillált vizet adunk, és ultrahanggal extraháljuk; az extraktumot leszűrjük, a szűrletet megtartjuk, és a maradékot egyszer újra extraháljuk. A két szűrletet egyesítjük, és az eredeti térfogat egynegyedére koncentráljuk. Három térfogat abszolút etanolt adunk a koncentrátumhoz, 12 órán át 4 °C-on állni hagyjuk, és vákuumban szűrjük, hogy összegyűjtsük a csapadékot. A csapadékot egymás után abszolút etanollal, acetonnal és éterrel mostuk, szárítottuk és lemértük, így nyers CP-t kaptunk.

 

Cistanche tubulosa poliszacharidok: Előnyök

 

1.2.2 Egytényezős kísérletek

1.2.2.1. Az oldószer/anyag arány hatása a CP-hozamra

Öt adag Cistanche port (egyenként 4 g) készítettünk. Az extrakciós időt és az ultrahangos teljesítményt 20 percen és 175 W-on rögzítették. A 10:1, 15:1, 20:1, 25:1 és 30:1 oldószer/anyag arány (ml:g) CP-hozamra gyakorolt ​​hatását vizsgálták. Minden kísérletet három párhuzamosban végeztünk.

 

1.2.2.2 Az ultrahang teljesítmény hatása a CP hozamra

Öt adag port (egyenként 4 g) extraháltunk az 1.2.2.1 pontban meghatározott optimális oldószer/anyag arány mellett, 20 percben rögzített extrakciós idővel. 125, 150, 175, 200 és 225 W-os ultrahang teljesítményszinteket teszteltek. Három párhuzamos kísérletet végeztünk.

 

1.2.2.3 Az ultrahangos idő hatása a CP-hozamra

Öt adag port (egyenként 4 g) extraháltunk az optimális oldószer/anyag arány (1.2.2.1-től) és optimális ultrahangteljesítmény (1.2.2.2-től) mellett. 10, 15, 20, 25 és 30 perces ultrahangos időket vizsgáltunk. Mindegyik feltételt három példányban futtattuk le.

 

1.2.3. Válaszfelületi módszertan (RSM)

Az egytényezős eredmények alapján a Box–Behnken-tervet alkalmaztuk, CP-hozamot választva, és ultrahangidőt, oldószer-anyag arányt és ultrahangteljesítményt mint tényezőket. Az RSM-optimalizálást a Design-Expert 8-ban háromtényezős, háromszintű tervezéssel hajtották végre (lásd az 1. táblázatot). A kísérleteket három párhuzamosban végeztük.

 

Cistanche tubulosa poliszacharidok: Előnyök

 

1.2.4 A poliszacharidtartalom meghatározása

A poliszacharid tartalmat kénsav-antron kolorimetriás módszerrel mértük [15]. Antront (20 g) feloldottunk tömény kénsavban, és 100 ml-re feltöltöttük, hogy 0,2 g/ml-es oldatot kapjunk. Megfelelő mennyiségű CP-t feloldottunk és 100 ml-re hígítottuk. Egy 1 ml-es alikvot részt összekevertünk 5 ml 0,2 g/ml-es antron-kénsavval, vortexeltük, szobahőmérsékleten 5 percig hagytuk, 90 fokos vízfürdőben 15 percig melegítettük, lehűtöttük, és az abszorbanciát 585 nm-en mértük. A standard görbe elkészítéséhez glükózt használtunk: Y=0.0081X + 0.0176 (R²=0.9991). A poliszacharidtartalom kiszámításához a minta abszorbanciáját behelyettesítettük a görbébe.

 

1.2.5 A poliszacharid hozam kiszámítása

A poliszacharid hozamot a standard képlet alapján számítottuk ki (a nyersanyag tömegéhez viszonyított poliszacharid tömege), a mért poliszacharidtartalom felhasználásával.

 

1.2.6 Poliszacharidok tisztítása

Crude CP extract was prepared under the optimized conditions. Following Wang et al. [16], Sevag reagent (chloroform:n‑butanol = 4:1, v/v) was used for deproteinization with vigorous shaking for 10 min, followed by centrifugation; the supernatant was collected and the process repeated three times. Eight volumes of 95% ethanol were added to the filtrate and left at 4 °C for 24 h. After centrifugation (8000 r/min, 10 min), the precipitate was collected and freeze‑dried to obtain crude CP. A 10 mg/mL solution was prepared by dissolving 100 mg crude CP in 10 mL distilled water, centrifuged at 7000 r/min for 10 min to remove insolubles, and filtered through a 0.45 μm membrane. The solution was loaded onto a DEAE‑52 cellulose column and eluted stepwise with distilled water and 0.1, 0.3, and 0.5 mol/L NaCl. Eluates were monitored by anthrone–sulfuric acid assay; fractions with absorbance >1,0-t egyesítettünk, betöményítettük, dializáltuk, fagyasztva szárítottuk, és lemértük, hogy különböző poliszacharid-frakciókat kapjunk. A hozamot (Y) a következőképpen számítottuk ki:
Y = (C × V × D) / (m × P)
ahol C a tisztított céloldat poliszacharid koncentrációja (mg/ml), V a térfogat (mL), D a hígítási tényező, m a nyers CP tömege (g), és P a nyers CP poliszacharid tartalma.

 

1.2.7 Frakciók antioxidáns aktivitásának összehasonlítása

1.2.7.1 DPPH gyökfogó

Jiang et al. [17] módosításokkal 0,2 mmol/l DPPH munkaoldatot készítettek frissen. A 0,2, 0,4, 0,6, 0,8 és 1,0 mg/ml koncentrációjú frakcióoldatokat (mindegyik 1 ml) 2 ml DPPH-val kevertük össze, vortexeltük, és sötétben, szobahőmérsékleten 30 percig inkubáltuk. Az abszorbanciát 517 nm-en (Ai) mértük. Mindegyik tesztet háromszor megismételtük, és a megfelelő koncentrációjú C-vitamin (Vc) pozitív kontrollként szolgált. Az öblítési sebességet a koncentráció függvényében ábrázoltuk, és a következőképpen számítottuk ki:
DPPH-tisztítás (%)=[1 − (Ai − Aj) / (A0)] × 100
ahol Ai jelentése A(2 ml DPPH + 1 ml minta/Vc), Aj jelentése A(2 ml etanol + 1 ml minta/Vc), és A0 jelentése A(1 ml víz + 2 ml DPPH).

 

1.2.7.2 ABTS gyökfogó

Xu et al. [18] módosításokkal 1 ml 0,2–1,0 mg/ml koncentrációjú mintát 4 ml ABTS-oldattal kevertünk össze, vortexeltük, és sötétben inkubáltuk 6 percig szobahőmérsékleten. Az abszorbanciát 734 nm-en mértük három párhuzamosban. Vc egyező koncentrációknál pozitív kontroll volt. Az öblítési sebességet a koncentráció függvényében ábrázoltuk, és a következőképpen számítottuk ki:
ABTS-tisztítás (%)=[1 − (Ai − Aj) / (A0)] × 100
ahol Ai jelentése A(1 ml minta/Vc + 4 ml ABTS), Aj jelentése A(1 ml minta/Vc + 4 ml víz), és A0 jelentése A(1 ml víz + 4 ml ABTS).

 

1.2.8 Poliszacharid frakciók szerkezeti elemzése

1.2.8.1 Fourier-transzformációs infravörös spektroszkópia (FTIR)

Zhang WenChao et al. [19] módosításokkal 2 mg előkezelt poliszacharidot összekevertünk 200 mg szárított KBr-mal, megőröltük és pelletekké préseltük. A spektrumokat 400-4000 cm-1 között gyűjtöttük 4 cm-1 felbontással, 32 szkenneléssel.

 

1.2.8.2 Molekulatömeg meghatározása

Zhang Jiayuan [20] módosításait követően 5 mg mintát 0,05 mol/l NaCl-ben oldottunk 5 mg/ml-re, centrifugáltuk, és 0,22 μm-es membránon szűrtük. A molekulatömeget HPGPC-vel határoztuk meg két polimer alapú vízoldható SEC oszloppal (8 mm × 300 mm) sorba kapcsolva, detektor: Waters RI; mozgófázis: 0,05 M NaCl; áramlási sebesség: 0,50 ml/perc; oszlophőmérséklet: 40 fok ; injekció: 30 μL. A kalibrációs görbék a következők voltak:
Lg Mp–RT: y=−0,1359x + 9.4523 (R²=0.9974)
Lg Mw–RT: y=−0,1375x + 9.5035 (R²=0.9976)
Lg Mn–RT: y=−0,1368x + 9.4749 (R²=0.9971)
A molekulatömegeket ennek megfelelően számítottuk ki.

 

1.2.8.3 Monoszacharid összetétel

Naxin S et al. [21] szerint a mintákat ionkromatográfiával/HPLC-vel dolgozták fel és elemezték. A standardokat (5 mg ramnóz, arabinóz, galaktóz, glükóz, xilóz, mannóz, galakturonsav, glükuronsav, glükózamin-HCl, galaktózamin-HCl; 10 mg fukóz) feloldottuk és 10 ml-re tettük, majd egy sor koncentrációra hígítottuk. A kromatográfiához Thermo U3000 rendszert használtak Agilent ZORBAX Eclipse XDB-C18 oszloppal (4,6 mm × 250 mm, 5 μm); mozgófázis: acetonitril:foszfát puffer (12 g/l KH2PO4, pH 6,8-ra beállítva 2 M NaOH-val)=17:83 (v/v), izokratikus; áramlási sebesség 0,8 ml/perc; oszlop 30 fok ; detektálás 250 nm; injekció 10 μl.

 

1.2.9 Poliszacharid frakciók kifáradás elleni kísérletei

1.2.9.1 Az állatok csoportosítása és adminisztrációja

Etikai jóváhagyás nem. 2023048. 3 napos akklimatizáció után 50 egeret véletlenszerűen öt csoportba osztottak (n=10): üres kontroll; pozitív kontroll (shiitake poliszacharid 300 mg/kg); alacsony dózisú frakció (150 mg/kg); közepes dózisú frakció (300 mg/kg); nagy dózisú frakció (600 mg/kg). A frakciókat és a kontrollokat szondán keresztül adtuk be 15 napon keresztül; az egerek szabadon hozzáférhettek élelemhez és vízhez.

 

1.2.9.2 Súlytartó úszáspróba

Öt órával az utolsó gyomorszondás beadás után a testtömeg 7%-ának megfelelő ólomsúlyt rögzítettünk minden egér farkához. Az egerek 60 cm mély, 30±2 fokos tartályban úsztak. A kimerítő úszási időként a bemerüléstől addig eltelt időt vettük fel, amikor a fej 10 másodpercig vízben maradt anélkül, hogy újra felszínre került volna.

 

1.2.9.3. Vér karbamid-nitrogén (BUN)

Úszás után a vért az orbitális sinuszon keresztül heparinizált csövekbe gyűjtöttük, és 3000 fordulat/perc sebességgel 10 percig centrifugáltuk. A BUN-t szigorúan a készlet utasításai szerint mértük.

 

1.2.9.4 Vérlaktát

A szérumot (20 μL) a kit utasításai szerint dolgoztuk fel. Az abszorbanciát 530 nm-en (1 cm-es úthossz) olvastuk le, kétszer desztillált vízzel nulla értékkel, és kiszámítottuk a laktátkoncentrációt.

 

1.2.9.5 Májglikogén

Közvetlenül a vérvétel után az egereket nyaki diszlokációval elaltattuk. A májat kimetsszük, fiziológiás sóoldattal öblítjük, szárazra töröljük, és 80 mg szövetet 3 térfogat lúggal (pH 8,0) tartalmazó csőbe helyezünk. A mintákat 20 percig forraltuk, lehűtöttük, és a glikogén mennyiségét meghatároztuk a kit utasításai szerint.

 

1.2.10 Adatelemzés

Az adatokat SPSS 17.1 segítségével elemeztük, és átlag ± SD (X±S) formában jelentették. Egyutas ANOVA-t alkalmaztunk a variancia homogenitás vizsgálatával; P < 0,05 statisztikailag szignifikánsnak tekinthető. Az ábrák az Origin 2021-ben és a GraphPad Prism 9-ben készültek.

Kereskedelmi fordítás és alkalmazás kiemeli

Új előnyök pozicionálása: Az optimalizált semleges Cistanche poliszacharid (CPN) kettős antioxidáns és fáradtsággátló hatást mutatott: meghosszabbítja az állóképességet, csökkenti a BUN-t és a laktátot, valamint megemelkedett a máj glikogénszintjét alátámasztó állításokat, mint például „támogatja az állóképességet”, „segít csökkenteni az edzés által kiváltott fáradtságot” és „antioxidáns támogatást”.

Termékformátumok: Keverésre kész tartós italok, zselék, funkcionális gumicukorkák és kapszulák. A CPN-t elektrolitokkal, B-vitaminokkal és alacsony GI-tartalmú szénhidrátokkal kombinálja a sportkészítményekhez; vagy a hagyományos Cistanche feniletanoid glikozidokkal a szinergikus "energia + hasznosítás" SKU-k érdekében.

Feldolgozási útmutató: az Egyesült Arab Emírségek feltételei (20 perc, 20:1 oldószerarány, 220 W) méretezhetőek és energiahatékonyak; A DEAE-52 frakcionálás ólomsemleges frakciót (CPN) eredményez magasabb szénhidráttartalommal és aktivitással, lehetővé téve a következetes szabványosítást (pl. 39% vagy annál nagyobb szénhidrát, HPGPC ujjlenyomat bimodális Mw-val).

Megfelelőség és megalapozottság: Használja a jelenlegi in vivo eredményeket a szerkezetre/funkcióra vonatkozó állítások alátámasztására; bővíteni humán kísérleti kísérletekkel, amelyek a kimerülésig eltelt időt, a laktát kinetikáját és az észlelt megerőltetést mérik. Alkalmazza a tiszta címkés extrakciót és az oldószerre vonatkozó utasításokat.

Minőségellenőrzés: FTIR marker sávokat, monoszacharid arányokat (túlnyomóan glükóz/mannóz) és HPGPC molekulatömeg-profilt alkalmazzon felszabadulási kritériumként. Antioxidáns vizsgálatok (DPPH/ABTS) a folyamaton belüli aktivitás ellenőrzéseként.

 

Szerzői kapcsolatok és hivatkozások (hiteles forrás)

DUAN Jihua1, HAN Haixia2,+, ZHAO Wenyan3, JIA Mingxi2, SUN Jingjing2, ZHOU Jixiang2, SONG Suqin4, ZHU Dongliang3*, BAO Xiaowei2*
(1. Xinjiang Sikai Food R&D Center (Co., Ltd.), Changji, Xinjiang 831100; 2. Élelmiszertudományi és Gyógyszerészeti Főiskola, Hszincsiangi Mezőgazdasági Egyetem, Urumqi 830052, Kína; 3. Gyógyszerészeti és Műszervizsgáló Intézet, Logisztikai Osztály, Xinjiang Xinjiang 25083 régió 4. Urumcsi Átfogó Kísérleti Állomás, Hszincsiangi Mezőgazdasági Tudományos Akadémia, Hszincsiang, Urumcsi 830052)

Hivatkozások
[1] ZHAO Hongting, XIN Guoxiong, GUO Yuan. A Cistanchis sinensis kutatási előrehaladása, egy hagyományos kínai orvoslás, ugyanazzal az élelmiszer- és gyógyszerforrással. Chinese Herbal Medicine, 2025, 56(09): 3316–3329.
[2] YANG MH, CHEN RH, ZHOU X és társai. A poliszacharidok farmakológiai hatásaival és mechanizmusával kapcsolatos kutatási eredmények. Starch-Stärke, 2024, 76(9–10): 2300168.
[3] MU S, YANG WJ, HUANG G L. A poliszacharidok antioxidáns hatásai és mechanizmusai. Chem Biol Drug Des, 2021, 97(3): 628–632.
[4] ZHANG SS, LIU B, YAN GY és társai. A poliszacharid kémiai tulajdonságai és fáradtsággátló hatása. J Food Biochem, 2022, 46(1): e14015.
[5] FU Y, WANG LW, JIANG GCA és mások. A var. Li. Foods, 2022, 11(10): 1464.
[6] CHEN Changmao, GAZANG Zhaxi, WANG Jie et al. A Cistanchiakis aktív összetevőivel és farmakológiai mechanizmusával kapcsolatos kutatások előrehaladása. Chinese Herbal Medicine, 2025, 56(12): 4464–4477.
[7] WANG Wenli, ZHANG Jinling, WEI Yaning és társai. A természetes poliszacharid extrakció, tisztítás és bioaktivitás fejlődése. Élelmiszeripari Tudomány és Technológia, 2022, 43(22): 470–480.
[8] GONG P, WANG SY, LIU M és mások. A gombapoliszacharidok extrakciós módszerei, kémiai jellemzései és biológiai aktivitásai: egy mini áttekintés. Carbohydr Res, 2020, 494: 108037.
[9] CHEN X, LIU YB, DENG Y és mások. Elsődleges vizsgálat az extrakciós módszerek hatásáról a poliszacharidok tulajdonságaira és aktivitására. Molecules, 2025, 30(1): 148.
[10] JIANG Huabin, LIU Lisha, ZHANG Qing és mások. Tubuláris Cistanche feniletanoid glikozidok és poliszacharidok egyidejű szétválasztása és tisztítása membránszeparációs technológiával. Élelmiszertudomány és -technológia, 2019, 44(07): 229–234.
[11] MAIMAITIAILI Ailadan. Tanulmány a Herba Cistanche-ból származó poliszacharidok extrakciójáról, elválasztásáról és tisztításáról, valamint in vitro immunológiai aktivitásukról. Urumcsi: Hszincsiangi Orvostudományi Egyetem, 2021.
[12] TENG Liping, MU Long, LUO Feng és mtsai. A nyers poliszacharidok Cistanche tubulosa-ból való extrahálási módszere és hatása a difenilgyök megkötésére. Guizhou Agricultural Sciences, 2011, 39(01): 66–68.
[13] BAI Dongwen. A Pedicularis virág és Cistanche kivonatainak hatása a hippocampusra és a bél mikrobiotára nagy magassági hipoxia esetén. Urumcsi: Hszincsiangi Mezőgazdasági Egyetem, 2023.
[14] JING YS, ZHANG SL, LI MS és mások. A poliszacharidok extrakciója, szerkezete és bioaktivitása. Foods, 2022, 11(14): 2126.
[15] GUO Xiaolei, ZHU Sichao, ZHAI Xufeng és társai. Antron-szulfát és fenol-szulfát módszerek összehasonlítása Ganoderma poliszacharidok meghatározására. Chinese Journal of Traditional Chinese Medicine, 2010, 28(09): 2000–2002.
[16] WANG Senzheng, SUN Yongfang, ZHOU Ye és társai. A Wen Curcuma poliszacharid extrakciójának, szerkezeti jellemzésének és a funkcionális székrekedésre gyakorolt ​​hatásának optimalizálása. Természetes termékek kutatás-fejlesztése: 1–17.
[17] JIANG Zhixuan, CAI Zifu, DONG Sisi és társai. Fügekaktusz poliszacharidok kémiai módosítása és antioxidáns és hipoglikémiás aktivitás elemzése. Élelmiszeripari Tudomány és Technológia: 1–20. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025020006.
[18] XU Qing, YANG Jiang, LI Anding. A különböző eredetű passiógyümölcs főbb funkcionális összetevőinek és antioxidáns hatásainak összehasonlítása. Modern Élelmiszertudomány és Technológia, 2023, 39(08): 94–102.
[19] ZHANG CW, ZOU YF, ZOU Y és mások. Paeoniae Radix alba poliszacharid extrakciója ultrahanggal: extrakció optimalizálás, szerkezeti jellemzés és antioxidáns mechanizmus in vitro. Int J Biol Macromol, 2024, 268: 131816.
[20] ZHANG Jiayuan. Csalán poliszacharidok izolálása és tisztítása, szerkezeti azonosítás és hipoglikémiás aktivitás. Xi'an: Shaanxi Tudományos és Technológiai Egyetem, 2021.
[21] SUN NX, ZHAO YN, YIN M Y. Poliszacharidok kivonása, tisztítása, szerkezete és bioaktivitása maitake-ből: Áttekintés. J Food Meas Charact, 2023, 17(6): 6200–6213.
[22] WAN Yue, QI Jiying, ZENG Hong és mások. Shiitake poliszacharidok ultrahanggal segített extrakciójának optimalizálása válaszfelületi módszertannal. Biotechnology Bulletin, 2015, 31(01): 79–85.
[23] LI Li, ZHANG Sai, HE Qiang et al. Válaszfelületi módszertan alkalmazása a kísérlettervezésben és -optimalizálásban. Laboratóriumi Kutatás és Kutatás, 2015, 34(08): 41–45.
[24] MA Qvhuan, SHI Xiaofeng, SHEN Wei és társai. A cédrusfenyő tű poliszacharid extrakciójának optimalizálása válaszfelület elemzéssel. Chinese Journal of Traditional Chinese Medicine, 2018, 33(03): 1106–1110.
[25] ZHAO Jinsong, PENG Jingjing, ZHANG Liang és mások. Összehasonlító tanulmány a baijiu mellékízeinek javításáról különböző aktív szenek használatával. China Brewing, 2025, 44(09): 179–186.
[26] WU Huiqiong, WU Hailian, XIAO Nan és mások. Nanokristályos cellulóz/kukoricakeményítő kompozit részecskékkel szinergetikusan stabilizált Mosla chinensis illóolaj Pickering emulziói. Élelmiszeripari Tudomány és Technológia: 1–27. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025060255.
[27] WU Shuang. A fukoidán hatása a fehérje alapú Pickering emulziók stabilitására. Dalian: Dalian Műszaki Egyetem, 2022.
[28] LIN Ying, ZHENG Meixia, CHEN Changmei et al. A jázmin fekete tea poliszacharidjainak ultrahanggal segített kétfázisú extrakciója és antioxidáns aktivitása. Chemistry and Bioengineering, 2025, 42(09): 35–42.
[29] WANG Yihan, XIE Qingyun, TENG Jianwen és mások. Az izolálás és tisztítás hatása a Tremella poliszacharid szerkezetére és in vitro lipidcsökkentő aktivitására. Élelmiszeripari technológia, 2025, 46(05): 81–90.
[30] BAN Shidong, ZONG Chunyang, WANG Xiaodan és mások. A Polygonatum Lactobacillus plantarum fermentációjának optimalizálása a poliszacharidhozam és az in vitro prebiotikus aktivitás fokozása érdekében. Élelmiszeripari Tudomány és Technológia: 1–18. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025030047.
[31] MO Yunfeng, CHEN Zixuan, PENG Junying et al. A szárítási folyamatok hatása a sütőtök por tulajdonságaira és antioxidáns kapacitására. Élelmiszeripari Tudomány és Technológia: 1–19. doi:10.13386/j.issn1002-0306.2025040072.