Célja:Ebben a vizsgálatban a hatékony mikroorganizmusok (EM) fermentációjával előállított, nagy hatékonyságú Schisandra chinensis kivonatot (SCE) használtak antioxidáns anyagként a kozmetikai termékek előállításához.

A vonatkozó tanulmányok szerintcistancheegy közönséges gyógynövény, amelyet "az életet meghosszabbító csodanövényként" ismernek. Fő összetevője azcisztanozid, melynek különféle hatásai vannak, mint plantioxidáns, gyulladáscsökkentő,ésaz immunrendszer működésének elősegítése. A citanche és a bőrfehérítés közötti mechanizmus az antioxidáns hatásában rejlikcistancheglikozidok. Az emberi bőrben a melanint a tirozin oxidációja katalizáljatirozináz, az oxidációs reakcióhoz pedig oxigén részvétele szükséges, így a szervezetben lévő oxigénmentes gyökök a melanintermelést befolyásoló fontos tényezővé válnak. A Cistanche cisztanozidot tartalmaz, amely antioxidáns, és csökkentheti a szabad gyökök képződését a szervezetben, ígygátolja a melanin termelését.

Kattintson ide, ahol Cistanche-t vásárolhatok

További információért:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Bevezetés

Az elmúlt években a javulás, a magas életszínvonalra való törekvés sok egészségügyi problémát okozott. Ezek közül a kozmetikai termékek különleges példák, amelyeket alaposan meg kell vizsgálni. A szintetikus vegyszerek használata a kozmetikai termékek fő összetevőjeként számos negatív eredményhez vezet, például toxicitáshoz és magas költségekhez. Ez az oka annak, hogy a kozmetikai felhasználásra szánt természetes termékek vizsgálata sok kutató nagy érdeklődését váltotta ki. A Schisandra chinensis (SC) egy gyógy- és ehető növény, amelynek öt íze van (édes, savanyú, keserű, sós és csípős)1,2, és széles körben használják számos élelmiszer-, ital- és gyógynövényiparban stb.3,4 Az SC számos bioaktív vegyületet, például domént, almasavat és citromsavat tartalmaz, és hatékonyan alkalmazható köhögés és asztma kezelésére.5 Ezen túlmenően jól ismert antibakteriális, ill. antioxidáns képességek. Ezen túlmenően kiváló hőstabilitással rendelkezik, és olyan kozmetikumokban és élelmiszerekben használható, amelyek nem befolyásolják az emberek egészségét.6 A fermentáció a szerves anyagok lebontásának folyamatát jelenti mikroorganizmusok enzimjei segítségével, és a latin fervent szóból származik. 7 Különféle módon és különböző területeken használták, például élelmiszerekben, gyógyszerekben és kozmetikumokban.7 A mikroorganizmusok enzimatikus hatásán keresztül történő élelmiszer-erjesztést hagyományosan a gyártási folyamatokban használják az íz javítására és a toxinok elpusztítására, és elősegíti a toxinok hatását is. a biomolekulák.8,9 A hatékony mikroorganizmusok (EM) hasznos mikroorganizmusok, amelyeket 1982-ben fejlesztettek ki.10 Az EM-et eredetileg természetes és ökológiai gazdálkodásra fejlesztették ki. Ezt követően alkalmazási köre fokozatosan bővült, és általánosan elterjedt az ázsiai országokban, Oroszországban és az USA-ban.11 Kezdetben 10 nemzetség 80 fajából, 5 családban fejlesztették ki az EM megoldását; ez azonban nagyon összetett folyamat volt. Ezért aztán az EM-t néhány fő organizmus, például fotoszintetikus baktériumok, tejsavbaktériumok, gombák, élesztőgombák és aktinomicéták egyszerűen kifejlesztették.12 Ami a fermentációs alkalmazást illeti, fakultatív anaerob körülmények között fermentálják, így szintézis termékei, például vitaminok. a karotin pigmentek pedig erőteljes antioxidánsok, amelyek megakadályozzák a szerves anyagok bomlását.13 A keletkező aminosavak és szerves savak a megfelelő fehérjékké és cukrokká alakulnak, majd azonnal felszívódnak a növényben. Ez nagymértékben javítja a növényi táplálék szintézisének és felhasználásának hatékonyságát. Az EM-et eredetileg a természetes, ökológiai mezőgazdaságban való felhasználásra fejlesztették ki, de manapság számos területen használják, például az építőiparban, az orvostudományban és a kozmetikai iparban.14–16.

Anyagok és metódusok

Anyagok

SC kivonás

Különböző koncentrációjú kivonatok készítése

Mikroelem elemzés

A Food Code módszerrel {{0}},0 g mintát oldottunk fel 100 ml-es salétromsavban 100 fokos ioncserélt vízzel. Ezután megmértük a mintában lévő nyomelemek mennyiségét, és elemanalizátorral (Vario EL, Németország) elemeztük.

Polifenoltartalom mérése

A minta grammonkénti polifenoltartalmát Folin–Denis módszerrel mértük.18 Így 100 μl kivonatot és 2 tömegszázalék Na2CO3-at kevertünk össze egy EP-csőben. Az EP csövet szobahőmérsékleten tartottuk 2 percig a reakcióhoz. Ezt követően 50 százalék Folin–Ciocalteu fenol-reagenst adtunk a csőbe. A mintát vortex keverőbe helyeztük szobahőmérsékleten 30 percre, majd UV-Vis spektrofotométerrel analizáltuk 750 nm-en.

Flavonoidok mérése

A kivonat grammonkénti teljes flavonoidtartalmát dietilénglikol-kolorimetriával mértük.19 Így 100 μL kivonatot és 100 μL 1,0 N NaOH-t adtunk egy EP-csőbe, és összekevertük. örvénykeverő. Keverés után az oldatot 1,0 órán át 30 °C-on tartjuk a reakcióhoz. A reakció hozamát UV-Vis spektrofotométerrel elemeztük 420 nm-en.

A szabad gyökök megkötésének mérése

Az 1,1-difenil-2-pikrilhidrazil (DPPH) szabadgyök-megkötését a módosított Blois-módszerrel mértük.20 Ebben az összefüggésben 0,1 M Trizma-bázis-HCl puffer (Tris) puffert (pH 7,4) és 500 mM DPPH-t kezdetben metanollal készítettünk. A kontrollkísérlethez standardként butilezett hidroxitoluolt (BHT) és butilezett hidroxi-anizolt (BHA) választottunk. Ezután 100 µl kivonatmintát és 400 µl Tris puffert kevertünk össze egy EP-csőben, majd 500 µl DPPH-oldatot adtunk hozzá. Az elegyet 20 percig sötét szobában tartottuk, majd UV-Vis spektrofotométerrel analizáltuk 517 nm-en. A kontrollkísérletben 100 μl BHT-t és BHA-t adtunk a kivonatminták helyett. A nem additív csoportban az EP csőbe 100 μl Tris puffert adtunk a kivonatminták helyett. Az elektrondonor képesség mérését a következőképpen mutatjuk be:21

A nitritleválasztó aktivitás mérése

A nitritmegkötő aktivitást a Kim és munkatársai által kifejlesztett módosított módszerrel mértük.22,23 Pontosabban: 0,3 ml kivont minta és 0,1 ml 1.0 mM NaNO2 oldatot, 0,2 M citrát puffer-HCl pH 2,5-nél összekevertük, hogy a végső térfogat 1.{14}} ml legyen. Az elegyet ezután 37 fokon 1.{17}} órán át reagáltattuk. Ezt követően 0,4 ml Griess-reagenssel (30 százalékos CH3COOH-oldat, amely szulfanilsavat (10 tömegszázalék): naftilamin (1 tömegszázalék)) és 3 .0 ml CH3COOH-oldatot (2,0 tömegszázalék). Ezután a reakció szobahőmérsékleten 15 percig lejátszódott.

Szuperoxid-diszmutáz-szerű aktivitás (SODA) mérése

A tirozináz gátló aktivitás mérése

A tirozináz gátló aktivitást a Masamoto és munkatársai által bemutatott módszer módosított változatával mértük.25 A gomba tirozináz-dezaktiváló tulajdonságainak in vitro körülmények közötti mérésére 0,3 ml 2,5 mM 3,4-dihidroxi-fenilalanint (L-DOPA) használtunk. ), {{10}}.{{20}}5 ml extrahált mintát és 0,1 M foszfát pufferoldatot (pH 6,8, össztérfogat 1,5 ml) kevertünk össze vortex segítségével. keverővel, majd 25 fokon előinkubáljuk. Ezután 0,05 ml gomba tirozinázt adtunk hozzá 1380 egység · ml-1 koncentrációban (Sigma Co., USA), majd vortex keverővel összekevertük. Ezt követően a reakciót 25 °C-on 2,0 percig végeztük.

ahol A a reakcióoldat {{0}},5 és 1 perc közötti abszorbanciaértéke minta nélkül, 475 nm-en UV-Vis spektrofotométerrel mérve; és B a reakcióoldat 0,5 és 1,0 perc közötti abszorbancia értéke a mintával, 475 nm-en UV-Vis spektrofotométerrel mérve.

Krémanyag előkészítése

A desztillált vízen, extrahált olajon és adalékanyagokon alapuló krém formulákat az 1. táblázatban leírtak szerint állítottuk elő. A vizet, az adalékanyagokat és az olajat lemértük, majd vízfürdőben 80 fokra melegítettük. Lassan vizet adtunk hozzá, és egy mini mixerben (DS-1800; Korea) erőteljesen összekevertük az olajjal. Az A krémet az extrahált olaj nélkül készítettük el. A B, C, D, E és F krémek 1, 5, 10, 20 és 40 mg·mL-1 SC kivonatot (SCE) tartalmaztak. A G, H, I, J és K krémek 1, 5, 10, 20 és 40 mg·mL-1 SCE fermentációt (SCEF) tartalmaztak.

A biztonság értékelése

Stabilitás értékelése

Eredmények és megbeszélés

Mikroelem elemzés

Az SCE induktív csatolású plazma tömegspektrometriás (ICP) analízisének eredményei a 2. táblázatban láthatók, ami azt jelzi, hogy az SCE 1.0 mg·mL−1 23,71, 0,42 és 0.03 mg·kg−1 K, Fe és Se. Az SCE mennyiségének növekedésével ezeknek a nyomelemeknek a tartalma nőtt. Ebben a tekintetben a K növekedése volt a domináns, a Mn, Fe, Cu és Zn növekedése nem volt szignifikáns. A szeléntartalom az SCE koncentrációjától függetlenül változatlan maradt. Ezek a nyomelemek számos fiziológiailag aktív anyag működését segítik az emberi szervezeten belül és kívül egyaránt, és fontos szerepet töltenek be, beleértve az antioxidáns és az immunitást.

A kivonat és flavonoid- és polifenol-tartalmának mérése

Az SCE-tartalom 27,91 tömegszázalék volt 100 g SC-ben. Az extrakció ugyanazt a hozamot eredményezte, amikor az eljárást vízben és etanolban végeztük. A kivonat hozama azonban alacsonyabb volt, mint a korábbi közleményekben.26,27 Ez az SC termesztési helyeinek, valamint a tenyésztési körülményeknek és az extrakciós módszernek a különbségeiből adódik.26 A polifenoltartalom A közönséges SCE kivonat 1.0 mg·mL−1 koncentrációban 1,53±0.02 mg·g-1 polifenolt eredményezett, miközben ugyanennyit Az EM SCEF magasabb polifenol tartalmat (20.84±0.04 mg·g−1) biztosított, mint a nem fermentált kivonat. Az EM SCEF extrakciós eredményei 5, 10, 20 és 40 mg·mL-1 mellett 25,82±0,04, 29,13±0,05, 42,07±0,05 és 59,22±0,09 mg·g-1 voltak.

A szabad gyökök megkötésének mérése

A szervezetben lévő szabad gyökök elősegíthetik a biológiai öregedést, a lipidekkel és fehérjékkel reagálva. Ennek a jelenségnek a kiküszöbölésére számos tanulmány foglalkozott természetes termékekkel.31 A DPPH gyökfogó tesztmódszert számos természetes termékben alkalmazzák antioxidáns mérésekhez az antioxidánsok elektrondonor képességének felhasználásával.32–34 Az antioxidáns hatások eredményei az SCE-ben ill. Az EM SCEF csoportokat az 1. ábra mutatja. Az SCE DPPH gyökfogó képessége esetén, mivel a koncentráció 1.0, 10 és 40 mg·mL-1 között változott, a az antioxidáns képesség 37 százalékról 72 százalékról 74 százalékra nőtt. Az EM SCEF csoport 63 százalékos, 67 százalékos és 79 százalékos antioxidáns képességet mutatott a megfelelő 1,0, 10 és 40 mg·mL-1 koncentrációk mellett. Az EM SCEF csoportban úgy tűnik, hogy az antioxidáns képességben a koncentrációval együtt járó kisebb változás az EM SCEF és a mikrobák közötti, antioxidáns anyagokat előállító reakciónak köszönhető. Az SC antioxidáns képességét néhány jól ismert antioxidánshoz hasonlították, mint például a BHT (89 százalék) és a BHA (88 százalék). Azt találták, hogy az SC szabad gyökfogó képessége nem sokban különbözik az övékétől. Ezenkívül az SCEF még alacsony koncentrációknál is nagyobb gyökfogó képességgel rendelkezik, mint az SCE. Ez azt jelenti, hogy az SC és EM aktív oldatok egymás közötti reakciója során a mikrobák fiziológiailag aktív anyagokat termeltek, amelyek antioxidáns képességgel rendelkeznek. Ezért lehetséges olyan anyagokat előállítani, amelyek magasabb szintű antioxidánst tartalmaznak, és kisebb mennyiségű EM SCEF-et tartalmaznak, mint az SCE. Arra a következtetésre jutottunk, hogy ez megoldhatja az adagolás problémáját a kozmetikumok gyártásában, és egyben javíthatja a növényi eredetű természetes anyagokat tartalmazó kozmetikai termékek funkcionális tulajdonságait.

A nitritleválasztó aktivitás mérése

A nitrit reakcióba lép a szekunder aminnal (olyan kémiai vegyület, amelyben az ammónia két hidrogénatomja az R szénhidrogén funkciós csoporttal van helyettesítve), és nitrozamin keletkezik, amely egy hírhedt rákkeltő anyag; más szóval, a nitrit a nitrozamin prekurzoraként működik. Ezért a nitrózamin képződése hatékonyan gátolható a nitrát eltávolításával.35 Ha az analízisre szánt minta és a nitrit közötti reaktivitás magas, a nitrit eltávolításra kerül, mert ionizált állapotban reagál, ami a nitrozamin képződés gátlásához vezet. Ez ugyanúgy vonatkozik más anyagokra is, amelyek ion vagy elektron formában léteznek, és a minta nagy reaktivitása egyenértékű a nitrit-megkötő és antioxidáns aktivitással, vagy úgy értékelhető. Minél nagyobb az összes fenolvegyület mennyisége egy mintában, annál erősebben megy végbe a nitrit-megkötő reakció az alsó pH-tartományban, és ennek negatív hatása a felső pH-tartományban csökken.36 Az 5. táblázat azt mutatja, hogy a nitrit-megkötő aktivitás az SCE 15 százaléka volt 1 mg·mL-1-nél, 40 százalék 10 mg·mL-1-nél és 89 százaléka 40 mg·mL-1-nél. Másrészt, az SCEF 51 százalékos nitritfogó aktivitást mutatott 1 mg·mL-1-nél, 69 százalékos 10 mg·mL-1-nél és 98 százalékos 40 mg·mL-1-nél. Ebből a tesztből megfigyelhető, hogy ahogy mindkét csoport koncentrációja nőtt, úgy nőtt a tisztító aktivitás is. Ezen túlmenően, az SCEF felülmúlta az SC-t nitrit-megkötő aktivitásában, ami hasonló más kísérleti eredményekhez. 1,0 mg·mL-1 koncentrációnál a tisztító aktivitás különbsége 40 mg·mL-1 volt, ami a legnagyobb a különböző koncentrációk között, és a különbség a koncentráció növekedésével csökkent. Ebből az összehasonlító kísérletből az EM fermentációs folyamaton keresztül tovább javult az SC meglehetősen jónak ítélt nitritfogó hatása. Ez a jelenség a több biológiailag aktív anyagot termelő fermentációs folyamatnak tudható be, ami viszont a nitrozamin képződés gátlásának fokozódásához vezetett, valamint számos fenol, mint nyers növényi összetevő, hozzájárulva a hatékony nitritmegkötő reakcióhoz. .

SZÓDA Mérés

Az SOD egy enzimatikus antioxidáns, amely képes méregteleníteni és elnyomni az O2, H2O2, peroxid, OH gyökök stb. toxicitását.37,38 A SODA a 6. táblázatban látható 1-es SCE (vagy SCEF) koncentrációk esetén.0, 1 0 és 40 mg·mL-1. Az SCE csoport SODA-értéke 6 százalék, 18 százalék és 41 százalék volt, míg az EM SCEF csoport 28 százalék, 32 százalék és 43 százalék, amikor a koncentráció 1-ről 40 mg·mL-1-re emelkedett. A két csoport aktivitásbeli különbségének elemzéséhez a SODA-érték különbsége magasabb volt alacsony SCE és SCEF (1,0 mg·mL-1) koncentrációnál, és kisebb volt magas koncentrációnál (40 mg·mL-1). Ebben a tesztben mindkét csoport kiemelkedő SODA-szintet mutatott.26,39 Ezért megállapítható, hogy mind az SCE, mind az SCEF magas, természetes eredetű antioxidáns képességekkel rendelkezik.

A tirozináz gátló aktivitás mérése

A tirozináz gátló hatás mechanizmusa nagyon fontos a kozmetikai iparban, és a bőrfehérítő hatás mérésére használható.40 Az SCE csoportban a tirozináz gátló aktivitás 35 százalékról 36 százalékra, 37 százalékra, 38 százalékra és 38 százalékra nőtt. 39 százalék, ahogy az extraktum koncentrációja nőtt (7. táblázat). Az EM SCEF csoportban a tirozináz gátló aktivitás 38 százalékról 39 százalékra, 40 százalékra, 41 százalékra és 42 százalékra nőtt a koncentráció növekedésével. Az EM SCEF hatékonyabb tirozináz gátló aktivitást mutatott, mint a normál kivonat, de nem volt sok különbség. Mindazonáltal úgy gondolják, hogy mindkét kivonat bőrfehérítő hatással bír, ha kozmetikumok készítésére használják őket.41

Biztonsági értékelés

A különböző koncentrációjú SCE és EM SCEF kozmetikumok képletei, azaz: {{0}}.0, 1.0, 5.0, 1{{ 25}}, 20 és 40 mg·mL−1, a 2. ábrán láthatók. Az előállított kozmetikumokat V/O adagolási formában úgy alakították ki, hogy a vizes fázist az olajos fázishoz adták . Az emberi bőr felszínének pH-értéke általában 4,5 és 6,5 között van, ami enyhén savas vagy semleges.42 Ha a pH lúgossá válik, a bőr ellenálló képessége gyengül, ami baktériumok elszaporodásához és végül bőrbetegségekhez vezet. Ezért erősen ajánlott semleges vagy enyhén savas kozmetikai termékek használata. A pH érték változását a tárolási idő függvényében a 3. ábra mutatja. Az SCE nélküli krémet használva a pH enyhén 6,23-ra emelkedett 60 nap után a kezdeti 6,25-ös értékhez képest. Az 1,0, 5,0, 10, 20 és 40 mg·mL−1 SCE-koncentrációjú krémtermékek kezdeti pH-értéke 5,53, 3,87, 3,43, 3,15 és 3,03 volt. Ezek a pH-értékek nem változtak 60 nap után. Az 1,0, 5,0, 10, 20 és 40 mg·mL−1 EM SCEF-koncentrációjú EM SCEF-alapú krémek kezdeti pH-értéke 4,12, 3,46, 3,37, 3,15 és 2,98 volt. Hasonló pH-értékeket figyeltünk meg 60 nap után. Ezek az eredmények azt jelentik, hogy egyik csoportban sem volt szignifikáns különbség a pH változásban, és az extraktum koncentrációjának növekedésével a pH-érték csökkent. Ezek az eredmények azt sugallják, hogy nem volt biztonsági probléma e kozmetikai termékek használata során.

A hőmérséklet hatása a kozmetikai stabilitásra

Következtetés

Elismerés

Közzététel

Hivatkozások

1. Choi BR, Kim HK, Park JK. A Schisandra chinensis gyümölcskivonat és az A domén hatása a pénisz corpus cavernosum simaizomzatának kontraktilitására: potenciális mechanizmus a nitrogén-oxid - ciklikus guanozin-monofoszfát útvonalon keresztül. Nutr Res Pract. 2018;12 (4): 291–297. doi:10.4162/nrp.2018.12.4.291

2. He JL, Zhou ZW, Yin JJ, He CQ, Zhou SF, Yu Y. A Schisandra chinensis szabályozza a gyógyszer-metabolizáló enzimeket és a gyógyszertranszportereket a Nrf{6}}közvetített jelátviteli útvonal aktiválásával. Drug Des Devel Ther. 2015;9:127–146.

3. Nowak A, Szyda MZ, Błasiak J, Nowak A, Zhang Z, Zhang B. Potential of Schisandra chinensis (Turcz.) Baill. Az emberi egészségben és táplálkozásban: a jelenlegi ismeretek és terápiás perspektívák áttekintése. Tápanyagok. 2019;11(2):333. doi:10,3390/nu1102 0333

4. Ramanathan L, Das NP. Tanulmányok a lipidoxidáció szabályozására ürgében egyes polifenolos természetes termékekkel. J Agric Food Chem. 1992;40(1):17–21. doi:10.1021/jf00013a004

5. Yang S, Yuan C. Schisandra chinensis: átfogó áttekintés a fitokemikáliáiról és biológiai tevékenységeiről. Arab J Chem. 2021;14 (9): 103310. doi:10.1016/j.arabjc.2021.103310

6. Cho EG, Cho HI, Choi YJ. Az erjesztett Omija (Schizandra chinensis Baillon.) ital antioxidáns és antibakteriális hatása, tirozináz és elasztáz gátló hatása. J Appl Biol Chem. 2010;53(4):212–221. doi:10.3839/jabc.2010.038

7. Park SJ, Seong DH, Park DS stb. Fermentált Codonopsis lanceolata kémiai összetétele. J Koreai Soc Food Sci Nutr. 2009;38(3):396–400. doi:10.3746/jkfn.2009.38.3.396

8. Dimidi E, Cox SR, Rossi M, Whelan K. Fermentált élelmiszerek: definíciók és jellemzők, hatás a bélmikrobiótára és hatások a gyomor-bélrendszer egészségére és betegségeire. Tápanyagok. 2019;11(8):1806. doi:10.3390/nu11081806

9. Hold SH, Chang HC. Rizskorpa fermentációja Lactiplantibacillus plantarum EM-vel indulóként és az erjesztett rizskorpa potenciálja funkcionális élelmiszerként. Élelmiszerek. 2021;10(5):978. doi:10.3390/foods10050978

10. Katina K, Liukkonen KH, Kaukovirta A, Adlercreutz H, Heinonen SM, Lampi AM. A csíráztatott rozs tápértékének fermentáció által kiváltott változásai. J Cereal Sci. 2007;46 (3):348–355. doi:10.1016/j.jcs.2007.07.006

11. Foolad N, Brezinski EA, Chase EP, Armstrong AW. A tápanyag-kiegészítés hatása az atópiás dermatitiszre gyermekeknél. Arch Dermatol. 2012;17:E1–E6.

12. Olle M, Williams IH. Hatékony mikroorganizmusok és hatásuk a zöldségtermesztésre – áttekintés. J Hortic Sci Biotechnol. 2031;88 (4): 380–386. doi:10.1080/14620316.2013.11512979

13. Uma MN, Abirami R. A hatékony mikroorganizmusok és alkalmazásaik áttekintése. AJMR. 2019;8(4):121–129. doi:10.5958/2278-4853.20 19.00142.3

14. Bzdyk RM, Olchowik J, Studnicki M, et al. A hatékony mikroorganizmusok (EM) és a szerves és ásványi műtrágyák hatása a Fagus sylvatica és Quercus robur palánták növekedésére és mikorrhiza kolonizációjára egy csupaszgyökeres faiskolai kísérletben. Erdők. 2018;9(10):597. doi:10.3390/f9100597

15. Chui CH, Cheng GYM. A hatékony mikroorganizmus fermentációs kivonat (EM-X) növekedést gátló potenciálja a rákos sejteken. Int J Mol Med. 2004;14:925–929.

16. Chui CH, Hau DKP. A koncentrált hatékony mikroorganizmus fermentációs kivonat apoptotikus potenciálja emberi rákos sejteken. Int J Mol Med. 2006;17:279–284.

17. Nyomja meg az enyémet. Laboratóriumi vizsgálatokat végezzen az élelmiszer-szabályzat előírásai és vizsgálati módszerei szerint. Élelmezés és adminisztráció; 2003:887–892.

18. Latimer GW. Az AOAC International hivatalos elemzési módszerei. 21. kiadás Kemény fedeles; 2019

19. Kim JH. Az Astragalus membrános kivonatok biológiai aktivitásának vizsgálata. Biomed Sci Lett. 2012;18(1):35–41.

20. Blois MS. Antioxidáns meghatározás stabil szabad gyök felhasználásával. Természet. 1958;26(4617):1199–1200. doi:10.1038/1811199a0

21. Ahn YH, Yoo JS, Kim SH. Antioxidáns kapacitás vizsgálat polivinil-alkohol alapú DPPH pellettel. Bull Korean Chem Soc. 2010;31(9):2557–2560. doi:10.5012/bkcs.2010.31.9.2557

22. Kim BJ, Park YK, Kang BS. A Rubifructus hatása az ovulációra és a petefészek patkányokra. Koreai J Herb. 2001;16:139–152.

23. Gray JI, Dugan JRL. N-nitrozamin képződés gátlása a modell élelmiszerrendszerben. J Food Sci. 1975;40(5):981–985. doi:10.1111/j.{9}}.1975.tb02248.x

24. Marklund S, Marklund G. Szuperoxid, egy aminogyök bevonása a pirogallol oxidációjában és egy kényelmes teszt a szuperoxid-diszmutázra. Eur J Biochem. 1975;47:468–474.

25. Masamoto YH, Ando Y, Murata Y, Shiraishi M, Tada K, Takahata K. Euphorbia lathyris L. magvakból izolált Esculetin gomba tirozináz inhibitor aktivitása. Biosci Biotechnol Biochem. 2003;67(3):631–634. doi:10.1271/bbb.67.631

26. Kwon HJ, Park CS. Az Omija-kivonatok biológiai aktivitásai. Koreai J élelmiszer tartósítószer. 2008;15:587–592.

27. Shin HO. Tanulmányok a tisztított polifenol élettani hatásáról és a többszörös emulgeálás kialakulásáról. Gyeongbuk, Korea: Cosmeceutical Science Graduate School, Daegu Haany Egyetem; 2009.

28. Markris DP, Rossiter JT. A kvercetin és egy nem orto-hidroxi-flavonol, mint antioxidáns összehasonlítása egymással versengő in vitro oxidációs reakciókkal. J Agric Food Chem. 2001;49(7):3370–3377. doi:10.1021/jf010107l

29. An BJ, Park TS, Lee JY és társai. A besugárzott zöld tea polifenol antimikrobiális hatása a kozmetikai készítménybe. J Koreai Soc Appl Biol Chem. 2007;50:210–216.

30. Hong JY, Nam HS, Yoon KY, Shin SR. Az erjesztett fekete jujubából származó kivonatok antioxidáns hatásai. Koreai J élelmiszer tartósítószer. 2012;19(6):901–908. doi:10.11002/kjfp.2012.19.6.901

31. Youn JS, Shin SY, Wu Y és társai. Az Aruncus dioicus var. antioxidáns és ránctalanító hatása. kamtschaticus kivonat. Koreai J élelmiszer tartósítószer. 2012;19(3):393–399. doi:10.11002/kjfp.2012.19.3.393

32. Chan YY, Kim KH, Cheah SH. A Sargassum polycystin gátló hatása a tirozináz aktivitásra és a melanin képződésre a B16F10 egér melanoma sejtekben. J Ethnopharmacol. 2011;137(3):1183–1188. doi:10.1016/j.jep.2011.07.050

33. Huang HC, Hsieh WT, Niu YL, Chang TM. A Magnolia grandiflora L. virágkivonat melanogenezisének és antioxidáns tulajdonságainak gátlása. BMC Complement Altern Med. 2012;6:12–72.

34. Jang MJM, Woo H, Kim YH, Jun DY, Rhee WJ. A Sancho (Zanthoxylum schinifolium) kivonat antioxidáns, DPPH-gyökfogó és antitrombogén hatása. Koreai J Nutr 2005;38:386–394.

35. Fiddler W, Piotrowski EG, Pensabean JW, Doerr RC, Wassermann AE. A nátrium-nitrit koncentráció hatása az N-nitrozo-dimetil-amin képződésére frankfurtokban. J Food Sci. 1972;37(5):668–673. doi:10.1111/j.{9}}.1972.tb02721.x

36. Lee SJ, Chung MJ, Shin JH, Sung NJ. Természetes növényi összetevők hatása a nitrit-megkötőre. J Food Hyg Safety. 2000;15 (2):88–94.

37. Kang BR, SOD-szerű aktivitások és nitritfogó képességek változása barna rizs csíráztatásával Szöuli Nemzeti Műszaki Egyetem mesterdolgozat (2003).

38. Yang YW, Hsu PYJ. Poly (D, L-Lactide-Co-Glycolide) mikrorészecskék polielektrolit önszerveződő többrétegű felületekkel az exogén antigének keresztprezentációjára. Bioanyagok. 2008;29(16):2516. doi:10.1016/j.biomaterials.2008.02.015

39. Serrano MC, Pagani R, Manzano M, Comas JV, Portoles MT. Poli-(epszilon-kaprolakton) filmeken tenyésztett endoteliális és simaizomsejtek mitokondriális membránpotenciálja és reaktív oxigénfajták tartalma. Bioanyagok. 2006;27(27):4706. doi:10.1016/j.biomaterials.2006.05.007

40. Pawelek JM. Dopachrome után. Pigm Cell Res. 1991;4(2):53–62. doi:10.1111/j.{8}}.1991.tb00315.x

41. Invergar R, McEvily AJ. Tanulmányok a Crataegi Fructus kivonatának biológiai aktivitásáról. Koreai J Herbol. 1992;17(1):29–38.

42. Wilkinson JB, Moore RJ. Harry kozmetikája. New York: Chemical Publishing Co., Inc.; 1982:749.

További információ: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501