A vizsgálat célja a fogsejtek életképességének felmérése volt az időfüggő karbamid-peroxidos fogfehérítő kezeléseket követően, in vitro dentin perfúziós vizsgálati modell segítségével. 30 fogat 5 százalékos vagy 16 százalékos CP géllel tettek ki (napi 4 óra) 2 héten keresztül. A zománc szervesanyag-tartalmát termogravimetriával mértük. Vizsgálták a humán fogpép őssejtek (HDPSC) és gingiva fibroblaszt sejtek (HGFC) időfüggő életképességét a kereskedelemben kapható 3 koncentrációjú CP gél közvetett expozícióját követően in vitro dentin perfúziós vizsgálattal, vagy 5 százalékos H2O2 közvetlen expozícióját követően. a sejtmorfológia változásának értékelésével és hemocitometriával. Az 5 és 16 százalékos CP szignifikánsan alacsonyabb értéket produkált< 0.001) enamel protein content (by weight) when compared to the control. The organic content in enamel varied accordingly to the CP treatment: for the 16% and 5% CP treatment groups, a variation of 4.0% and 5.4%, respectively, was observed with no significant difference. The cell viability of HDPSCs decreased exponentially over time for all groups. Within the limitation of this in-vitro study, we conclude that even low concentrations of H2O2 and CP result in a deleterious change in enamel protein content and compromise the viability of HGFCs and HDPSCs. These effects should be observed in-vivo.

A vonatkozó tanulmányok szerintcistancheegy közönséges gyógynövény, amelyet "az életet meghosszabbító csodanövényként" ismernek. Fő összetevője azcisztanozid, melynek különféle hatásai vannak, mint plantioxidáns, gyulladáscsökkentő és immunfunkciók elősegítése. A mechanizmus a cistanche ésbőrfehérítésa cistanche antioxidáns hatásában rejlikglikozidok. Az emberi bőrben a melanint a tirozin oxidációja katalizáljatirozináz, és az oxidációs reakcióhoz oxigén részvétele szükséges, így a szervezetben lévő oxigénmentes gyökök fontos tényezővé válnakbefolyásolómelaninTermelés. A Cistanche cisztanozidot tartalmaz, amely antioxidáns, és csökkentheti a szabad gyökök képződését a szervezetben, ígygátolja a melanin termelését.

Kattintson a Cistanche Tubulosa kiegészítőre a fehérítéshez

További információért:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

A fogfehérítés iránti törekvés tükrözi a páciensek kiváló esztétikai igényét, valamint a fogfehérítő szerek és technikák terén elért jelentős fejlődést. Bár ezt az eljárást rutinszerűen elvégzik a mosoly esztétikájának javítása érdekében, továbbra is két gyakori mellékhatásról számoltak be in vivo a létfontosságú fogfehérítő terápiák után: ínyirritáció1 és posztoperatív érzékenység2. Mindkét káros hatás közvetlenül kapcsolódik az aktivált fehérítő gélek lebomlása során felszabaduló melléktermékekhez3,4. A karbamid-peroxid (CP) az egyik leggyakrabban használt kezelés a létfontosságú otthoni fogfehérítéshez. A CP (CO(NH2) H2O2) szerves, fehér és kristályos, és hidrogén-peroxidra (H2O2) és karbamidra bomlik5,6. A H2O2 alacsony molekulatömeggel és nagy oxidációs képességgel rendelkezik, ami elősegíti gyors diffúzióját zománc prizmákban és interprizmatikus terekben7. A H2O2 vízzé, reaktív oxigénné és szabad gyökökké, például hidroxilgyökökké (OH-) disszociálhat. A fogban a "fehéredési reakciót" úgy gondolják, hogy a H2O2-eredetű szabad gyökök a nagy dentin kromogén molekulákat (kromoforokat) kisebb, kisebb vagy nem elnyelő optikai tulajdonságokkal rendelkező molekulákra bontják, 18. ábra. 9. Sajnos a H2O2 nem marad a dentinben, és többnyire a dentintubulusokon keresztül diffúzió útján juthat el a pulpakamrába. Feltételezték, hogy a pépet elérve a H2O2 csökkenti a sejtproliferációt, az anyagcserét és az életképességet10, csökkenti a pulpa-reparatív kapacitást11, szöveti nekrózist12, és végül pulpális fájdalmat okoz13. Egy korai jelentés azt sugallta, hogy alacsony koncentrációban a fehérítőszerek nem károsak a fogszerkezetre14. Mégis egyre több in vitro bizonyíték áll rendelkezésre arra vonatkozóan, hogy a CP alacsony koncentrációja (5 százalék és 10 százalék) mellett a H2O{40}}eredetű szabad gyökök káros hatása kimutatható a dentinben és a pulpakamrában5,15 . Bár a fogfehérítő szerek és technikák használata egyre népszerűbb, a tudományos irodalomban mindmáig nem találhatók olyan tanulmányok, amelyek a H2O2-eredetű szabad gyökök lehetséges káros hatását közvetlenül a fogsejtekre vizsgálták volna. Az ilyen kísérletek közvetlenül a betegeken történő elvégzése veszélyeztetné magának a fognak az vitalitását, mivel hozzá kell férni a pulpális szövethez. Figyelembe véve a fogpép őssejtek természetes funkcióját az odontoblasztok termelésében a reparatív dentin létrehozására, valamint arra, hogy maga a pulpa fenntartsa az egész fog vitalitását, mindazonáltal kritikus fontosságú annak értékelése, hogy ezek a melléktermékek hogyan hatnak az ilyen fogak populációjára. kritikus őssejt tároló. Ennek az in vitro vizsgálatnak az a célja, hogy egy dentin perfúziós korongmodell segítségével értékelje, hogy az otthoni peroxid alapú fogfehérítés eltérő koncentrációja milyen hatással van a fogsejtekre (HDPSC-k és HGFC-k) közvetlenül vagy közvetve.

Anyagok és metódusok

Az extrahálást követően a fogakat először 70 százalékos etanolos oldatban tároltuk szobahőmérsékleten legfeljebb 5 napig, majd eltávolították őket a megmaradt lágyrészekből, majd végül 0,1 százalékos timololdatban 4 fokon tároltuk, amíg szükség volt rá a fogak eltávolítására. vizsgálat (a tárolás nem haladta meg a 2 hónapot) (2a-i. ábra).

Mintaelőkészítés a zománc-fehérje (tömeg) arány elemzéséhez.A fáradt fogakat véletlenszerűen osztották be a kontroll- és két kezelési csoportba (N{{0}}/csoport). Ennek a vizsgálatnak a teljesítményét 80 százalékban, 0,05 p-értékkel állítottuk be, egy kísérleti vizsgálatban megbecsülve a szükséges elegendő mintanagyságot. A CP magas (16 százalék) és alacsony (5 százalék) koncentrációját választották ki a fogorvos által irányított otthoni fogfehérítés követésére, az Európai Fogorvosok Tanácsa ajánlása szerint (CED-DOC{10}}E 2012. augusztusi irányelvek). A fogakat 5 százalékos vagy 16 százalékos CP géllel tettük ki napi 4 órán keresztül 2 héten keresztül, és a kezelések között mesterséges nyálban tartottuk. A kontrollcsoportot ugyanebben az időszakban mesterséges nyálban tartottuk. A peroxid gélt homogén módon adagoltuk egy különálló, hőre lágyuló, vákuumformázott (nem elhelyezett) tálcába minden egyes foghoz, és a felesleget a gyártó ajánlása szerint eltávolítottuk. Bár a fogak mérete eltérő, gondoskodunk arról, hogy a kezelés ideje alatt minden fog koronája teljesen belemerüljön a CP gélbe. A mesterséges nyálat McKnight-Hanes és Whitford16 által felvázolt összetevők felhasználásával készítettük el (1. táblázat), és az elkészítést követően 4 fokon tartottuk. A kezelést követően minden fogat hosszirányban felvágtunk bukkális és linguális felekre (2a-ii. ábra), amelyekből teljes dentin-, pulpa- és EDJ-eltávolítást végeztek gyémánt és rozsdamentes acél fúrók segítségével egy gyors turbinás kézidarabban. A megmaradt zománchéjat (0,3-0,5 mm vastag) ultrahangos ionmentesített vízben tisztítottuk 30 másodpercig (2a-iii. ábra). A zománchéjakat ezután finom porrá porítottuk termogravimetriás vizsgálathoz, egy "Spartan, Vibratory Sieve Shaker" (FRITSCH GMBH, NÉMETORSZÁG) segítségével (2a-iv. ábra).

Zománc-fehérje (tömeg) arány elemzése fehérítés előtt és után.A termogravimetriás elemzést (TGA) a TGA 50 analizátorral (SHIMADZU CORPORATION, JAPAN) végeztük. Mindegyik minta (400±0,25) mg porított zománcból állt, platinatégelybe helyezve. A TGA ciklus szobahőmérséklet és 800 fok között futott, 10 fok/perc sebességgel, 1-perces tartás mellett 30 fokon. A méréseket oxigén alatt (50 ml/perc) végeztük. A 2b. ábrán a TGA görbéket az Y tengelyen mért tömegveszteség százalékában (TGA százalék) és hőmérsékletben (fok) mutatjuk be.

Sejttenyésztés.A CP hatása a humán fogpép őssejtek (HDPSC) túlélésére. Dentin lemezeket összesen 34 emberi fogból szereztek. A fogakat keresztirányban metszették a középkoronális szinten, hogy 3 mm vastag lemezmintákból standardizált dentinvastagságot kapjunk gyémánt mikrotom segítségével (STRUERS, ACCUTOM-50, STRUERS LTD., SOLIHULL, WEST MIDLANDS, UK). A korongokat 37 százalékos foszforsavba merítettük szonikus fürdőben legfeljebb 15 másodpercre, hogy eltávolítsuk a kenetréteget, majd 2 percig desztillált vízben öblítjük17. A dentintubulusok függőleges orientációját és nyílását pásztázó elektronmikroszkóppal (FLEXSEM 1000. HITACHI HIGH TECHNOLOGIES; TORONTO, KANADA) vizsgáltuk kiválasztott lemezeken. A sejttenyésztő lyuklemezeket transzwell betéttel módosítottuk (THERMO FISHER SCIENTIFIC, WHITBY, CANADA) a 3 mm vastag átmérőjű dentin korongok megtámasztására.<4 mm (Fig. 3). Gaps between the transwell insert walls, and the edges of the dentin discs were sealed using a flowable composite resin material (FILTEK SUPREME ULTRA FLOWABLE RESTORATIVE, 3M ESPE) (Fig. 3a) to ensure that any CP gel deposited on top of the dentin disc could only perfuse through the dentin tubules (Fig. 3b) Additionally, we ensured that the cell growth medium was in direct contact with the dentin disc's underside to mimic the partial pressure in the dentinal tubules. HDPSCs (LONZA WALKERSVILLE, INC. MD 21793-0127 USA) were cultured in the dental pulp stem cell (DPSC) basal medium supplemented with dental pulp stem cell growth supplement (DPSCGS), 50 ml; l-glutamine, 10.0 ml; Ascorbic Acid, 5.0 ml; Gentamicin/Amphotericin-B (GA) (LONZA WALKERSVILLE, INC. MD 21793-0127 USA). Cells from the 4th passage were used with a minimum of 50,000 cells present in each well of the 12 well-plate the day before the treatment. Te HDPSCs sub-cultures and dentin discs were randomly assigned to three treatment groups: exposure to 5%, 10%, 35% CP gel, and control. For the treatment groups, a drop of activated CP gel (using a drop of artificial saliva) at relevant concentrations was directly applied on top of the dentin disc mounted in the transwell insert (Fig. 3a) to simulate the exposure of the HPSCs to the whitening treatment. Artificial saliva was used for the control group. A time assay of HDPSCs survivability was performed for up to 4 h by evaluating the change in cell shape and morphology optically, as presented in Fig. 4a. In Addition, the ratio of live/dead cells at each time point was obtained by hemocytometry after trypan blue staining.

A H2O2 hatása a humán gingivális fibroblaszt sejtek (HGFC) túlélésére. A HGFC-ket (SCINCELL RESEARCH LAB ORATORIES, CARLSBAD, CA 92008, EGYESÜLT ÁLLAMOK) Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) (SIGMA CHEMICAL CO., ST. LOUIS, MO) táptalajban tenyésztettük, kiegészítve 10 százalék magzati borjú GRANDBCO-val, borjú-GRANDBCO-val NY) és 10 százalék antibiotikum 37 fokon (ISOTEMP FISHER SCIENTIFIC, PITTSBURGH, PA). A 4. passzázsból származó sejteket a kezelés előtti napon legalább 50,{8}} sejttel használtuk a lemez minden egyes üregében (12 lyuk). A tenyésztett HGFC-ket közvetlenül 5%-os H2O2-oldatnak tettük ki, amint az 5a-i. ábrán látható. A HGFC-k túlélésének időbeli vizsgálatát legfeljebb 4 órán keresztül végeztük a sejt alakjában és morfológiájában bekövetkezett változás optikai értékelésével, az 5a-ii, iii, iv, v és vi ábrákon bemutatottak szerint. Ezenkívül az élő/halott sejtek arányát minden időpontban (30 perc, 1 óra, 2 óra és 4 óra) hemocitometriával kaptuk meg tripánkék festés után.

Szerzői nyilatkozat.A szerzők szándékosan úgy döntöttek, hogy nem hozzák nyilvánosságra az ebben a tanulmányban használt, kereskedelmi forgalomban kapható termékek márkáját vagy gyártóját korábbi beadványunkban15.

Eredmények

Zománcáteresztő képesség.A 2b. ábra a kiválasztott zománcminta tömegváltozásának tipikus termogravimetriás (TGA) görbéjét mutatja a hőmérséklet függvényében. Ez a változás világosabban látható a DrTGA görbén (a TGA görbe 1. deriváltja), amely a legnagyobb tömegváltozási sebességet mutatja T=464 fokon. A 16 százalékos CP-vel kezelt csoport 40 százalékos organikus eltérést mutatott, míg az 5 százalékos CP-vel kezelt csoport 5,4 százalékos eltérést mutatott (2c. ábra), szignifikáns különbség nélkül. Mindkét kezelési csoport szignifikánsan alacsonyabb értéket mutatott (p<0.001) enamel protein content by weight following CP treatment when compared to the control group (~50% on average).

HDPSC-k.24 0 perc elteltével az összes CP-kezelésnek kitett HDPSC-k nem natív sejtmorfológiai megjelenést mutattak (kerek), a kontrollhoz képest (nincs expozíció CP-vel). A sejtpusztulást hemocitometriás számlálással igazoltuk tripánkék festéssel (4a. ábra). A 4b. ábra az élő/halott sejtek százalékos arányának illesztett diagramjait mutatja be az idő függvényében a kontrollcsoportra (nincs CP-expozíció) (4b-i. ábra) és a három CP-gélkoncentrációra (4b-ii, iii és iv ábra). A három kezelési csoportban exponenciálisan csökkent az idő múlásával megmaradt élő sejtek száma. Az élő/halott sejtek százalékos arányát az idő függvényében ábrázolva (4b. ábra), exponenciális bomlás illeszthető a megmaradt élő sejtek populációjára. Az egyes csoportok csillapítási állandójának (1/e vagy 70 százalékos csökkenés az eredeti populációban) kiszámításakor úgy tűnik, hogy mind a T10 százalékos CP, mind a T35 százalékos CP közel van egymáshoz (27,9±12,5) perc és ( 28,3,6±4,3) perc (4b-iii és iv ábra). Ezzel szemben T5 százalék CP=(203,4±246,0) min (4b-ii. ábra).

HGFC-k.A HGFC-k 30 perc elteltével kezdik elveszíteni morfológiai megjelenésüket, és a sejtpusztulást hemocitometriás számlálás igazolta tripánkék festéssel. 120 perces H2O2 expozíció után több mint 95 százalékos sejthalál regisztrálható. A Te 1/e időállandó TH2O2=(24,6±4,6) percnél fordul elő (5b. ábra).

Vita

Zománcáteresztő képesség.A zománc először találkozik a fehérítőszerekkel. Azonban a zománc több mint 98 százaléka hidroxiapatit ásványi fázisból áll, és a zománc kevesebb mint 2 százaléka fehérjékből áll (90 százalék amelogenin, 10 százalék enamelin és ameloblasztin). Ezek a fehérjék zománcburkot képeznek a zománcrudak körül érett fogakban18. E fehérjék bármilyen vesztesége növeli a zománc permeabilitását és elősegíti a külső reagensek behatolását19. Eredményeink arra utalnak, hogy a zománcfehérje érzékeny a CP bomlási reakció melléktermékeiből származó oxidatív lebomlásra. A fő tömegváltozás (430-500 fok) a zománc szervesanyag-tartalmának oxidatív lebomlását tükrözi, így csak a zománc ásványianyag-tartalma marad a tégelyben20. Az alacsony CP (5 százalék) koncentráció elegendő a zománc fehérjetartalmának megváltoztatásához. A peroxid alapú fehérítőszerekről kimutatták, hogy változásokat idéznek elő a zománc felületi textúrájában és morfológiájában8,21. Ferreira et al. kimutatták, hogy a 35 százalékos hidrogén-peroxid (HP) befolyásolta a zománc morfológiáját, különböző mértékű porozitásokat, mélyedéseket és felületi egyenetlenségeket okozva 22. A CP specifikusan egyenletes, maratáshoz hasonló eróziót váltott ki a felületi és felszín alatti zománcban az ásványi anyagok feloldódása és vízkőtelenítése miatt23. A zománc keménységének csökkenését és a zománc érdességének növekedését is okozhatja. 24. Egy elektronmikroszkópos vizsgálat során megfigyelték, hogy a CP-vel vagy HP-val végzett fehérítő kezelés különböző felületi változásokat idézett elő, beleértve a prizmaréteg csökkentését, a zománcprizmák demineralizációját, valamint a belső és a nagyobb porozitást. a zománcprizmák között25. Megközelítésünk kiterjesztette ezt a finanszírozást, mivel megerősítettük, hogy a zománc fehérjetartalma is jelentősen csökken, biztosítva a prizmaközi terek megnyílását, amelyek a CP lebomlási reakciói melléktermékeinek a fog belső részébe való behatolásához vezetnek. a pép. Mivel azonban a zománc összetételében bekövetkezett változások in vivo visszafordíthatók, a zománc összetételében bekövetkezett változás nem végleges.

A fogfehérítés hatása a HDPSC-kre és a HGFC-kre. Fogászati ​​túlérzékenység a betegek körülbelül kétharmadánál fordul elő a létfontosságú fehérítés során26. Ez elsősorban a peroxid zománcba és dentinbe történő diffúziójának tulajdonítható, ami kiszáradást és ezt követő folyadékmozgást eredményez a dentintubulusokban, ami stimulálja az idegvégződéseket, ami érzékenységhez vezet14. A fehérítő gélből felszabaduló melléktermékek túlzott expozíciója a legtöbb sejt számára oxidatív stresszt okoz27. A ROS (Reactive Oxygen Species) szintjének növekedése számos sejtkomponensre káros hatással van, ideértve a lipidperoxidációt, a fehérje oxidatív megváltozását és a DNS sejtkárosodást28. A bomlási állandók felhasználhatók annak jelzésére, amikor a tenyészet már nem életképes. Érdekes módon a 10 százalékos és a 35 százalékos CP-expozíció is hasonlóan hatott a sejttenyészetre, míg az 5 százalékos CP-expozíció sokkal kisebb mértékben, amint azt az állandó érték nagyobb hibája is bizonyítja. Ezen eredmények in vivo átültetése a pozitív pulpanyomás, a fogfolyadék és a sejt oxidatív stresszel szembeni belső védekezése miatti gyors sejthalál részleges mérséklését eredményezheti. Vizsgálatunk egyik korlátja az volt, hogy nem vizsgáltuk a sejtek helyreállítását és a gazdaszervezet immunválaszát a H2O{12}}eredetű szabad gyökök hatását követően.

HDPSC-k.Ismeretes, hogy a HDPSC-k a pépszövetből származó heterogén tenyészetet képviselik, beleértve a mesenchymális őssejtek populációját29, 30. Úgy döntöttünk, hogy ezt a heterogén tenyészetet használjuk ehhez a vizsgálathoz, mivel a mezenchimális őssejteket új odontoblaszt-szerű sejtek prekurzoraiként toborozzák, amelyek felelősek a dentin-pulpa komplex regenerációért a halálos odontoblaszt károsodást követően, amint az várható volt a ROS31-nek való kitettséget követően. Az odontoblasztok részt vesznek a pulpa gyulladásos/immunválaszának beindításában, fejlesztésében és fenntartásában is, ami a gazdaszervezet első védelmi vonala 32. Ezért elengedhetetlen a HDPSC-k túlélésének értékelése egy erősen káros környezetben. Eredményeink azt sugallják, hogy mind a 10 százalékos, mind a 35 százalékos CP gél expozíció a dentin korongon ugyanolyan módon hat a HDPSC-kre (az időállandó alapján), mintha a sejteket közvetlenül az 5 százalékos H2O2-nak tették volna ki, mint a HGFC-k esetében. A dentin korong (3 mm vastag) nem tudja visszatartani a CP bomlási reakciók melléktermékeinek behatolását, hogy elérje a sejttenyészetet, ha a CP koncentrációja meghaladja az 5 százalékos CP-t, amint azt a sejtéletképességi mérések kimutatták. Ez összhangban van korábbi in vitro vizsgálatunkkal15, amely bebizonyította, hogy még alacsony koncentrációjú (5 százalékos CP) fehérítőszerrel is a peroxid és a szabad gyökök a dentin keresztül a pulpaszövetbe diffundálhatnak, kollagén lebomlását és a szerves dentin csökkenését okozva. komponensek (amid I és amid III). A jelen vizsgálatban értékelt összes fogfehérítési protokoll transzzománc és transzdentin peroxid diffúziót eredményezett, amely közvetlenül összefügg a fogfehérítő gél koncentrációjával és a dentinre való felvitel idejével. Az emberi szövetből származó pépsejtek azonban továbbra is nagyon érzékenyek voltak az ebben a vizsgálatban vizsgált összes fehérítési protokollra, bár a válasz 5 százalékra eltért a 10 százaléktól és a 35 százaléktól. Korábbi vizsgálatok kimutatták a H2O2 által kiváltott pépsejtek oxidatív stresszét idő-/koncentrációfüggő módon10,33. A létfontosságú fogakban az oxidatív stressz gyulladásos pulpaválaszt okoz, amely közvetlenül kapcsolódik a fehérített fogak zománc- és dentinvastagságához31,34. Sato et al. kimutatták, hogy a 35 százalékos -H2O2 gél által keltett in vivo oxidatív stressz a fiatal humán premolárisok pulpaszövetében megnövelte a metalloproteinázok és a cisztein katepszin B aktivitását, amelyek mindkettő alapvető szerepet játszik a fehérjemátrix lebontásában. A jelen tanulmány adatai szerint ezek a negatív mellékhatások minimalizálhatók a zománccal vagy a dentinnel való érintkezési idő lerövidítésével, vagy a H2O2 koncentrációjának csökkentésével a fogfehérítő szerekben. Számos klinikai vizsgálat kimutatta, hogy a zománcra 45-60 percig felvitt (15-20 százalékos) H2O2 koncentrációjú fogfehérítő gélek jelentős színváltozást idézhetnek elő a magas, 35 százalékos H2O2 gélkoncentráció miatt. Ezekben a vizsgálatokban a fogérzékenység előfordulási gyakorisága 24 és 78 százalék között mozgott, enyhe súlyosságúnak tekinthető 35 és 37 százalék között. Ezenkívül egy újabb klinikai tanulmány kimutatta, hogy az alacsony 5 százalékos CP-tartalmú gélek fehérítési hatékonysága ugyanolyan hatékony, mint a 10 százalék CP38-at tartalmazó gélek. Így a peroxidkoncentráció és az expozíciós idő csökkentésével hatékony és kevésbé agresszív otthoni fogfehérítési protokollt lehet végrehajtani. A létfontosságú emberi fogakon végzett in vivo vizsgálatokra azonban szükség van a fogfehérítés hatékonyságának és a pulpa válaszainak értékeléséhez a jelen vizsgálatban értékelt fogfehérítési protokollok alkalmazása után. Bár tanulmányunknak nem állt szándékában egy „in vivo” típusú fogmodellt megismételni, egy egyszerű perfúziós modellt hoztunk létre, amely megkönnyíti a fehérítési módszerek fogsejtekre gyakorolt ​​hatásának tesztelését, hogy értékeljük azok rövid távú életképességét.

HGFC-k.A humán íny fibroblasztjai alapvető szerepet játszanak a szövetek felépítésében, működésében és a gazdaszervezet immunvédelmében39. Egyes jelentések azt mutatják, hogy a H2O2 irritációt, fekélyeket, égést és bizonyos káros hatásokat okozott az ínyen40,41. Beszámoltak arról, hogy a hidrogén-peroxid elősegítette a PKC és az ERK 1/2 aktiválását, és csökkentette a sejtek életképességét42. Egy in vitro vizsgálat szerint a 10-200 mM koncentrációban alkalmazott hidrogén elősegítette az apoptózist. A jellegzetes apoptotikus eseményeket, mint például a morfológiai változásokat, beleértve a kromatinkondenzációt, valamint a sejtmag- és DNS-fragmentációt, amelyek az apoptózison áteső sejtek jellemzői, a hidrogén-peroxid HGFC-ben43 mutatták ki. Jelen tanulmányban azt találtuk, hogy az 5 százalékos H2O2 csökkentette a HGFC-k életképességét. A H2O2 azonnali hatása a gingiva fibroblasztok életképességére nem közvetlenül reprodukálja a pulpakamrában zajló eseményeket, de jelzi, miért fordulhat elő ínyirritáció, és támogatja a fogínyvel való közvetlen érintkezés korlátozását44. Ennek az ínyhatásnak a megfordulásáról számoltak be 2 hét után 10 és 16 százalékos CP45 mellett.

Következtetések

Hivatkozások

1. Strassler, HE, Scherer, W. & Calamia, JR Karbamid-peroxid otthoni fehérítőszerek. Egy frissítés. NY State Dent. J. 58, 30–35 (1992).

2. Dahl, J. & Pallesen, U. Fogfehérítés – A biológiai szempontok kritikai áttekintése. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 14, 292–304 (2003).

3. Gökay, O., Müjdeci, A. & Algın, E. Peroxid penetration into the pulp from whitening strips. J. Endod. 30, 887–889 (2004).

4. Camargo, SEA, Valera, MC, Camargo, CHR, Mancini, MNG & Menezes, MM 38 százalékos hidrogén-peroxid behatolása a pulpkamrába szarvasmarha- és emberi fogaknál irodai fehérítési technikával. J. Endod. 33, 1074–1077 (2007).

5. Toledano, M., Yamauti, M., Osorio, E. & Osorio, R. A fehérítőszerek fokozzák a metalloproteinázok által közvetített kollagén degradációt a dentinben. J. Endod. 37, 1668–1672.

6. Alkahtani, R., Stone, S., German, M. & Waterhouse, P. A recenzió a fogfehérítésről. J. Dent. 100, 103423 (2020).

7. Park, HJ et al. A szarvasmarha zománcának változásai 30 százalékos hidrogén-peroxid fehérítőszerrel végzett kezelés után. Horpadás. Mater. J. 23, 517–521.

8. Elfallah, HM, Bertassoni, LE, Charadram, N., Rathsam, C. & Swain, MV A fogfehérítő szerek hatása a fogzománc fehérjetartalmára és mechanikai tulajdonságaira. Acta Biomater. 20, 120–128.

9. Okonogi, S. et al. A karbamid-peroxid stabilitásának és fogfehérítő aktivitásának fokozása az elektrofonású nanoszálas film segítségével. Pharmaceuticals 13, 381 (2020).

10. Min, KS et al. A hidrogén-peroxid hem oxigenáz-1 és dentin szialofoszfoprotein mRNS-t indukál az emberi pépsejtekben. J. Endod. 34, 983–989.

11. Goldberg, M. & Smith, AJ A dentin és a pulp sejtjei és extracelluláris mátrixai: A javítás és a szövetsebészet biológiai alapja. Crit. Rev. Oral Biol. Med. 15, 13–27.

12. Costa, CA, Riehl, H., Kina, JF, Sacono, NT & Hebling, J. Human pulp responses to in-office tooth whitening. Oral Surg. Oral Med. Oral Pathol. Oral Radiol. Endod. 109, e59-64.

13. Kugel, G., Papathanasiou, A., Williams, AJ 3rd., Anderson, C. & Ferreira, S. A kémiai és fényaktivált fogfehérítő rendszerek klinikai értékelése. Compend. Contin. Educ. Horpadás. 27, 54–62 (2006).

14. Goldberg, M., Grootveld, M. & Lynch, E. A fogfehérítő termékek nemkívánatos és káros hatásai: Áttekintés. Clin. Oral Investig. 14, 1–10.

19. Schiavoni, RJ et al. A fehérítőszerek hatása a zománc permeabilitására. Am. J. Dent. 19, 313–316 (2006).

Köszönetnyilvánítás

Szerzői hozzájárulások

Finanszírozás

Versengő érdekek

További információ

Újranyomtatások és engedélyek információionline elérhető.

Pkiadói megjegyzésA Springer Nature semleges marad a közzétett térképeken szereplő joghatósági igényeket és az intézményi kapcsolatokat illetően.

További információ: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501