AbsztraktA rózsaszirom-kivonatok bőrgyulladáscsökkentő hatását korábbi tanulmányunkban leírtuk. Mivel a bőrgyulladás szorosan összefügg a bőr öregedésével, tanulmányunkban a Rosa gallica szirmainak a bőr öregedésével kapcsolatos tevékenységekre gyakorolt ​​hatásait vizsgáltuk, mint például a bőr fehérítő és ránctalanító tulajdonságai. Minden egyes mintát extrakcióval készítettünk, különböző etanol arányok alkalmazásával, hogy kiértékeljük az optimális extrakciós feltételeket az ipari alkalmazásokhoz. Az R. gallica szirom 50%-os (v/v) vizes EtOH-kivonata jelentősen elnyomta a tirozináz aktivitást, a melanintermelést és a szoláris UV-sugárzás által kiváltott mátrix metalloproteinázt-1, amely a ráncképződés egyik jellemzője. Ezenkívül a vizes 50%-os (v/v) EtOH-kivonat mutatta a legmagasabb antioxidáns hatást és a legmagasabb flavonoid-tartalmat, ami összhangban van a bejelentett öregedésgátló hatásokkal. Eredményeink összességében arra utalnak, hogy az R. gallica szirmok kivonatai öregedésgátló hatást fejtenek ki. Ezen túlmenően, különösen az 50 százalékos EtOH extrakció volt optimális a legmagasabb öregedésgátló és antioxidáns hatás, valamint a legmagasabb flavonoid tartalom eléréséhez.

A vonatkozó tanulmányok szerint a cisztán egy közönséges gyógynövény, amelyet "az életet meghosszabbító csodanövényként" ismernek. Fő összetevője a cistanozid, amely különféle hatásokkal rendelkezik, mint például antioxidáns, gyulladáscsökkentő és immunfunkciót serkentő. A cistanche és a bőrfehérítés közötti mechanizmus a cistanche glikozidok antioxidáns hatásában rejlik. Az emberi bőrben a melanin a tirozin tirozináz által katalizált oxidációjával keletkezik, az oxidációs reakcióhoz pedig oxigén részvétele szükséges, így a szervezetben lévő oxigénmentes gyökök a melanintermelést befolyásoló fontos tényezővé válnak. A Cistanche cisztanozidot tartalmaz, amely antioxidáns, és csökkentheti a szabad gyökök képződését a szervezetben, így gátolja a melanintermelést.

KattintsonCistanche Tubulosa kiegészítő

További információért:

david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501

KulcsszavakRosa gallica Bőröregedés Flavonoid Antioxidáns hatás

Bevezetés

A bőr létfontosságú szerepet játszik az örökléssel és genetikával, környezeti problémákkal, hormonális változásokkal és anyagcsere-folyamatokkal kapcsolatos káros tényezők ellen (Mukherjee et al., 2006). Ezek közül a környezeti tényezők, például a nap ultraibolya (UV) sugárzásának való kitettség kulcsfontosságú közvetítőként járulnak hozzá a korai öregedéshez (Laga és Murphy, 2009). A fotóöregedés következtében fellépő bőröregedés fő tünetei a mély ráncok, a kóros pigmentáció és a rugalmasság (Farage et al., 2013; Wlaschek et al., 2001).

A pigmentáció az öregedés tünete, amelyet a melanin rendellenes termelése okoz, ami különféle bőrbetegségekhez, például szeplőkhöz, melazmához, öregségi foltokhoz és más hiperpigmentációs szindrómákhoz vezet (D'Mello et al., 2016; Seo et al., 2003). A melanogenezis útjában a tirozináz fontos sebességkorlátozó enzim, amely az L-tirozint L-DOPA-vá alakítja, és az L-DOPA-t DOPA-kinonná oxidálja (Akhtar et al., 2015). Ezért a tirozináz gátlása erősen összefügg a melaninszintézissel. Ezen túlmenően, a ráncképződés, amelyet a kollagén rostok és az elasztáz elvesztése okoz, a fotoöregedés másik jellemzője. A mátrix metalloproteináz-1 (MMP-1), amelyet az emberi bőr fibroblasztjai választanak ki, főként a kollagén lebomlásáért felelős a foto-öregedési folyamat során (Pandel et al., 2013). Az MMP-1 expressziójának csökkentése, amely gátolja a kollagén lebomlását, fokozhatja a ráncokat javító funkciókat.

A fent említett okok miatt a tirozináz inhibitorok vagy MMP-gátlók alkalmazása ígéretes stratégiának tekinthető a bőr foto-öregedés enyhítésére. Korábbi tanulmányok kimutatták, hogy a retinol, a fokhagyma kivonat (koffeinsav és az S-alli cisztein) és a fitoceramid, a kojsav, az arbutin és a C-vitamin gátolhatják a bőr öregedését (Couteau és Coiffard, 2016; Kim és mtsai, 2013). . Ezeknek az anyagoknak a használata azonban bizonyos korlátozásokkal jár, például különféle mellékhatásokkal, beleértve a citotoxicitást, a szagokat és a színezést (Yamakoshi et al., 2003). Ezért a jelenlegi tanulmányok a biztonságosabb, természetes eredetű összetevők fejlesztésére összpontosítanak, amelyek hatékony bőrvédelmet biztosítanak.

A világszerte termesztett Rosa fajok jó étrend-kiegészítő forrásnak számítanak. A rózsaszirom-kivonat (RPE), amely olyan elemeket tartalmaz, mint a fenolsav, flavonolok és antocianinok, számos jótékony hatást, például bőrgyulladáscsökkentő hatást mutat, más biológiai szerepeken kívül (Bitis et al., 2). 017; Lee et al., 2018; Masek és mtsai, 2017; Navarro-Gonzalez és mtsai, 2015). Mivel az RPE ezekről a tulajdonságairól ismert, hogy összefüggenek a bőr öregedésével, ezért javasolták, hogy a bőr védelmére potenciális jelölt. Az RPE bőröregedésre gyakorolt ​​hatásáról azonban keveset tudunk. Ezenkívül a vizet és az etanolt tartják a legjobb extrakciós oldószernek a polaritásbeli különbségek és a felhasználás biztonsága miatt (Abarca-Vargas et al., 2016). Így különböző víz és etanol arányú (0, 10, 30, 50, 70, 90 és 100 százalékos etanol RPE) mintákat készítettünk extrakcióval.

Ennek a tanulmánynak az volt a célja, hogy megvizsgálja az RPE hatását a bőrfehérítésre és a ráncok javítására. Különböző extrakciós oldószerarányú (0, 10, 30, 50, 70, 90 és 100 százalékos etanol/víz oldószeres) RPE kivonatokat teszteltünk az extrakcióhoz optimális oldószerarány meghatározásához.

Anyagok és metódusok

Reagens

A Rosa gallica szirmait Törökországból importálták a GN Bio-n (Gyeonggi, Korea) keresztül. A Dulbecco által módosított Eagle táptalajt (DMEM), magzati szarvasmarha-szérumot (FBS), penicillin-sztreptomicin-neomicint és 0,5 százalék tripszin-EDTA-t a GIBCO Invitrogentől (Auckland, NZ, USA) vásároltuk. A tirozináz és b-aktin elleni specifikus antitesteket a Santa Cruz Biotech-től (Santa Cruz, CA, USA) vásároltuk. Az MMP-1 elsődleges antitestét a K+F rendszerektől szerezték be. Az összes többi vegyszert, beleértve az alfa-melanocita stimuláló hormont (a-MSH), a gomba tirozinázt és az L-DOPA-t (L-3, 4-dihidroxifenilalanin) a Sigma-Aldrich Co., LLC-től (St.) vásároltuk. Louis, MO, USA).

Minta előkészítés

A rózsaszirmokat 100 ml 0, 10, 30, 50, 70, 90 és 100 térfogatszázalékos EtOH-val (abszolút etanol) kevertük össze. Az oldható komponenseket ezután 80 fokos vízben extraháltuk visszafolyató hűtő alkalmazásával. Az extraktumot 2-es számú szűrőpapíron (Whatman, Maidstone, England) átszűrtük, vákuumban koncentráltuk, majd desztillált vízben feloldottuk és fagyasztva szárítottuk, hogy mintaként használjuk fel a funkcionális analízishez.

Sejttenyésztés

A B16F10 melanoma sejteket a Korean Cell Line Banktól (Szöul, Korea) vásároltuk. A humán dermális fibroblaszt (HDF) sejteket Dr. Jin Ho Chungtól (College of Medicine, Seoul National University, Szöul, Korea) szereztük be. Mindkét sejtet DMEM-ben tenyésztettük, amelyet 10% magzati szarvasmarha-szérummal (v/v) és 1% (v/v) penicillinnel egészítettek ki, 37 °C-os és 5% CO2-körülmények között.

Sejt életképesség

A sejtek életképességét MTS [3-(4,5-dimetiltiazol-2-il)-5-(3-karboxi-metoxifenil)-2-({{7) segítségével mérték }}szulfofenil)-2H-tetrazólium] vizsgálat. A sejteket 96-lyuklemezekre oltottuk, és addig növesztettük, amíg összefolytak. Ezután a sejteket szérummentes DMEM-mel éheztettük egy éjszakán át, és 24 órán keresztül kezeltük a mintákkal a jelzett koncentrációkban. A minták expozíciója után 20 l MTS oldatot hagytunk reagálni a sejtekkel 1 órán át. Az abszorbanciát mikrolemez-leolvasóval (Sunrise-Basic Tecan, Tecan Austria GmbH Gro¨dig, Ausztria) mértük 570 nm-en.

In vitro gomba tirozináz aktivitás

Az in vitro tirozináz vizsgálatot a korábban leírt módszerek szerint végeztük (Kim et al., 2015). Röviden, minden mintából 4{7}} l-t adtunk a vizsgálati pufferhez (20 lL 0,1 M kálium-foszfát), majd 30 percig inkubáltuk 20 l gomba tirozinázzal (0,02 mg/ml). Ezután mindegyik keverékhez 40 l szubsztrátot (L-DOPA) adtunk. A reakciót szobahőmérsékleten 15 percig hagytuk lejátszódni, majd a dopakróm képződését 475 nm-en mért abszorbanciával elemeztük mikrolemez-leolvasóval (Infinite 2000 PRO, Tecan, Svájc).

A melanintermelés értékelése

A melanintermelési vizsgálatot a korábban leírt protokoll szerint végeztük (Friedmann és Gilchrest, 1987; Gordon és mtsai., 1989). A B16F10 sejteket (8 9 103 sejt) 6-lyukú lemezekre oltottuk 2 ml táptalajjal. 24 óra elteltével a mintákat 1 órán át előkezeltük a sejtekkel, majd a-MSH-t (100 nM) exponáltuk a sejtekkel. A sejteket 72 óra elteltével összegyűjtöttük, és a melanintermelést mikrolemez-leolvasóval (Infinite 2000 PRO, Tecan, Svájc) 495 nm-en mértük.

Western blot

A fehérjemintákat sejtekből 19 Cell Lysis Puffer (Cell Signaling Technology, Danvers, MA) alkalmazásával vettük. A fehérjekoncentrációt PierceTM BCA Protein Assay Kit (Thermo Fisher Scientific, San Jose', CA, USA) segítségével becsültük meg. A fehérjemintákat 10 százalékos SDS-poliakrilamid gélre (Bio-Rad Laboratories, Hercules, California, USA) töltöttük fel elektroforézis céljából, majd átvittük egy Immobilon P membránra (Millipore, Billerica, MA, USA). A PVDF membránt 5 százalék zsírmentes tejjel blokkoltuk 1 órán át, és a membránt specifikus primer antitesttel kezeltük egy éjszakán át 4 °C-on. A fehérjesávokat kemilumineszcencia-detektáló készlettel (GE Healthcare, NJ, USA) detektáltuk egy HRP-vel konjugált másodlagos antitesttel (Cell Signaling) való hibridizálás után.

DPPH gyökfogó vizsgálat

A DPPH gyökfogó aktivitását az alábbiak szerint mértük; {{0}},2 ml kivonatot adtunk 3 ml -etanolhoz, amelyhez 0,8 ml 400 lM etanolban oldott DPPH-t adtunk. Ezt a keveréket 10 másodpercig vortexeltük, majd 10 percig szobahőmérsékleten tartottuk, és az abszorbanciát 517 nm-en mértük (Wang és mtsai., 1999). A DPPH gyökfogó aktivitását azon csoport abszorbanciájának százalékában fejeztük ki, amelyhez nem adtunk DPPH-t. Minden kísérletet legalább háromszor megismételtünk.

Összes flavonoid tartalom

A kivonatok összes flavonoid tartalmát alumínium-kloridos módszerrel (Jia et al., 1999) mértük, amelyet katechin alkalmazásával módosítottak. 100 l kivonathoz 500 l desztillált vizet és 30 l NaNO2-t, majd 6 perc múlva 60 l AlCl3-at adtunk. 5 perc elteltével 200 l 1 M NaOH-t adunk hozzá, és desztillált vízzel 1 ml-re melegítjük. Az oldatot jól összekeverjük, és 15 928 g-vel, 4 fokon, 5 percig centrifugáljuk. Centrifugálás után 200 ul felülúszót kaptunk, és az abszorbanciát mikrolemez-leolvasóval (Infinite 2000 PRO; Tecan, Svájc) 510 nm-en mértük.

Statisztikai analízis

A kísérleteket három párhuzamosban végeztük, és az adatokat átlag ± standard deviációban (SD) fejeztük ki. Az egyes statisztikai összehasonlításokhoz Student-féle t-próbát használtunk. A statisztikai szignifikancia értéke (#) {{0}} p\ 0.05 és (##)=p\ 0.001 összehasonlítás céljából a kezeletlen kontrollal; (*)=p\ 0,05 és (**)=p \0,001 az a-MSH-val kezelt csoporttal való összehasonlításhoz.

Eredmények és vita

A Rosa gallica szirmainak kivonása különböző oldószerarányok szerint

Korábban az RPE-t 70%-os (v/v) vizes etanolos extrakcióval állították elő (Lee et al., 2018). Ha azonban az RPE-t ipari felhasználásra szánják, az extrakciós feltételeknek optimálisnak kell lenniük. Annak érdekében, hogy megvizsgáljuk az RPE optimális extrakciós körülményeit a bőröregedés elleni aktivitáshoz, különböző oldószereket használtunk az RPE-hez (1A. ábra). Érdekes módon az egyes kivonatok színe a vizuális megfigyelés alapján változott (1B. ábra). A 90 százalékos vagy magasabb etanolos kivonatok színe tiszta volt, míg az 50 térfogatszázalékos EtOH-kivonat a legvörösebbnek tűnt. A koloriméter eredménye a*-értéket mutatott ki a vörösségre 50 százalékos EtOH esetén, ami a legmagasabb szintet mutatta a kivonatok között (1C. ábra).

A rózsaszirom kivonatainak hatása a bőrfehérítő aktivitásra

Mivel a tirozináz a melanintermelésen keresztüli hiperpigmentációban szerepet játszó kulcsenzim (Chang, 2009), elemeztük a kivonatok tirozináz aktivitásra gyakorolt ​​gátló hatását in vitro. A 100 százalékos EtOH kivételével a legtöbb kivonat dózisfüggő regressziót mutatott az in vitro tirozináz aktivitásban (2A. ábra). Ezenkívül a 30 és 50 százalékos EtOH kivonatok erősebb gátló hatást mutattak, mint az aszkorbinsav. Az aszkorbinsavat bőrfehérítő szerként írták le a korábbi irodalomban (Chang, 2009). A kivonatok bőrfehérítő aktivitásának sejtmodellben történő értékeléséhez a melanintermelést B16F10 melanomasejtekben értékeltük az egyes kivonatokkal végzett kezelést követően. Az a-MSH 100 nM-os adagja növelte a melanintermelést, és a rózsaszirom minden kivonata gátolta a melanintermelést (2B. ábra). Továbbá a 30 százalékos és az 50 százalékos EtOH-kivonatok mutatták a legerősebb gátló hatást a tirozináz aktivitásra és a melanintermelésre in vitro. Hasonló körülmények között vizsgáltuk az egyes kivonatok hatását a tirozináz expresszióra. Ezenkívül az a-MSH növelte a tirozináz expressziót, és mindegyik kivonat 100 ug/ml-e gyengítette a tirozináz expressziót (2C. ábra). A 100 ug/ml koncentrációjú kivonatokkal végzett kezelés nem okozott sejt citotoxicitást B16F10 melanomasejtekben (2D. ábra). Így a melanin RPE általi gátlása a tirozináz-aktivitás kettős működésének és az expressziónak a citotoxicitás hiányának tulajdonítható.

Az RPE hatása a szoláris UV (sUV) által kiváltott MMP-1 expressziójára humán dermális fifibroblasztokban

Az MMP-1 inhibitorai ránctalanító szereknek tekinthetők (Park et al., 2018; Yang et al., 2018). Ennek az az oka, hogy az MMP{4}} kulcsfontosságú enzim, amely a bőr öregedési folyamata során a ráncok kialakulásáért felelős (Pittayapruek et al., 2016). Az RPE ránctalanító hatásának meghatározására az MMP-1 expresszióját humán dermális fibroblasztokban Western blot analízissel értékelték. Az MMP-1 expressziója drámaian megnőtt az SUV besugárzás hatására (30 kJ/cm2), és minden kivonat gátolta az SUV által kiváltott MMP-1 expressziót (3A. ábra). Míg a 100 százalékos EtOH kivonatok enyhe hatást mutattak, addig az 50 százalékos EtOH kivonatok mutatták a legerősebb elnyomó hatást az SUV által kiváltott MMP-1 expresszióra. Ezt követően az MMP{18}} termelési szintjét vizsgáltuk tenyésztő tápközegben, mivel az MMP-1 a kollagén lebontásához szekretált fehérje. A 3A. ábrán láthatóhoz hasonlóan a tenyésztési tápközeg MMP-1 szintjét minden egyes kivonat elnyomta (3B. ábra). Pontosabban, az 50 százalékos EtOH-kivonat mutatta a legnagyobb elnyomó aktivitást az SUV által kiváltott MMP-1-expresszióra, a 100 százalékos EtOH-kivonat pedig enyhe hatást mutatott más kivonatokhoz képest.

A rózsaszirom kivonat antioxidáns hatása és összes flavonoid tartalma

A ROS-termelést gátló antioxidánsokról ismert, hogy csökkentik a hiperpigmentációt vagy megakadályozzák az UV-sugárzás által kiváltott melanintermelést (Yamakoshi et al., 2003). A DPPH gyökfogó aktivitását meghatároztuk, hogy összehasonlítsuk a kivonatok antioxidáns aktivitását. Érdekes módon minden kivonat drasztikus, dózisfüggő, gyökfogó aktivitást mutatott. Az 500 lg/ml-es minták a C-vitaminhoz hasonló antioxidáns hatást mutattak. A kivonatok közül az 50 százalékos etanolos kivonat mutatta a legerősebb antioxidáns hatást a legalacsonyabb koncentrációnál (50 lg/ml) (4A. ábra).

A rózsasziromban sok különböző vegyület található, például terpének, flavonoidok és antocianinok (Knapp és mtsai, 1998; Kumar és mtsai, 2008; Oka és mtsai, 1998; Schieber és mtsai, 2005). Ezek a vegyszerek számos biológiai aktivitást képviselnek (Kumar et al., 2009). Különösen a flavonoidokat írják le a fenolos vegyületek fő csoportjaként, amelyek felelősek az antioxidáns és gyulladáscsökkentő hatások biológiai tulajdonságaiért (Du et al., 2016; Jung és mtsai, 2015). Ezután megmértük az egyes kivonatok teljes flavonoid tartalmát. Mindegyik kivonatban nagy mennyiségű flavonoid volt jelen (4B. ábra). Az eredmények azt mutatták, hogy a minták közül az 50 százalékos EtOH-kivonat tartalmazta a legmagasabb flavonoid-tartalmat. Ez a tendencia hasonló volt az antioxidáns vizsgálat eredményéhez.

A rózsaszirom 50 százalékos EtOH oldószerének sötétvörös színe az antocianinhoz, egy flavonoidhoz kapcsolódik (1. ábra). Ez az eredmény alátámasztja egy korábbi tanulmány (Oancea et al., 2012) megállapításait. Az előző tanulmány szerint az áfonyában (Vaccinium orymbosum L.) lévő antocianinokat 50 százalékos etanolos oldószerben lehetett a legjobban kivonni, mint bármely más oldószerben, beleértve a 60 százalékos, 70 százalékos és 80 százalékos etanolt (Oancea et al., 2012). Az antocianinok természetesen glikozidként fordulnak elő. Így feltételeztük, hogy az antocianinok polaritását az 50 százalékos EtOH oldószer adhatta. Az antocianinok erős antioxidáns hatását jól demonstrálják különböző modellrendszerek (Kalt és mtsai, 2003; RiceEvans és mtsai, 1995). Mivel az 50 százalékos EtOH rózsaszirom kivonat volt a legmagasabb antocianintartalommal, az 50 százalékos EtOH kivonat antioxidáns hatása volt a legerősebb az 50 lg/ml-es kivonatok között.

Összefoglalva, tanulmányunk bemutatta az RPE-ben rejlő potenciált a bőröregedés elleni összetevőként. Ipari alkalmazás esetén a kitermelési feltételek optimalizálása elengedhetetlen a termelési költségek csökkentése érdekében. A jelenlegi tanulmány a rózsaszirom kivonására legalkalmasabb oldószereket vizsgálta, tekintettel a bőröregedés elleni aktivitásra. A rózsasziromban lévő flavonoidokat 50 százalékos etanollal extraháltuk a legjobban. Ez a kivonat mutatta a legerősebb antioxidáns hatást, valamint a bőr öregedését gátló aktivitást, például bőrfehérítő és ránctalanító aktivitást. Klinikai vizsgálatokra és stabilitási elemzésekre lehet szükség az ipari alkalmazásra való alkalmasság teszteléséhez.

KöszönetnyilvánításEzt a kutatást a Korea Research Food Institute (KFRI) fő kutatási programja (E0183112-02) támogatta, amelyet a Tudományos, IKT és Jövőtervezési Minisztérium, valamint a Koreai Institute of Planning and Evaluation for Technology in Food, Agriculture finanszírozott. , Erdészet és Halászat (IPET) a nagy hozzáadott értékű élelmiszertechnológiai fejlesztési programon keresztül, amelyet a Mezőgazdasági, Élelmiszerügyi és Vidékügyi Minisztérium (MAFRA) finanszíroz (118060-03-2- HD020).

Az etikai normáknak való megfelelés

Hivatkozások

1. Abarca-Vargas R, Malacara CFP, Petricevich VL. Antioxidáns és citotoxikus hatású kémiai vegyületek jellemzése Bougainvillea x buttiana Holttum és Standl, (var. Rose) kivonatokban. Antioxidánsok 5:45 (2016)

2.Akhtar MN, Sakeh NM, Zareen S, Gul S, Lo KM, Ul-Haq Z, Shah SAA, Ahmad S. A kalkonszármazékok tervezése és szintézise, ​​mint potens tirozináz inhibitorok és szerkezeti aktivitásuk kapcsolata. J. Mol. Struktúra. 1085: 97–103 (2015)

3.Bitis L, Sen A, Ozsoy N, Birteksoz-Tan S, Kultur S, Melikoglu G. A Rosa sempervirens leveleiből származó különféle kivonatok flavonoidjai és biológiai aktivitásai. Biotechnol. Biotechnol. Felszerelni. 31: 299–303 (2017)

4.Chang, TS. A tirozináz inhibitorok frissített áttekintése. Int. J. Mol. Sci. 10: 2440–2475 (2009)

5.Couteau C, Coiffard L. Bőrfehérítő szerek áttekintése: gyógyszerek és kozmetikai termékek. Cosmetics 3:27 (2016)

6.D'Mello SA, Finlay GJ, Baguley BC, Askarian-Amiri ME. Jelátviteli útvonalak a melanogenezisben. Int. J. Mol. Sci. 17:7 (2016)

7. Du L, Sun G, Zhang X, Liu Y. Tizenhét ananászfajta fenolos profiljának és antioxidáns aktivitásának összehasonlítása és összefüggései. Food Sci. Biotechnol. 25: 445–451 (2016)

8. Farage MA, Miller KW, Elsner P, Maibach HI. Az öregedő bőr jellemzői. Adv. Sebkezelés 2: 5–10 (2013)

Friedmann PS, Gilchrest BA. Az ultraibolya sugárzás közvetlenül indukálja a tenyésztett humán melanociták pigmenttermelését. J. Cell Physiol. 133: 88–94 (1987)

9. Gordon PR, Mansur CP, Gilchrest BA. Az emberi melanociták növekedésének, dendritásának és melanizációjának szabályozása keratinocita eredetű faktorok által. J. Invest. Dermatol. 92: 565–572 (1989)

10. Jia Z, Tang MC, Wu JM. Az eperfa flavonoid tartalmának meghatározása és szuperoxid gyökök megkötő hatása. Food Chem. 64: 555–559 (1999)

11. Jung H, Lee HJ, Cho H, Lee K, Kwak HK, Hwang KT. Antocianinok a Rubus gyümölcsökben és antioxidáns és gyulladáscsökkentő hatások a RAW 264.7 sejtekben. Food Sci. Biotechnol. 24: 187–1886 (2015)

12. Kalt W, Lawand C, Ryan DAJ, McDonald JE, Donner H, Forney CF. A magasbokor áfonya (Vaccinium corymbosum L.) oxigéngyök felvevő képessége, antocianin- és fenoltartalma az érés és tárolás során. J. Am. Soc. Hortic. Sci. 128: 917–923 (2003)

13.Kim SR, Jung YR, An HJ, Kim DH, Jang EJ, Choi YJ, Moon KM, Park MH, Park CH, Chung KW, Bae HR, Choi YW, Kim ND, Chung HY. Az aktív fokhagyma komponensek ránc- és gyulladáscsökkentő hatása és az MMP-k gátlása NF-jB jelátvitelen keresztül. PLoS ONE 8: e73877 (2013)

14.Kim JH, Baek EJ, Lee EJ, Yeom MH, Park JS, Lee KW, Kang NJ. A Ginsenoside F1 gyengíti a B16F10 melanomasejtek hiperpigmentációját azáltal, hogy dendrit-visszahúzódást indukál és aktiválja a Rho jelátvitelt. Exp. Dermatol. 24: 150–152 (2015)

15. Knapp H, Straubinger M, Fornari S, Oka N, Watanabe N, Winterhalter P. (S)-3, 7-dimetil-5-oktén-1,{{5 }}diol és rokon oxigéntartalmú monoterpenoidok a Rosa damascena Mill szirmaiból. J. Agri. Food Chem. 46: 1966–1970 (1998)

16. Kumar N, Bhandari P, Singh B, Gupta AP, Kaul VK. Fordított fázisú HPLC a polifenolok gyors meghatározásához rózsafajok virágaiban. J. Sep. Sci. 31: 262–267 (2008)

17. Kumar N, Bhandari P, Singh B, Bari SS. Antioxidáns aktivitás és ultra-teljesítményű LC-elektrospray ionizációs kvadrupólus repülési idő tömegspektrometria a rózsafajok fenolalapú ujjlenyomatvételéhez: Rosa damascena, Rosa bourboniana és Rosa brunonii. Food Chem. Toxicol. 47: 361–367 (2009)

18. Laga AC, Murphy GF. Az emberi bőr fotoöregedés transzlációs alapjai: modellek, módszerek és jelentés. Am. J. Pathol. 174: 357–360 (2009)

19.Lee MH, Nam TG, Lee I, Shin EJ, Han AR, Lee P, Lee SY, Lim TG. A rózsaszirom kivonat (Rosa gallica) gyulladáscsökkentő hatása a MAPK jelátviteli útvonalának csökkentésén keresztül. Food Sci. Nutr. 6: 2560–2567 (2018)

20.Masek A, Latos M, Chrzescijanska E, Zaborski M. A rózsakivonat (Rosa villosa L.) antioxidáns tulajdonságai elektrokémiai és UV/Vis spektrofotometriás módszerekkel mérve. Int. J. Electrochem. Sci. 12: 10994–11005 (2017)

21.Mukherjee S, Date A, Patravale V, Korting HC, Roeder A, Weindl G. Retinoidok a bőr öregedésének kezelésében: a klinikai hatékonyság és biztonság áttekintése. Clin. Interv. Aging 1: 327–348 (2006)

22.Navarro-Gonzalez I, Gonzalez-Barrio R, Garcia-Valverde V, Bautista-Ortin AB, Periago MJ. Ehető virágok tápanyagösszetétele és antioxidáns kapacitása: fenolos vegyületek jellemzése HPLC-DAD-ESI/MSn módszerrel. Int. J. Mol. Sci. 16: 805–822 (2015

23.Oancea S, Stoia M, Coman D. Az extrakciós körülmények hatása a Vaccinium corymbosum bioaktív antocianintartalmára élelmiszeripari alkalmazások szempontjából. Procedia Eng. 42: 489–495 (2012)

24.Oka N, Ikegami A, Ohki M, Sakata K, Yagi A, Watanabe N. Citronellyl disaccharide glycoside as aroma precursor from rose flowers. Phytochemistry 47: 1527-1529 (1998)

25. Pandel R, Poljsak B, Godic A, Dahmane R. Skin photoaging and the role of antioxidants in its prevent. ISRN Dermatol. 2013: 7 (2013)

26. Park EK, Lee HJ, Lee H, Kim JH, Hwang J, Koo JI, Kim SH. A melatonin ránctalanító mechanizmusa UVB-vel kezelt HaCaT keratinocitákban és szőrtelen egerekben a ROS és a sonic hedgehog által közvetített gyulladásos fehérjék gátlásával. Int. J. Mol. Sci. 19: 6 (2018)

27. Pittayapruek P, Meephansan J, Prapapan O, Komine M, Ohtsuki M. Role of matrix metalloproteinase in photoaging and photocarcinogenesis. Int. J. Mol. Sci. 17 (2016)

28. Rice-Evans CA, Miller NJ, Bolwell PG, Bramley PM, Pridham JB. A növényi eredetű polifenolos flavonoidok relatív antioxidáns hatásai. Free Radic. Res. 22: 375–383 (1995)

29.Schieber A, Mihalev K, Berardini N, Mollov P, Carle R. Flavonol glycosides from destillált petals of Rosa damascena Mill. Z. Naturforsch. C. 60, 379–384 (2005) S

30.eo SY, Sharma VK, Sharma N. Gomba tirozináz: közelmúltbeli kilátások. J. Agric. Food Chem. 51: 2837–2853 (2003)

31. Wang MF, Jin Y, Ho CT. A rezveratrol származékok, mint potenciális antioxidánsok értékelése és a rezveratrol és a 2,2-difenil-1-pikrihidrazil gyök reakciótermékének azonosítása. J. Agric. Food Chem. 47: 3974–3977 (1999)

32. Wlaschek M, Tantcheva-Poor I, Naderi L, Ma W, Schneider LA, Razi-Wolf Z, Schuller J, Scharffetter-Kochanek K. Solar UV irradiation and dermal photoaging. J. Photochem. Photobiol. B. 63: 41–51 (2001) Yamakoshi J, Otsuka F, Sano A, Tokutake S, Saito M, Kikuchi M, Kubota Y. 33. Világosító hatás a tengerimalac bőrének ultraibolya sugárzással kiváltott pigmentációjára proanthocyanidinrich orális adagolásával kivonat szőlőmagból. Pigment Cell Res. 16: 629–638 (2003)

32.Yang JE, Ngo HTT, Hwang E, Seo SA, Park SW, Yi TH. A diétás enzimekkel kezelt Hibiscus syriacus L. megvédi a bőrt a krónikus UVB által kiváltott fotoöregedéstől a bőr hidratáltságának és kollagénszintézisének fokozásával. Boltív. Biochem. Biophys. 662: 190–200 (2018)

További információ: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501