huNyelv
Haza / Tudás / Tartalom

Tudás

Mikrofluidikus papír alapú analitikai eszköz (μPAD) a hidrokinon meghatározására az arcfehérítő krémben floroglucinol reagens használatával

May 19, 2023

Absztrakt

Ebben a munkában egy mikrofluidikus papíralapú analitikai eszközt (µPAD) fejlesztettek ki az arcfehérítő krémekben található hidrokinon phloroglucinol segítségével történő elemzésére. A µPAD hidrofób gátat tartalmaz a detektáláshoz, és viasznyomtatóval, Whatman kromatográfiás papírral készült. A kimutatást kolorimetriás módszerrel végeztük, amely egy narancssárga hidrokinon-fluoroglucinol komplex képződése alapján történt. A µPAD detektálási zónáján kialakult színes reakcióterméket letapogattuk, és a kapott képeket Image-J szoftverrel feldolgoztuk színintenzitásuk (RGB érték) meghatározására. Az érzékeny mérések elérése érdekében optimalizáltuk a folyamat körülményeit. A maximális érzékenységet eredményező optimális körülmények közé tartozott a phloroglucinol → NaOH → minta (hidrokinon) reagens addíciós szekvenciája, 1 µL 0,5 százalékos floroglucinol, 1 M NaOH és egy 10-perces reakció. Optimális körülmények között a µPAD két lineáris kalibrációs görbét hozott létre a hidrokinonra 10–100 mg/l (R2=0.9979) és 250–1000 mg/L (R2 = 0.9991) koncentráció mellett. A módszer nagyon jó szelektivitást mutatott a célanalitra propilénglikol és rezorcin jelenlétében, kielégítő érvényességgel és közel 100 százalékos átlagos visszanyeréssel. A javasolt µPAD egy nagyon egyszerű és olcsó technika a hidrokinon-analízishez, és kielégítő eredménnyel alkalmazható kozmetikai mintákon.

A vonatkozó tanulmányok szerint a cisztán egy közönséges gyógynövény, amelyet "az életet meghosszabbító csodanövényként" ismernek. Fő összetevője a cistanozid, amely különféle hatásokkal rendelkezik, mint például antioxidáns, gyulladáscsökkentő és immunfunkciót serkentő. A cistanche és a bőrfehérítés közötti mechanizmus a cistanche glikozidok antioxidáns hatásában rejlik. Az emberi bőrben a melanin a tirozin tirozináz által katalizált oxidációjával keletkezik, az oxidációs reakcióhoz pedig oxigén részvétele szükséges, így a szervezetben lévő oxigénmentes gyökök a melanintermelést befolyásoló fontos tényezővé válnak. A Cistanche cisztanozidot tartalmaz, amely antioxidáns, és csökkentheti a szabad gyökök képződését a szervezetben, így gátolja a melanintermelést.

cistanche chemist warehouse

Kattintson a Hol vásárolhatok Cistanche-ra

További információért:

david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501

Kulcsszavak: kolorimetria, hidrokinon, image-j, floroglucinol, µPAD

Bevezetés

A hidrokinon a fehérítő krémek gyakori hatóanyaga, amely depigmentációs szerként hat a bőrre. Gátolja a tirozináz aktivitását, amely a melanint szintetizálja az epidermiszben. Így hidrokinon jelenlétében a bőr pigmentációja gátolt és a melanintermelés csökken, ami világosabb arcszínt eredményez [1]. A hidrokinon kozmetikumokban, különösen a bőrfehérítő krémekben való felhasználását azonban 2001-ben betiltották, mivel az anyag káros hatásokat fejt ki a bőrön, beleértve irritációt, bőrpírt (erythema) és égő érzést. A hidrokinon tartalmú kozmetikumok hosszan tartó használata leukodermát, exogén ochronózist és nephrotoxicitást okozhat. Ezenkívül a hidrokinonos fehérítő kozmetikumok túlzott használata a felhasználó egészségi állapotának általános megváltozásához, mutációkhoz, sőt rák kialakulásához is vezethet [2, 3].

A hidrokinon meghatározását a kozmetikumokban számos módszerrel lehet elérni, beleértve a redox-titrálást, a vékonyréteg-kromatográfiát [1], a spektrofotometriát [4, 5], az áramlásos injektálásos spektrofotometriát [6-8] és a nagy teljesítményű folyadékkromatográfiát (HPLC) ) [9,10]. Ezek a módszerek, különösen az utóbbi, jól ismertek arról, hogy pontos méréseket, valamint nagy pontosságot és hatékonyságot kínálnak. Azonban ezek a módszerek is képzett kezelőt igényelnek, és nem hordozhatók; így nem használhatók helyszíni mérésekre.

A mikrofluidikus papíralapú analitikai eszközök (µPAD) egyszerű és olcsó eszközt jelentenek a helyszíni elemzéshez. Ezt a műszermentes technikát számos országban széles körben alkalmazzák a kvalitatív és kvantitatív mérések hatékony és eredményes analitikai eszközeként. A µPAD kialakítása egy hidrofil reakciózóna kialakításán alapul, amely hidrofób gátat tartalmaz a diszperzió szabályozására egy papírplatformon. A hidrofil-hidrofób gát csatornákat hoz létre, amelyek korlátozzák a minta mozgását a kapilláris erők révén a papírhordozóban, és így nincs szükség külső támogatásra [11]. Az analit koncentrációjának meghatározására szolgáló fő kimutatási módok közé tartozik az elektrokémia [12–14], a kolorimetria [15, 16] és az elektro-kemilumineszcencia [17, 18]. Alacsony költségük és hordozhatóságuk miatt a µPAD-eket környezeti elemzésre [19–21], biokémiai elemzésre, valamint bioaktív vegyületek és betegségek kimutatására [22–29] fejlesztették ki. A fehérítő kozmetikumokban a hidrokinon kimutatására szolgáló µPAD-alapú módszerről azonban még nem számoltak be.
A kolorimetria nagyon praktikus kimutatási módszer, mivel a szemikvantitatív mérésekhez csak szabad szemre van szükség. Kvantitatív mérésekhez a µPAD képeket digitális fényképezőgéppel vagy szkennerrel lehet rögzíteni, majd személyi számítógéppel (PC) feldolgozni. Jelen kutatás célja egy µPAD kifejlesztése a hidrokinon kimutatására olyan fehérítő krémekben, amelyekben a floroglucinol szelektív kromogén reagens. A floroglucinol jó érzékenységet, pontosságot és precizitást mutatott a spektrofotometriás hidrokinonanalízis során [4–8]. Ebben a tanulmányban a hidrokinon elemzése a narancssárga hidrokinon-fluoroglucinol komplex µPAD papíron lúgos körülmények között történő képződése alapján történik. A minta hidrokinonkoncentrációja a digitális nyomtatási technikával nyert µPAD képek színintenzitásának Image-J szoftverrel történő mérésével határozható meg. Ennek az új technikának a folyamatkörülményei is optimalizáltak a hidrokinonanalízis legjobb teljesítményének elérése érdekében.

Anyagok és metódusok

Anyagok és berendezések.Az ebben a munkában használt berendezés között szerepelt egy viasznyomtató (Xerox ColorCube 8580 DN-2, T2B047382 típusú) a hidrofób gát kinyomtatására Whatman No. 1 kromatográfiás papírra (CHR, Whatman, GE Healthcare Life Sciences, Egyesült Királyság) a µPAD számára. . Egy főzőlapot használtak a viasztinta gát felmelegítésére, és lehetővé tették, hogy áthatoljon a papíron, hogy hibátlan gátat képezzen a reakciózóna számára. A Canon PIXMA MP237 szkenner és az Image-J szoftver segítségével a rögzített képek színintenzitását vörös, zöld és kék (RGB) értékekké értelmezték, amelyeket aztán a módosított Lambert–Beer törvény segítségével abszorbancia értékké alakítottak át.

cistanche nedir

A hidrokinont (Sigma Aldrich, Kína) használtuk standard megoldásként az optimalizálástól a validálásig minden eljárásban. A floroglucinolt és a NaOH-t (99%) a Merck-től (Németország), a 95%-os etanolt pedig a Sigma Aldrich-től vásároltuk. A floroglucinolt kromogén reagensként használták, hogy lúgos körülmények között narancssárga komplexet képezzenek hidrokinonnal. A szelektivitási teszthez rezorcint és propilénglikolt (Sigma Aldrich) használtunk. Kétféle fehérítő krémet használtak valódi mintaként a módszer validálásához. Az ebben a munkában alkalmazott eljárások mindegyike korábbi tanulmányokból származott, némi módosítással [21, 29].
Készülék előkészítés.A µPAD megtervezéséhez CorelDraw X7 Graphics Suite szoftvert használtunk, amint az 1. ábrán látható. A µPAD egy hidrofil reakciózónából (azaz egy 5 mm belső átmérőjű körből) és egy hidrofób gátból (vastagság, {{3}) állt. },8 mm). A hidrofil reakciózóna lehetővé tette a minta reakcióját floroglucinollal, míg a hidrofób gát szabályozta a diszperziót és megakadályozta a szivárgást a reakciózónából. A µPAD-t úgy állítottuk elő, hogy a legyártott mintát Whatman No. 1 kromatográfiás papírra (200 mm × 200 mm) nyomtattuk a viasznyomtatóval hidrofób viasztintával, amely biszamidból és maleinsavanhidrid viaszokból készült. A nyomtatott eszközöket főzőlapra helyezték, hogy a hidrofób védőviasz áthatoljon a papíron, így teljesen hidrofób gátat képezve, amely szabályozni tudja a folyadék áramlását. A µPAD melegítési körülményeit Wisang (2019) és Fauziah (2019) [29] kutatásai alapján végezték. Itt a µPAD-et alumíniumfóliával borították be, és 90 másodpercig 120 fokon melegítették.

Módszer optimalizálása.A javasolt µPAD módszer folyamatkörülményeit optimalizálták, hogy lehetővé tegyék az érzékeny méréseket.

Először is meghatároztuk a reagens immobilizálásának megfelelő sorrendjét a µPAD-n. Ebben a kísérletben a reagensek reakciózónába történő csepegtetési sorrendjét a következőképpen változtattuk: (A1) NaOH → fluoroglucinol → hidrokinon és (A2) floroglucinol → NaOH → hidrokinon. A legerősebb színintenzitást adó szekvenciát választottuk ki optimális hozzáadási szekvenciaként, és használtuk a következő kísérlethez.
Ezután meghatároztuk a µPAD reakciózónát elfoglalni képes phloroglucinol pontos térfogatát. A µPAD kimutatási zónába {{0}},4, 0,6, 0,8, 1,0 és 1,2 µl floroglucinol térfogatokat töltöttünk be. A további kísérletekhez azt a phloroglucinol térfogatot választottuk ki, amely pontosan a detektálási zónán belül maradt.
Az optimalizálást a phloroglucinol ({{0}}.01 százalék –1 százalék) és a NaOH (0,1, 0,5, 1,0, 1,5 és 2 M) változtatásával folytattuk. koncentrációkat, hogy megkapjuk az optimális értékeket, amelyek a színes hidrokinon-fluoroglucinol komplex legnagyobb intenzitásának eléréséhez szükségesek. Ezt követően a phloroglucinol és a NaOH optimális koncentrációit alkalmaztuk
kísérletek nyomán.

cistanche reddit

cistanche supplement

Hidrokinon meghatározása.A hidrokinon-detektálást a 2.3. szakaszban meghatározott optimális körülmények között a 2. ábra szerint végeztük. Ebben a sémában 1 µl 0,5 százalékos floroglucinolt csepegtettünk a µPAD kimutatási zónára. A készüléket 5 percig állni hagytuk, majd 1 µl 1 M NaOH-oldatot adtunk a kimutatási zónához. A készüléket további 10 percig állni hagytuk, hogy megszáradjon, ezután már használatra késznek tekintettük. A hidrokinon kimutatását egyszerűen úgy lehetett elérni, hogy 1 µl mintát a µPAD eszköz reakciózónájába csepegtetünk, hagyjuk a papírt 10 percig állni, majd a narancssárga reakcióterméket Canon PIXMA MP273 szkennerrel szkenneljük. A kapott képek színintenzitását Image-J szoftverrel RGB értékekké dolgoztuk fel, majd abszorbancia értékekké konvertáltuk. A hidrokinon koncentrációját úgy határoztuk meg, hogy a kapott abszorbanciát egy standard kalibrációs görbéhez illesztettük.

A standard hidrokinon különböző koncentrációiból (0, 10, 25, 50, 75, 100, 250, 500, 750 és 1000 mg/L) pontosan 1 µl-t csepegtettünk a µPAD-re, és a feldolgozást a képen látható módon végeztük. A kalibrációs görbét úgy szerkesztettük meg, hogy a kapott abszorbanciát ábrázoltuk a hozzáadott hidrokinon-koncentráció függvényében.

Módszer szelektivitás.A µPAD módszer hidrokinonnal szembeni szelektivitását arcfehérítő krémekben úgy határoztuk meg, hogy hidrokinon méréseket végeztünk rezorcinnal és propilénglikollal, mint zavaró vegyülettel, illetve anélkül. Különféle koncentrációjú rezorcint (0, 25, 50, 125 és 250 mg/L) adtunk öt 10 ml-es, 25 mg/l hidrokinont tartalmazó mérőlombikba, és a jelig hígítottuk. Ezen oldatok színintenzitását ugyanazzal a hidrokinon-meghatározási eljárással mértük (2. ábra), a megfelelő RGB értékeket abszorbanciává alakítottuk át, és kiszámítottuk a hidrokinon visszanyerését. Ugyanezt az eljárást megismételtük a propilénglikollal, ugyanolyan különböző koncentrációkkal, mint a rezorcinol. A zavaró vegyületeket tartalmazó és anélküli oldatok hidrokinonkoncentrációjának különbségét használtuk a százalékos hiba kiszámításához.

cistanches herba

Módszer érvényesítése.A módszer validálása a µPAD használatával történt a hidrokinon meghatározására két kozmetikai mintában a standard addíciós technikával. Pontosan 0,10 g A és B fehérítő krémet mértünk ki, és fokozatosan feloldottuk desztillált vízzel egy 50 ml-es főzőpohárban. Az oldatot finom szűrőpapíron átengedjük, és a szűrletet fecskendőszűrővel még egyszer szűrjük. A leszűrt oldatot 100 ml-es mérőlombikba töltöttük, és jelig desztillált vízzel adtuk hozzá. Ezt követően a mintát hígítottuk, hogy olyan koncentrációt kapjunk, amely a kalibrációs görbe tartományán belül van.

A hidrokinon koncentrációját a mintákban a 2.4. pontban ismertetett lépésekkel határoztuk meg. Ezután ezeket az eljárásokat megismételtük, miután 10 és 20 mg/l hidrokinon standard oldatot adtunk a mintákhoz. A mintákban a hidrokinon százalékos visszanyerését úgy számítottuk ki, hogy a standard kiadás után a mintákból visszanyert hidrokinon koncentrációt hasonlították össze a kozmetikumok tényleges hidrokinonkoncentrációjával.

Eredmények és megbeszélés

A µPAD reakciózónájában a szín a phloroglucinol ionok hidrokinonnal lúgos körülmények között történő reakciójával jött létre. A kapott színes képeket Image-J szoftverrel elemeztük, hogy RGB értékeket kapjunk, amelyeket azután a módosított Lambert–Beer törvény segítségével abszorbanciaértékekké konvertáltak.
A hidrokinonanalízis µPAD módszerének alapelve a narancssárga termék képződésén alapul a detektálási zónában a hidrokinon-fluorglucinol komplex képződése révén. A reakció akkor kezdődik, amikor 2 molekula NaOH magához vonz két hidrogénatomot egy phloroglucinol molekulából, hogy egy floroglucinol iont képezzenek (enolát; 3. ábra), amely nukleofilként működik. Ezután nukleofil addíción megy keresztül, melynek során egy phloroglucinol ion megtámadja a hidrokinon C=C kettős kötését, majd elektron delokalizáció következik be, majd az oxigén kapcsolatokon keresztül phloroglucinol-hidrokinon komplex alakulhat ki. Egy másik mechanizmus, amelyen keresztül a hidrokinon-fluoroglucinol komplex képződhet, az oxidatív kapcsolás. Az oxidatív kapcsolási reakció két molekula összekapcsolódását jelenti, hogy oxidációs reakción keresztül C-O vagy C-C kötés jöjjön létre. A hidrokinon és a floroglucinol fenolos vegyületek, amelyek C-O kötéseken keresztül hetero-kapcsolódhatnak. A hidrokinon-fluorglucinol komplex kialakulásának lehetséges reakciómechanizmusa a 4. ábrán látható.

cistanche herb

Optimális feltételek meghatározása

A reagens hozzáadása sorrendjének optimalizálása.A reagensek µPAD-re történő csepegtetési sorrendje befolyásolhatja a floroglucinol-hidrokinon komplex képződését és a hidrokinon mérés érzékenységét. Az 5. ábra azt mutatja, hogy az A2 szekvencia intenzívebb színt ad a µPAD detektálási zónában, mint az A1 szekvencia. Ez a megállapítás azzal magyarázható, hogy a phloroglucinol kiterjedt átalakul phloroglucinol ionokká, amelyek nukleofil csoportokként működnek, elősegítve a kívánt komplex kialakulását, amelyet az A2 szekvencia segít elő. Amint az 5. ábrán látható, a kék leolvasások intenzitása sokkal magasabb volt, mint a piros és zöld leolvasások intenzitása. Emellett a kék értékek lineárisan korreláltak a színintenzitással (vagy abszorbanciával) és a hidrokinon koncentrációval. Ez a megállapítás megegyezik Kohl [30] eredményeivel, aki azt találta, hogy az intenzitás és a koncentráció között lineáris kapcsolat érhető el kiegészítő színleolvasások alkalmazásával. Így kék leolvasást választottunk a µPAD képek színintenzitásának mérésére a következő kísérletekben.

cistanche amazon

A floroglucinol térfogatának optimalizálása.Az optimális phloroglucinol térfogat pontosan a detektálási zóna területén produkálhatja a floroglucinol-hidrokinon komplex legmagasabb színintenzitását. Minél nagyobb a phloroglucinol térfogata, annál nagyobb a komplex színintenzitása (abszorbanciája), amint az a 6. ábrán látható. A kék leolvasással meghatározott abszorbancia a floroglucinol térfogatának 1 µl-re történő növelésével nőtt; azonban az 1,2 µl-t meghaladó phloroglucinol térfogatok miatt a komplex átjutott a hidrofób gáton, ami hibás eredményekhez vezethet. Ezért 1 µl phloroglucinol térfogatot használtunk a további optimalizáláshoz.

cistanche norge

A floroglucinol koncentráció optimalizálása.A narancssárga phloroglucinol-hidrokinon komplex abszorbanciája kezdetben a floroglucinol-koncentrációval {{0}},5 százalékig nőtt, majd kiegyenlített, mert az összes hidrokinon teljesen egy floroglucinol-hidrokinon komplexet alkotott (7. ábra). . Ezért a 0,5 százalékot tekintették az optimális phloroglucinol koncentrációnak.

A NaOH koncentráció optimalizálása.Az optimális NaOH koncentráció megfelelő lúgos atmoszférát biztosít a negatív töltésű floroglucinol ionok képződéséhez. A NaOH hidroxil (OH–) csoportja megtámadhatja a fluoroglucinol OH– csoportjában lévő hidrogént, és floroglucinol iont képezhet, amely viszont megtámadhatja a hidrokinont, és így heterokomplex fluoroglucinol-hidrokinon komplexet képezhet. A 8. ábra azt mutatja, hogy a magasabb NaOH koncentráció növeli a µPAD képek színintenzitását. A legnagyobb abszorbanciát 1 M NaOH koncentrációnál kaptuk. Így a további kísérletekhez 1 M NaOH-t használtunk.

cistanche para que serve

A reakcióidő optimalizálása.A reakcióidőt úgy optimalizáltuk, hogy meghatározzuk a legrövidebb szkennelési időt és elkerüljük a komplex vegyületek színromlását. A rövid reakcióidő a floroglucinol-hidrokinon komplex tökéletlen képződését eredményezheti. A hosszú reakcióidő azonban ronthatja a komplex színt a fénynek való kitettség és a nem megfelelő hőmérséklet és pH miatt. A 10 perces reakcióidő optimális eredményeket adott maximális abszorbanciával (9. ábra). Ezt a reakcióidőt használtuk fel a további kísérletekhez.

Szabványos görbe és linearitás mérések.A fent kapott optimális körülmények között (azaz A2 reagens immobilizálási szekvencia, 1 µL 0,5 százalék phloroglucinol, 1 M NaOH és 10-perces reakció) a µPAD módszert 1 µL A minta színintenzitása egyértelmű különbségeket mutatott, mivel a hidrokinon koncentrációja 10 mgL−1 és 1000 mg/L között változott (10. ábra). Ha a kapott képek színintenzitásának RGB-értékeit abszorbanciaértékekké alakítottuk, és ez utóbbit a hidrokinon-koncentráció függvényében ábrázoltuk, nagyon jó korrelációkat (azaz R 2 közel 1-et) kaptunk a 10–10-es koncentráció-tartományokban. 100 mg/l (11-a ábra) és 250–1000 mg/L hidrokinon (11-b ábra). A µPAD képek nagyobb intenzitással mutattak színeket magas hidrokinonkoncentráció mellett, és alacsonyabb intenzitással alacsony hidrokinonkoncentráció esetén. Más szavakkal, minél magasabb a hidrokinon koncentrációja, annál nagyobb a narancssárga phloroglucinol-hidrokinon komplex színintenzitása.

cistanche tubulosa supplement

A 11. ábra szerint a hidrokinon koncentrációja arányos a µPAD kép színintenzitásával; konkrétan minél nagyobb a hidrokinon koncentráció, annál nagyobb a kék leolvasások intenzitásából kapott abszorbancia érték. Az 10 mgL−1 és 100 mgL−1 közötti koncentrációjú hidrokinon standard görbéje y =  0,0004x plusz 0,0563 lineáris regressziós egyenletet adott (R{{9). }}.9979). Hasonlóképpen, a hidrokinon-koncentráció és az abszorbancia közötti összefüggés y=0.0001x plusz 0,0923 (R2=0.9991) lineáris regressziós egyenletet adott 250-1000 mgL-1 hidrokinonkoncentráció mellett. Ebben a munkában az 1-hez közeli R2 értékek nagyon jó lineáris korrelációt jeleznek a koncentráció és az abszorbancia között.

Módszer szelektivitás.A µPAD módszer szelektivitását úgy vizsgáltuk, hogy standard hidrokinon oldathoz külön-külön rezorcint és propilénglikolt, a fehérítő kozmetikumokban gyakran előforduló anyagot adtunk. Amint az 1. táblázatban látható, a rezorcin 25, 50 és 125 mg/l koncentrációban történő hozzáadása nem befolyásolta jelentősen a µPAD módszerrel kapott hidrokinon méréseket. Ezt a megállapítást alátámasztja a generált kis százalékos hiba (<10%). Hydroquinone measurements obtained following the addition of 250 mg/L resorcinol  (1:10) showed a slight increase, with a % error of  10.82%. The results of a t-test at the 95% confidence level showed that count (3.65) is greater than the table (2.92). Thus, the addition of resorcinol to a sample at amounts 10 times greater than the hydroquinone concentration can increase the measured concentration of the latter. The addition of propylene glycol at concentrations of 25, 50, 125, and 250   mg/L did not interfere with the measurement of hydroquinone concentration, as indicated by the low % error determined from the experiments.

how to take cistanche

cistanche for sale

Módszer érvényesítése.A µPAD módszer érvényességét a hidrokinon kimutatásával értékelték kétféle fehérítő krém kozmetikumban. A validációs teszt eredményeit a 2. táblázat mutatja be. A µPAD módszer nagyon jó pontosságot és érvényességet mutatott, amit a 95–105 százalék közötti visszanyerési értékek, valamint a nagy pontosság (százalékos RSD < 10 százalék) támaszt alá.

Összefoglalva, az ebben a munkában javasolt µPAD módszer kielégítő pontosságot és precizitást biztosít. Ezért az előállított eszköz alternatív módszerként használható a hidrokinon kimutatására a fehérítő krém kozmetikumokban.

rou cong rong benefits

Következtetés

A fehérítő krémekben a hidrokinon mennyisége meghatározható a javasolt μPAD segítségével, amely a hidrokinon és a phloroglucinol egyszerű reakcióján alapul lúgos körülmények között, és így narancssárga hidrokinon-fluoroglucinol komplex képződik. Ezzel a módszerrel 10-100 és 250-1000 mg/l tartományban határozható meg a hidrokinon koncentrációja. Bár az ebben a munkában kifejlesztett µPAD kevésbé érzékeny más fejlett módszerekkel összehasonlítva, egyszerű eljárást igényel és olcsó. A javasolt μPAD készülék tesztkészletként használható az arcfehérítő krémekben található hidrokinon-szint elég nagy pontossággal és pontossággal történő monitorozására.

where can i buy cistanche

Köszönetnyilvánítás

A szerzők hálásak a Brawijaya Egyetem Kémiai Tanszékének, hogy elősegítették ezt a kutatást, és a Brawijaya Egyetem Természettudományi Karának, hogy pénzügyi támogatást nyújtottak a DIPA 2020 Doktori Ösztöndíjon keresztül-023.17.2.677512/2020, szerződésszám. 32/UN10.F09/PN/2020.

Hivatkozások

[1] Ortonne, JP., Bissett, DL 2008. Legújabb betekintés a bőr hiperpigmentációjába. J. Investig. Dermatol. Symp. Proc. 13:10-14,

[2] Westerhof, W., Kooyers, T. 2005. Hidrokinon és analógjai a bőrgyógyászatban – lehetséges egészségügyi kockázat. J. Cosmet. Dermatol. 4. (2): 55–9

[3] Couteau, C., Coiffard, L. 2016. Overview of Skin Whitening Agents: Drugs and Cosmetic Products Cosmetics. 3(27): 1–16,

[4] Elferjani, HS, Ahmida, NHS, Ahmida, A. 2017. Hidrokinon meghatározása egyes gyógyszerészeti és kozmetikai készítményekben spektrofotometriás módszerrel. IJSR. 6(7): 2219–2324,

[5] Sulistyarti, H., Sari, PM, Syamaidzar, Retnowati, R., Tolle, H., Wiryawan, A. 2020. Indirekt spektrofotometriás módszer a hidrokinon meghatározására kozmetikumokban, a króm(VI)-difenil-karbazid csökkenése alapján Abszorpció. IOP Conf. Ser. Mater. Sci. Eng. 833(012047): 1–10,

[6] Fahmi, MI, Sulistyarti, H., Mulyasuryani, A., Wiryawan, A. 2019. Optimization of flow injekció (FI) – Spectrophotometry for Hydroquinone Analysis. J. Pure App. Chem. Res. 8. (1): 53–61

[7] Trenggamayunelgi, FS, Sulistyarti, H., Retnowati, R. 2019. Flow Injection-Spectrophotometry Method for Hydroquinone Determination Based on the Formation of Blue Starch-Jodine Complex. IOP Conf. Ser. Mater. Sci. Eng. 546(032031): 1–10, https://doi.org/10.1088/1 757- 899X/546/3/032031.

[8] Albhibani, MMO, Sulistyarti, H., Sabarudin, A. 2019. Flow Injection – Indirect Spectrophotometry for Hydroquinone Analysis Based on Formation of Iron (II)-Fenanthroline Complex. J. Pure App. Chem. Res. 8(3): 208–216

[9] García, PL, Santoro, MIRM, Kedor-Hackman, ERM, Singh, AK 2005. HPLC és UV-származék spektrofotometriás módszer kifejlesztése és validálása a hidrokinon meghatározására gél- és krémkészítményekben. J. Pharm. Biomed. Anális. 39 (3–4): 764–768.

[10] Gimeno, P., Maggio, AF, Bancilhon, M., Lassu, N., Gornes, H., Brenier, C., Lempereur, L. 2016. HPLC-UV Method for the Identification and Screening of Hydroquinone, Hidrokinon éterei és kortikoszteroidok, amelyeket esetleg bőrfehérítő szerként használnak tiltott kozmetikai termékekben. J Chromatogr. Sci. 54 (3): 343–352,

[11] Martinez, AW, Phillips, ST, Whitesides, GM, Carrilho, E. 2010. Diagnostics for the Developing World: Microfluidic Paper-Based Analytical Devices. Anális. Chem. 82. (1): 3–10

[12] Adkins, J., Boehle, K., Henry, C. 2015. Elektrokémiai papíralapú mikrofluidikus eszközök. Electrophoresis, 36(16): 1811–1824,

[13] Oh, JM, Chow, KF 2015. Az elektrokémiai papíralapú analitikai eszközök legújabb fejlesztései. Anális. Mód. 7(19): 7951–7960

[14] Mettakoonpitak, J., Boehle, K., Nantaphol, S., Teengam, P., Adkins, JA, Srisa-Art, M., Henry, CS 2016. Electrochemistry on paper-based analytical devices: A Review. Elektroanalízis. 28(7): 1420–1436

[15] Yao, B., Zhang, J., Kou, TY, Song, Y., Liu, TY, Li, Y. 2017. Papíralapú elektródák rugalmas energiatároló eszközökhöz. Adv. Sci. 4(7): 1700107

[16] Sriram, G, Bhat, MP, Patil, P., Uthappa, UT, Jung, HY, Altalhi, T., Kumeria, T., Aminabhavi, TM, Pai, RK, Madhuprasad, Kurkuri, MD 2017. Papír -alapú mikrofluidikus analitikai eszközök toxikus ionok kolorimetriás kimutatására: áttekintés. Trends Anal. Chem. 93: 212–227

[17] Morbioli, GG, Mazzu-Nascimento, T., Stockton, AM, Carrilho, E. 2017. A kolorimetriás detektálás technikai vonatkozásai és kihívásai mikrofluidikus papíralapú analitikai eszközökkel (µPADs–A review. Anal. Chim. Acta. 970: 1–22

[18] Yu, JH, Ge, SG, Yan, M. 2014. Lab-on-papír alapú eszközök kemilumineszcenciával és elektrogenerált kemilumineszcenciás detektálással. Anális. Bioanal. Chem. 406(23): 5613–5630

[19] Gross, EM, Durant, HE, Hipp, KN, Lai, RY, 2017. Elektrokemilumineszcencia-detektálás papíralapú és más olcsó mikrofluidikus eszközökben. Chem. Elektro. Chem. 4(7): 1594–1603

[20] Busa, LSA, Mohammadi, S., Maeki, M., Ishida, A., Tani, H., Tokeshi, M. 2016. Advances in microfluidic paper-based analystical devices for food and water analysis. Mikrogépek. 7:8

[21] Wisang, YF, Sulistyarti, H., Andayani, U., Sabarudin, A. 2019. Mikrofluidikus papíralapú analitikai eszközök (µPAD-k) szabad szemmel és kolorimetriás detektálást használó vezetékelemzésre. IOP Conf. Ser. Mater. Sci. Eng. 546: 0320331–7

[22] Meredith, NA, Quinn, C., Cate, DM, Reilly, TH, Volckens, J., Henry, CS 2016. Papír alapú analitikai eszközök környezeti elemzéshez. Elemző. 141(6): 1874–1887

[23] Yetisen, AK, Akram, MS, Lowe, CR 2013. Papír alapú mikrofluidikus diagnosztikai eszközök. Labor. Forgács. 13(12): 2210–2251

[24]Jeong, S.-G., Kim, J., Nam, J.-O., Song YS, Lee C.- S. 2013. Papír alapú analitikai eszköz kvantitatív vizeletvizsgálathoz. Int. Neurorol. J. 17(4): 155–161

[25] Santhiago, M., Nery, EW, Santos, GP, Kubota, LT 2014. Mikrofluidikus papíralapú eszközök bioanalitikai alkalmazásokhoz. Bioanalízis. 6 (1): 89–106

[26] Rozand, C. 2014. Papír alapú analitikai eszközök fertőző betegségek helyszíni vizsgálatához. Eur. J. Clin. Microbiol. Megfertőzni. Dis. 33. (2): 147–156

[27] Xia, Y., Si, J., Li, Z. 2016. Gyártási technikák mikrofluidikus papíralapú analitikai eszközökhöz és biológiai vizsgálatokhoz való alkalmazásaik: Áttekintés. Biosens. Bioelektron. 77, 774–789.

[28] Mahdiasanti, IW, Sabarudin, A., Sulistyarti, H. 2019. BUN-Kreatinin szimultán meghatározása vesefunkció biomarkerként a vérben mikrofluidikus papír alapú analitikai eszközök segítségével, IOP Conf. Ser. Mater. Sci. Eng. 546(032019): 1–9

[29] Fauziyah, N., Andini, Anneke, Oktavia, I., Sari, MI, Sulistyarti, H., Sabarudin, A. 2019. IOP Conf. Ser. Mater. Sci. Eng. 546(032007): 1–8

[30] Kohl, SK, Landmark, JD, Stickle, DF 2006. Az abszorbancia bemutatása digitális színes képelemzés és színes megoldások segítségével. J. Chem. Educ. 83. (4): 644–646

További információ: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501

Akár ez is tetszhet