5.2. Illóolaj-elemzés

Az illóolajok hidrodesztillációval történő izolálása Clevenger típusú készülékben történt 3 órán keresztül [64].

A cisztanche glikozidja növelheti az SOD aktivitását a szív- és májszövetekben, és jelentősen csökkentheti az egyes szövetek lipofuscin- és MDA-tartalmát, hatékonyan megkötve a különböző reaktív oxigéngyököket (OH-, H2O₂ stb.) és megvédheti az okozott DNS-károsodást. OH-gyökök által. A Cistanche feniletanoid glikozidok erős szabad gyökfogó képességgel rendelkeznek, nagyobb redukáló képességgel rendelkeznek, mint a C-vitamin, javítják a SOD aktivitását a spermiumszuszpenzióban, csökkentik az MDA-tartalmat, és bizonyos védő hatást fejtenek ki a spermium membrán működésére. A cistanche poliszacharidok fokozhatják a SOD és a GSH-Px aktivitását a D-galaktóz által okozott kísérletileg öregedő egerek eritrocitáiban és tüdőszöveteiben, valamint csökkenthetik a tüdő és a plazma MDA- és kollagéntartalmát, valamint növelhetik az elasztintartalmat. jó eltávolító hatás a DPPH-ra, meghosszabbítja a hipoxia idejét öregedő egerekben, javítja a SOD aktivitását a szérumban, és késlelteti a tüdő fiziológiás degenerációját kísérletileg öregedő egerekben A sejtmorfológiai degenerációval a kísérletek kimutatták, hogy a Cistanche jó antioxidáns képességgel rendelkezik és potenciálisan gyógyszer lehet a bőröregedési betegségek megelőzésére és kezelésére. Ugyanakkor a Cistanche-ban található echinakozid jelentős mértékben képes megkötni a DPPH szabad gyököket, és képes megkötni a reaktív oxigénfajtákat, megakadályozza a szabad gyökök által kiváltott kollagén lebomlását, és jó helyreállító hatással van a timin szabad gyökök anionkárosodására is.

Kattintson a Cistanche Tubulosa Supplement elemre

【További információ: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Az olajok elemzését gázkromatográfiával (GC) és gázkromatográfiával/tömegspektrometriával (GC/MS) egyaránt elvégeztük. A gázkromatográfiás elemzéseket gázkromatográf segítségével (Agilent 7890A, Palo Alto, CA, USA) végeztük, amely 30 m × 0,25 mm belső átmérőjű, 0,25 µm-es álló helyzetben van. filmvastagság HP-5 kapilláris oszlop (Agilent J&W, Santa Clara, CA, USA). A következő hőmérsékleti programot használtuk: 60 ◦C-tól 246 ◦C-ig 3 ◦C min−1 sebességgel, majd 20 percig 246 ◦C-on tartottuk (a teljes elemzési idő 82 perc). Egyéb működési feltételek a következők voltak: hélium vivőgáz (tisztaság 99,9999 százalék vagy annál nagyobb – Air Liquide, Milánó, Olaszország); áramlási sebesség, 1,0 ml/perc-1; befecskendező hőmérséklet, 250 ◦C; detektor hőmérséklete, 300 ◦C. 1 µl hígított mintát (1:100 n-hexánban, tömeg/tömeg) 1:20 osztási arányban injektáltunk, automatikus mintavevő (Agilent, Model 7683B, Santa Clara, CA, USA) segítségével.

A GC-MS analíziseket gázkromatográf segítségével (Agilent 6890N, Santa Clara, CA, USA) végeztük, amely 30 m × 0,25 mm belső átmérőjű, 0,25 µm állórétegvastagságú HP{ {7}} ms kapillárisoszlop (Agilent J&W, Santa Clara, CA, USA) egy elektronionizációs eszközzel (EI) és egy kvadrupol analizátorral (Agilent 5973, Santa Clara, CA, USA) rendelkező tömegszelektív detektorral párosítva. A hőmérsékleti program és a kromatográfiás működési feltételek (a detektor kivételével) megegyeztek a GC-FID-nél alkalmazottal. Az MS körülmények a következők voltak: MS átviteli vezeték hőmérséklete 240 ◦C; EI ionforrás hőmérséklete, 200 ◦C 70 eV ionizációs energiával; kvadrupol hőmérséklet 150 ◦C; pásztázási sebesség, 3,2 scan.s−1 m/z pásztázási tartományban, (30-tól 480-ig). A kromatogramok és tömegspektrumok kezelésére és feldolgozására az MSD ChemStation szoftvert (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, USA) használtuk. A vegyületeket tömegspektrumuk és a GC/MS rendszer és az Adams könyvtárak NIST02 könyvtári adatainak összehasonlításával azonosítottuk [32,33]. Az eredményeket tovább erősítette a vegyület elúciós sorrendjének összehasonlítása a félpoláris fázisokon a szakirodalomban közölt retenciós indexekkel [32]. A komponensek retenciós indexeit egy sor n-alkán (két standard keverék, C8–C20 és C21–C40) retenciós idejéhez viszonyítva határoztuk meg lineáris interpolációval [65]. Az egyes komponensek százalékos arányát a GC csúcsterületek alapján számítottuk ki, FID válaszfaktor korrekció nélkül. Az eredményeket az egyes csúcsok százalékában ± két független kromatográfiás futtatás standard deviációjaként mutatjuk be.

5.3. Gombaellenes tevékenység

A S. cacaliifolia illóolajának gombaellenes hatását fonalas gombákkal és élesztőgombákkal szemben értékelték. Három, körmökből és bőrből izolált dermatofita törzs (Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 és Microsporum canis FF1), valamint négy dermatofita típusú törzs a Colección Espanõla de Cultivos Tipo-ból (T. mentagrophytes ECT var.2 rub958, T. mentagrophytes var. interdigital Cultivos 2794, T. verrucosum CECT 2992 és M. gypseum CECT 2908, egy Cryptococcus neoformans típusú törzs (C. neoformans YPO186), két klinikai Candida törzs, amelyeket a vulvovaginális ismétlődő eseteiből izoláltak (C.ller krusei LFgui3, C.ller krusei LFgui három Candida típusú törzs (C. albicans ATCC 10231, C. tropicalis YPO128 és C. paraphimosis ATCC 90018). Az optimális növekedési feltételek és tisztaság biztosítása érdekében minden törzset Sabouraud dextróz lében tároltunk 20 százalékos glicerinnel -80 ◦C-on, és minden vizsgálat előtt Sabouraud dextróz agarban (SDA) vagy Potato dextrose agarban (PDA) tenyésztettük.

A Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) M38-A2 [66] referenciaprotokollja szerint az olaj minimális gátló koncentrációjának (MIC) és minimális letális koncentrációjának (MLC) meghatározására mikrohígításos húsleves módszert alkalmaztunk. M27-A3 [67] fonalas gombákhoz, illetve élesztőgombákhoz. A MIC volt az a legalacsonyabb koncentráció, amelyben nem figyeltek meg növekedést az oltott kémcsövekben, míg az MLC volt az a legalacsonyabb koncentráció, ahol nem figyeltek meg növekedést az SDA-val történő beoltás után az összes negatív cső közül. Egy negatív (nem oltott táptalaj) és egy pozitív (1% DMSO-val beoltott táptalaj) kontrollt is tartalmaztunk.

5.4. Gyulladáscsökkentő tevékenység

A RAW 264.7 egér leukémiás makrofág sejtvonalat, amelyet az American Type Culture Collection-től (ATCC TIB-71) szereztünk be, a csoportunk által korábban leírtak szerint [22].

Az NO-termelést a tenyészet felülúszójában lévő nitritek felhalmozódásának mennyiségi meghatározásával mértük Griess-reagens segítségével [68]. A sejteket (0,6 × 106 sejt/lyuk) 48-lyukú tenyésztőlemezeken tenyésztettük. Egy éjszakán át tartó stabilizálás után a makrofágokat 1 órán át előkezeltük DMSO-ban hígított illóolajjal (0.08–1,25 µL/ml), majd 50 ng/ml LPS-sel aktiváltuk. 24 óra. Pozitív (LPS-stimulált makrofágok) és negatív kontrollokat (kezeletlen makrofágok) végeztünk. Ezt az inkubációs időszakot követően egyenlő térfogatú tenyészet felülúszót és Griess-reagenst [1:1 0,1% (w/v) N-(1-naftil)etilén-diamin-dihidroklorid és 1% (w/v) szulfanil-amid, amely 5% w/v) H3PO4] összekevertük és 30 percig inkubáltuk sötétben. Az 550 nm-en mért abszorbanciát egy automata lemezleolvasóval (Agilent, Santa Clara, CA, USA) regisztráltuk, és a nitritkoncentrációt nátrium-nitrit standard görbéből határoztuk meg. A DMSO-ról a maximálisan alkalmazott koncentrációban (0,4 százalék) csoportunk már kimutatta, hogy nincs gyulladáscsökkentő és citotoxicitása (az adatokat nem mutatjuk be).

A RAW 264.7-et (1,2 × 106 sejt/lyuk) 6-lyukú lemezeken tenyésztettük, és 12 órán keresztül hagytuk stabilizálódni. Ezután a sejteket illóolajjal (0,64 µl/ml) inkubáltuk 1 órán át, majd LPS-t (50 ng/ml) aktiváltunk 24 órán át. Egy negatív kontrollt (kezeletlen sejtek) és egy pozitív kontrollt (csak LPS-sel kezelt sejtek) vettünk figyelembe. A sejtlizátumokat Zuzarte és munkatársai által korábban leírtak szerint állítottuk elő. [22].

Western blot analízist végeztünk az indukálható nitrogén-monoxid-szintáz (iNOS) és a ciklooxigenáz{{0}} (COX-2) fehérjeszintjének mérésére. A fehérjéket 10%-os (v/v) SDS-poliakrilamiddal végzett elektroforézissel választottuk el 130 V-on 1,5 órán át, majd polivinilidén-fluorid membránokra vittük át (előzőleg metanollal aktiválva) 400 mA-en 3 órán át. Miután a nem specifikus IgG-ket 5 százalék (w/v) tejjel TBS-T-ben 1 órán át szobahőmérsékleten blokkoltuk, a membránokat iNOS (1:500; R&D Systems) vagy COX elleni specifikus antitestekkel inkubáltuk.{15} } (1:5000; Abcam, Cambridge, Egyesült Királyság) egyik napról a másikra, 4 ◦C-on. Ezután a membránokat 30 percig TBS-T-vel mostuk (10 percig, 3-szor), és szobahőmérsékleten 1 órán át inkubáltuk másodlagos antitestekkel (1:40, 000; Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX). , USA) torma-peroxidázzal konjugálva. Az immunkomplexeket kemilumineszcens szkennerrel (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, USA) detektáltuk. A membránokat antitubulin antitesttel (1:20 000; Sigma) vizsgáltuk, hogy garantáljuk, hogy azonos mennyiségű fehérje van betöltve. A fehérje mennyiségi meghatározását az ImageLab 6.1.0 verziójával (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, USA) végeztük.

5.5. Sejtmigráció

Az NIH 3T3-at, egy egérembrionális fibroblaszt sejtvonalat (ATCC CRL-1658), a csoportunkban korábban leírtak szerint tenyésztettük [69].

5.5.2. Sejtmigrációs vizsgálat

A sejtmigrációt a Martinotti és munkatársai [70] által közölt karcolási seb vizsgálattal végezték, kis módosításokkal. Röviden, NIH 3T3 fibroblasztokat oltottunk 2,5 × 105 sejt/ml mennyiségben 12-lyukú lemezekre. 24 órás növekedés után 20-200 µl-es pipettahegy segítségével karcolást végeztünk a sejt monorétegen. A levált sejteket úgy távolítottuk el, hogy a sejteket steril PBS-sel 1x mostuk. 2% szérumot tartalmazó DMEM-et adtunk minden lemezhez, illóolaj jelenlétében vagy hiányában. Fázis-kontrakt mikroszkóp segítségével a képeket 0, 12 és 18 órával a karcolás után vettük fel, és a seb területét ImageJ/Fiji szoftverrel mértük. A bemutatott eredményeket a következő egyenlet segítségével kaptuk

5.6. Sejt életképesség

Az illóolaj különböző koncentrációinak hatását mind a makrofágok, mind a fibroblasztok életképességére a resazurin redukciós vizsgálattal végeztük. Röviden, makrofágokat ({{0}},6 × 106 sejt/ml) vagy fibroblasztokat (1,25 × 105 sejt/ml) oltottunk be 48-lyukú lemezekre. Egy éjszakán át tartó stabilizálás után különböző koncentrációjú illóolajat (0,08-1,25 µL/ml) DMSO-val hígítva adtunk hozzá 24 órán át. A kísérlet végén a táptalajt eltávolítottuk, és 1 órára, illetve 4 órára friss resazurint (1:10) tartalmazó tápközeget adtunk hozzá a makrofágokhoz, illetve a fibroblasztokhoz. Az 570 nm-en mért abszorbanciát 620 nm-es referenciaszűrővel regisztráltuk egy automata lemezleolvasóban (Agilent, Santa Clara, CA, USA). A sejtek életképességét a következő egyenlettel határoztuk meg:

ahol AbsExp az abszorbancia (különbség 570 és 620 nm között) a különböző kísérleti körülmények között, és az AbsCT a kontrollsejtek abszorbanciája (nincs illóolaj).

5.7. Etopozid-indukált öregedés 

Az öregedést a kereskedelemben kapható béta-galaktozidáz festőkészlettel értékeltük a gyártó protokollja szerint (Cell Signaling Technology). Röviden, 2,5 × 104 fibroblasztot oltottunk 12-lyuklemezekre, és hagytuk, hogy egy éjszakán át tapadjanak. Ezt követően a sejteket 12,5 µM etopoziddal 24 órán át inkubáltuk az öregedést. Az etopozidot eltávolítottuk, és a sejteket PBS-sel 1x mostuk. Ezután a sejteket 72 órán át hagytuk helyreállni DMEM-ben S. cacaliifolia illóolaj hiányában vagy jelenlétében, és naponta értékeltük a morfológiai változásokat. 72 óra elteltével a sejteket 15 percig fixáltuk 1x fixáló oldattal (a kereskedelmi készletben található), majd PBS-mosásokkal, és egy éjszakán át béta-galaktozidáz festőoldattal inkubáltuk száraz inkubátorban 37 °C-on CO2-ellátás nélkül. Különböző mezőket mikroszkóp alatt nézték meg a kék szín kialakulásához, és lefényképezték őket képelemzés céljából (8 kép állapotonként). A határozott kék színű festődés a béta-galaktozidáz aktivitást jelezte. A kvantitatív elemzést ImageJ segítségével végeztük, és kiszámítottuk az öregedő sejtek százalékos arányát az összes sejthez viszonyítva.

5.8. Statisztikai analízis

Az eredmények átlagértékként ± SEM (az átlag standard hibája) vannak megadva, legalább három független kísérletből, amelyeket két párhuzamosban végeztünk. A gyulladáscsökkentő, sejtéletképességi és öregedési vizsgálatok statisztikai szignifikanciáját egyutas varianciaanalízissel (ANOVA) határoztuk meg, amelyet Dunnett post-hoc tesztje követett a GraphPad Prism 9.3-as verziójával.{5}} (GraphPad Software, San Diego, CA, USA). A sejtmigrációs vizsgálatok statisztikai szignifikanciáját kétutas ANOVA-val, majd Sydák többszörös összehasonlító tesztjével határoztuk meg. A p-érték < 0,05 szignifikáns különbséget jelent.

A szerző hozzájárulásai:Koncepció, LS és AM; érvényesítés, AS, MJG, MTC és SP; formális elemzés, JMA-S., MJG, AP és DF; vizsgálat, JMA-S., AM és AP; források, AM, EC, MTC és LS; adatkezelés, AP; írás – eredeti tervezet előkészítése, JMA-S., AP és AM; írás – áttekintés és szerkesztés, MTC, LS és AM; vizualizáció, JMA-S.; felügyelet, LS és AM; projekt adminisztráció, LS; finanszírozás megszerzése, LS és MTC Minden szerző elolvasta és elfogadta a kézirat közzétett változatát.

Finanszírozás:Ezt a munkát a COMPETE 2020 – Versenyképességi és nemzetköziesítési operatív program, valamint az FCT-Fundação para a Ciência ea Tecnologia portugál nemzeti alapjai finanszírozták, az UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 és LA/P/20058/P/02058 projektek keretében.

Adatelérhetőségi nyilatkozat:Az adatok kérésre rendelkezésre állnak.

Összeférhetetlenség:A szerzők nem nyilatkoznak összeférhetetlenségről.

Hivatkozások

1. Bongomin, F.; Gago, S.; Oladele, R.; Denning, D. Gombás betegségek globális és többnemzetiségű előfordulása – becslés pontossága. J. Fungi 2017, 3, 57. [CrossRef] [PubMed]

2. Campoy, S.; Adrio, JL Gombaellenes szerek. Biochem. Pharm. 2017, 133, 86–96. [CrossRef] [PubMed]

3. Gupta, AK; Cooper, EA frissítés a dermatophytosis gombaellenes terápiájában. Mycopathologia 2008, 166, 353–367. [CrossRef]

4. Matiz, C.; Friedlander, SF Subcutan Tissue fertőzések és tályogok. A gyermekkori fertőző betegségek alapelveiben és gyakorlatában; Elsevier: Amszterdam, Hollandia, 2012; 454–462.e3.

5. de Oliveira, CB; Vasconcellos, C.; Sakai-Valente, NY; Sotto, MN; Luiz, FG; Belda Júnior, W.; de Sousa, MdGT; Benard, G.; Criado, PR Toll-like Receptors (TLR) 2 és 4 Keratinociták expressziója lokalizált és disszeminált dermatophytosisban szenvedő betegekből. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo 2015, 57, 57–61. [CrossRef] [PubMed]

6. Celestrino, GA; Reis, APC; Criado, PR; Benard, G.; Sousa, MGT Trichophyton Rubrum fagocita és gyulladást elősegítő reakciókat vált ki az emberi monocitákban a Toll-Like receptoron keresztül 2. Front. Microbiol. 2019, 10, 2589. [CrossRef]

7. Sun, S.-C. A nem kanonikus NF-B út az immunitásban és a gyulladásban. Nat. Rev. Immunol. 2017, 17, 545–558. [CrossRef] [PubMed]

8. Sharma, A.; Gupta, S. A herbonanoceuticals mint gombaellenes szerek védő megnyilvánulása: a dermatofita fertőzés lehetséges gyógyszerjelöltje. Health Sci. Rep. 2022, 5. [CrossRef]

9. Guo, S.; DiPietro, LA A sebgyógyulást befolyásoló tényezők. J. Dent. Res. 2010, 89, 219–229. [CrossRef]

10. Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Canhoto, J.; Vale-Silva, L.; Silva, MJ; Pinto, E.; Salgueiro, L. A Lavandula Viridis LHér illóolajainak kémiai összetétele és gombaellenes hatása. J. Med. Microbiol. 2011, 60, 612–618. [CrossRef]

11. Martinez-Rossi, NM; Bitencourt, TA; Peres, NTA; Lang, EAS; Gomes, EV; Quaresemin, NR; Martins képviselő; Lopes, L.; Rossi, A. Dermatofiták rezisztenciája gombaellenes gyógyszerekkel szemben: Mechanizmusok és tájékoztató. Elülső. Microbiol. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

12. Mourad, A.; Perfect, JR A kriptokokkózis elleni háború: A gombaellenes arzenál áttekintése. Mem. Inst. Oswaldo. Cruz. 2018, 113, e170391. [CrossRef] [PubMed]

13. McCarthy, MW; Kontoyiannis, DP; Cornely, OA; Tökéletes, JR; Walsh, TJ Novel Agents és Drug Targets, hogy megfeleljenek a rezisztens gombák kihívásainak. J. Infect. Dis. 2017, 216, S474–S483. [CrossRef] [PubMed]

14. Vonkeman, HE; van de Laar, MAFJ Nem szteroid gyulladásgátló gyógyszerek: káros hatások és megelőzésük. Semin. Ízületi gyulladás. Nyálka. 2010, 39, 294–312. [CrossRef] [PubMed]

15. Bakkali, F.; Averbeck, S.; Averbeck, D.; Idaomar, M. Az illóolajok biológiai hatásai Áttekintés. Food Chem. Toxicol. 2008, 46, 446–475. [CrossRef] [PubMed]

16. Christaki, E.; Bonos, E.; Giannenas, I.; Florou-Paneri, P. Aromás növények, mint bioaktív vegyületek forrása. Mezőgazdaság 2012, 2, 228–243. [CrossRef]

17. Edris, AE Az illóolajok és illékony összetevőik gyógyszerészeti és terápiás lehetőségei: áttekintés. Fitother. Res. 2007, 21, 308–323. [CrossRef] [PubMed]

18. Pinto, E.; Vale-Silva, L.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. A Syzygium Aromaticumból származó szegfűszeg illóolaj gombaellenes hatása Candida, Aspergillus és Dermatophyte fajokon. J. Med. Microbiol. 2009, 58, 1454–1462. [CrossRef]

19. Pinto, E.; Hrimpeng, K.; Lopes, G.; Vaz, S.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. A Ferulago Capillaris esszenciális olaj gombaellenes hatása Candida, Cryptococcus, Aspergillus és Dermatophyte fajok ellen. Eur. J. Clin. Microbiol. Megfertőzni. Dis. 2013, 32, 1311–1320. [CrossRef]

20. Pinto, E.; Pina-Vaz, C.; Salgueiro, L.; Gonçalves, MJ; Costa-de-Oliveira, S.; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Ro-drigues, A.; Martinezde-Oliveira, J. A Thymus Pulegioides esszenciális olajának gombaellenes hatása Can-dida, Aspergillus és Dermatophyte fajokon. J. Med. Microbiol. 2006, 55, 1367–1373. [CrossRef]

21. Valente, J.; Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Lopes, MC; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Az Oenanthe Crocata L. Essential Oil gombaellenes, anti-tioxidáns és gyulladásgátló hatásai. Food Chem. Toxicol. 2013, 62, 349–354. [CrossRef] [PubMed]

22. Zuzarte, M.; Alves-Silva, JM; Alves, M.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Új betekintés a Thymus Carnosus és a Thymus Camphoratus illóolajok és főbb vegyületeik gyulladáscsökkentő potenciáljára és biztonsági profiljára. J. Ethnopharmacol. 2018, 225, 10–17. [CrossRef]

23. Walker, JB; Sytsma, KJ; Treutlein, J.; Wink, M. A Salvia (Lamiaceae) nem monofiletikus: A Salvia és a Tribe Mentheae rendszertani, sugárzási és ökológiai specializációinak következményei. Am. J. Bot. 2004, 91, 1115–1125. [CrossRef] [PubMed]

24. Su, C.-Y.; Ming, Q.-L.; Rahman, K.; Han, T.; Qin, L.-P. Salvia Miltiorrhiza: Hagyományos gyógyászati ​​felhasználások, kémia és farmakológia. Áll. J. Nat. Med. 2015, 13, 163–182. [CrossRef] [PubMed]

25. Ghorbani, A.; Esmaeilizadeh, M. A Salvia Officinalis és összetevői farmakológiai tulajdonságai. J. Tradit. Kiegészítés. Med. 2017, 7, 433–440. [CrossRef]

26. Afonso, AF; Alves-Silva, JM; Pereira, OR; Cardoso, SM A Salvia növények jótékony hatásai: összefüggés a bioaktív komponensekkel. In Recent Progress in Medicinal Plants 44. kötet: Phytotherapeutics III; Govil, JN, Pathak, M., szerk.; Studium Press: Újdelhi, India, 2016; 161–198.

27. Salimikia, I.; Aryanpour, M.; Abdollahi, M.; Abdolghaffari, A.; Samadi, N.; Monsef-Esfahani, H. A Salvia Multicaulis Vahl metanolos kivonatának fitokémiai és sebgyógyító hatásai. a Patkányban. Planta Med. 2016, 81, S1–S381. [CrossRef]

28. Gali-Muhtasib, H.; Hilan, C.; Khater, C. A Salvia Libanotica (keleti mediterrán zsálya) hagyományos felhasználási módjai és illóolajainak hatásai. J. Ethnopharmacol. 2000, 71, 513–520. [CrossRef] [PubMed]

29. Hamidpour, M.; Hamidpour, R.; Hamidpour, S.; Shahlari, M. A zsálya (Salvia) kémiája, farmakológiája és gyógyászati ​​tulajdonságai olyan betegségek megelőzésére és gyógyítására, mint az elhízás, a cukorbetegség, a depresszió, a demencia, a lupus, az autizmus, a szívbetegség és a rák. J. Tradit. Kiegészítés. Med. 2014, 4, 82–88. [CrossRef]

30. Askari, SF; Avan, R.; Tayarani-Najaran, Z.; Sahebkar, A.; Eghbali, S. Iráni szalviafajok: Fitokémiai és farmakológiai frissítés. Phytochemistry 2021, 183, 112619. [CrossRef]

31. Davidse, G.; Sousa Sánchez, M.; Knapp, SD; Chian Cabrera, F. Rubiaceae és Verbenaceae. 4. (2): I–Xvi, 1–533. In Flora Mesoamericana; Davidse, G., Sousa Sánchez, M., Knapp, SD, Chian Cabrera, F., szerk.; Missouri Bota-nic Garden: St. Louis, MO, USA, 2012; 402–403.

32. Adams, RP Identification of Essential Oil Components by Gas Chromatography/Quadrupole Mass Spectroscopy, 4. kiadás; Allured Publishing Corporation: Carol Stream, IL, USA, 2007.

33. NIST/EPA/NIH Mass Spectral Library 2005.

34. Guijarro-Muñoz, I.; Compte, M.; Álvarez-Cienfuegos, A.; Álvarez-Vallina, L.; Sanz, L. A lipopoliszacharid aktiválja a Toll-like Receptor 4 (TLR4) által közvetített NF-KB jelátviteli útvonalat és a proinflammatorikus választ humán pericitákban. J. Biol. Chem. 2014, 289, 2457–2468. [CrossRef]

35. Scrima, M.; Melito, C.; Merola, F.; Iorio, A.; Vito, N.; Giori, AM; Ferravante, A. Salvia Haenkei hidroalkoholos légi részkivonat sebgyógyító aktivitásának értékelése in vitro és in vivo kísérleti modelleken. Clin. Kozmetika. Investig. Bőr. 2020, 13, 627–637. [CrossRef] [PubMed]

36. Farahpour, MR; Pirkhezr, E.; Ashrafian, A.; Sonboli, A. Gyorsított gyógyulás Salvia Officinalis esszenciális olaj helyi adagolásával a Pseudomonas Aeruginosa és a Staphylococcus Aureus fertőzött sebmodelljén. Biomed. Pharmacother. 2020, 128, 110120. [CrossRef]

37. Matic, I.; Revandkar, A.; Chen, J.; Bisio, A.; Dall'Acqua, S.; Cocetta, V.; Brun, P.; Mancino, G.; Milanese, M.; Mattei, M.; et al. Salvia Haenkei mint Gerosuppresszáns azonosítása integrált Senes-science-Screening Assay segítségével. Öregedés 2016, 8, 3223–3240. [CrossRef]

38. Park, CH; Shin, SH; Lee, EK; Kim, DH; Kim, M.-J.; Roh, S.-S.; Yokozawa, T.; Chung, HY Magnesium Lithospermate B a Salvia Miltiorrhiza BUNGE-tól, javítja az öregedés által kiváltott vesegyulladást és öregedést a NADPH-oxidáz által közvetített reaktív oxigéntermelés révén. Fitother. Res. 2017, 31, 721–728. [CrossRef]

39. Najar, B.; Mecacci, G.; Nardi, V.; Cervelli, C.; Nardoni, S.; Mancianti, F.; Ebani, VV; Giannecchini, S.; Pistelli, L. Dél-afrikai Salvia Spp. illékony és gombaellenes-antibakteriális-vírusellenes aktivitása. Egységes körülmények között termesztett illóolajok. Molecules 2021, 26, 2826. [CrossRef] [PubMed]

40. Abu-Darwish, MS; Cabral, C.; Ali, Z.; Wang, M.; Khan, SI; Jacob, MR; Jain, SK; Tekwani, BL; Zulfiqar, F.; Khan, IA; et al. Salvia Ceratophylla L. Jordánia déli részéből: Új betekintés a kémiai összetételbe és a biológiai tevékenységekbe. Nat. Prod. Bioprospect. 2020, 10, 307–316. [CrossRef] [PubMed]

41. Taarit, MB; Msaada, K.; Hosni, K.; Chahed, T.; Marzouk, B. A Tunéziában vadon termő Salvia Verbenaca illóolaj-összetétele. J. Food Biochem. 2010, 34, 142–151. [CrossRef]

42. Viljoen, AM; Gono-Bwalya, A.; Kamatou, GPP; Ba¸ser, KHC; Demirci, B. Salvia Stenophylla és szövetségeseinek illóolaj-összetétele és kemotaxonómiája S. Repens és S. Runcinata. J. Essent. Oil Res. 2006, 18, 37–45. [CrossRef]

43. Pinto, E.; Salgueiro, LR; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Gonçalves, MJ Egyes élesztőfajok és fonalas gombák in vitro érzékenysége a Salvia Officinalis illóolajaira. Ind. Crop. Prod. 2007, 26, 135–141. [CrossRef]

44. Tosun, A.; Khan, S.; Kim, Y.; Calín-Sánchez, A.; Hysenaj, X.; Carbonell-Barrachina, A. A Salvia Officinalis L (Lamiaceae) illóolaj összetétele és gyulladásgátló hatása Murin makrofágokban. Trop. J. Pharm. Res. 2014, 13, 937. [CrossRef]

45. Abu-Darwish, MS; Cabral, C.; Ferreira, IV; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Cruz, MT; Al-bdour, TH; Sal-gueiro, L. A közönséges zsálya (Salvia Officinalis L.) esszenciális olaja Jordániából: Assessment of Safety in Mamma-lian Cells and Its Antifungal and Antiflammatory Potential. Biomed. Res. Int. 2013, 2013, 1–9. [CrossRef]

46. ​​Leporini, M.; Bonesi, M.; Loizzo, MR; Passalacqua, NG; Tundis, R. A Salvia illóolaja Rosmarinus Spenn. Olaszországból, mint az egészséget elősegítő vegyületek forrásaként: kémiai profil és antioxidáns és kolinészteráz gátló aktivitás. Plants 2020, 9, 798. [CrossRef]

47. Choi, JK; Ó, H.-M.; Lee, S.; Kwon, TK; Shin, T.-Y.; Rho, M.-C.; Kim, S.-H. A Salvia Plebeia elnyomja az atópiás dermatitiszhez hasonló bőrelváltozásokat. Am. J. Chin. Med. 2014, 42, 967–985. [CrossRef]

48. Fahed, L.; Stien, D.; Ouaini, N.; Eparvier, V.; el Beyrouthy, M. A Salvia multicaulis Vahl esszenciális olajok kémiai sokfélesége és antimikrobiális aktivitása. Chem. Biobúvárok. 2016, 13, 591–595. [CrossRef]

49. Juliano, C.; Marchetti, M.; Campagna, P.; Usai, M. A Helichrysum Microphyllum Cambess-ből származó illóolaj antimikrobiális aktivitása és kémiai összetétele. Subsp. Tyrrhenicum Bacch., Brullo & Giusso Délnyugat-Szardínián gyűjtötték. Szaúdi. J. Biol. Sci. 2019, 26, 897–905. [CrossRef] [PubMed]

50. Ő, X.; Zhang, L.; Chen, J.; Sui, J.; Yi, G.; Wu, J.; Ma, Y. A Clausena Lansium Essential Oil Candida spp. elleni kémiai összetétele és gombaellenes hatása közötti összefüggés. Molecules 2019, 24, 1394. [CrossRef]

51. Ruiz-Vásquez, L.; Ruiz Mesia, L.; Caballero Ceferino, HD; Ruiz Mesia, W.; Andrés, MF; Díaz, CE; Gonza-lez-Coloma, A. A perui Amazóniából származó Piper esszenciális olajok gombaellenes és gyomirtó hatása. Plants 2022, 11, 1793. [CrossRef] [PubMed]

52. Fontenelle, ROS; Morais, SM; Brito, EHS; Brilhante, RSN; Cordeiro, RA; Nascimento, NRF; Kerntopf, MR; Sidrim, JJC; Rocha, MFG A brazil Caatinga Biome-ból származó Croton fajok esszenciális olajainak gombaellenes hatása. J. Appl. Microbiol. 2008, 104, 1383–1390. [CrossRef] [PubMed]

53. Mathela, C.; Joshi, S. A levél illóolajának és összetevőinek antioxidáns és antibakteriális hatásai Furanodienone és Curzerenone, Lindera Pulcherrima (Nees.) Benth. Ex Hook. f. Farmakognózia. Res. 2012, 4, 80. [CrossRef]

54. Serra, E.; Hidalgo-Bastida, L.; Verran, J.; Williams, D.; Malic, S. Kereskedelmi esszenciális olajok és biocidek gombaellenes hatása Candida Albicans ellen. Pathogens 2018, 7, 15. [CrossRef]

55. Burstein, VL; Beccacece, I.; Guasconi, L.; Mena, CJ; Cervi, L.; Chiapello, LS Bőrimmunitás a dermatofiták ellen: a kísérleti fertőzési modellektől az emberi betegségekig. Elülső. Immunol. 2020, 11, 605644. [CrossRef]

56. Genˇci´c, MS; Aksic, JM; Živkovi´c Stoši´c, MZ; Randjelovi'c, PJ; Stojanovi'c, NM; Stojanovi´c-Radi´c, ZZ; Radulovi´c, NS Az Immortelle illóolaj antimikrobiális és gyulladáscsökkentő hatásának összekapcsolása kémiai összetételével – a főbb és kisebb összetevők kölcsönhatása. Food Chem. Toxicol. 2021, 158, 112666. [CrossRef] [PubMed]

57. A´cimovi´c, M.; Ljuji'c, J.; Vuli'c, J.; Zheljazkov, VD; Pezo, L.; Varga, A.; Tumbas Šaponjac, V. Helichrysum Ital-icum (Roth) G. Don Szerbiából származó illóolaj: kémiai összetétel, osztályozás és biológiai aktivitás – megfelelő új növény lehet Szerbiában? Agronomy 2021, 11, 1282. [CrossRef]

58. Amorim, JL; Simas, DLR; Pinheiro, MMG; Moreno, DSA; Alviano, CS; da Silva, AJR; Dias Fernandes, P. Négy citrusfaj illóolajainak gyulladásgátló tulajdonságai és kémiai jellemzése. PLoS ONE 2016, 11, e0153643. [CrossRef]

59. Ascari, J.; de Oliveira, MS; Nunes, DS; Granato, D.; Scharf, DR; Simionatto, E.; Otuki, M.; Soley, B.; Heiden, G. A Baccharis punctulata (Asteraceae) hím és nőstényből származó illóolajok kémiai összetétele, antioxidáns és gyulladáscsökkentő hatása. J. Ethnopharmacol. 2019, 234, 1–7. [CrossRef]

60. Singh, P.; Singh, S.; Kapoor, IPS; Singh, G.; Isidorov, V.; Szczepaniak, L. Curcuma Zedoaria Rhizomes-ból származó illóolajok és olajgyanták kémiai összetétele és antioxidáns hatásai, -74. rész. Food Biosci. 2013, 3, 42–48. [CrossRef]

61. Jéna, S.; Ray, A.; Banerjee, A.; Sahoo, A.; Nasim, N.; Sahoo, S.; Kar, B.; Patnaik, J.; Panda, PC; Nayak, S. A Curcuma Angustifolia Roxb leveleiből és rizómáiból származó illóolaj kémiai összetétele és antioxidáns hatása. Nat. Prod. Res. 2017, 31, 2188–2191. [CrossRef]

62. Andji´c, M.; Božin, B.; Draginic, N.; Koˇcovi´c, A.; Jeremi'c, JN; Tomovi'c, M.; Milojevi´c Šamanovi´c, A.; Kladar, N.; ˇCapo, I.; Jakovljevi´c, V.; et al. A Helichrysum Italicum illóolaj alapú helyi gyógyszerkészítmények készítése és értékelése cukorbeteg patkányok sebgyógyulására. Pharmaceuticals 2021, 14, 813. [CrossRef]

63. Ahlina, FN; Nugraheni, N.; Salsabila, IA; Haryanti, S.; Da'i, M.; Meiyanto, E. A galangal (Alpinia Galanga L.) kivonat oxidatív stressz elleni hatásának feltárása áttétes emlőráksejtekben és normál fibroblasztsejtekben társkemoterápiás és öregedésgátló szernek szánták. Ázsiai Pac. J. Cancer Prev. 2020, 21, 107–117. [CrossRef]

64. Európa Tanács. Európai Gyógyszerkönyv, 7. kiadás; Az Európa Tanács Gyógyszerminőségi és Egészségügyi Igazgatósága: Strasbourg, Franciaország, 2010; ISBN 978-92-871-6700-2.

65. van den Dool, H.; Kratz, PD A retenciós indexrendszer általánosítása, beleértve a lineáris hőmérsékletű programozott gáz-folyadékpartíciós kromatográfiát. J. Chromatogr. 1963, 11, 463–471. [CrossRef]

66. Clinical and Laboratory Standards Institute. Referencia módszer a húsleves hígítására, fonalas gombák gombaellenes érzékenységének vizsgálatára; Jóváhagyott szabvány M38-A2, 2. kiadás; Clinical and Laboratory Standards Institute: Wayne, PA, USA, 2008; ISBN 1-56238-668-9.

67. Clinical and Laboratory Standards Institute. Referencia módszer a húsleves hígítására, az élesztők gombaellenes érzékenységének vizsgálatára; Jóváhagyott szabvány M27-A3, 3. kiadás; Clinical and Laboratory Standards Institute: Wayne, PA, USA, 2008; ISBN 1-56238-666-2.

68. Green, LC; Wagner, DA; Glogowski, J.; Skipper, PL; Wishnok, JS; Tannenbaum, Nitrát, nitrit és [15N]-nitrát biológiai folyadékokban való SR-elemzése. Anális. Biochem. 1982, 126, 131–138. [CrossRef]

69. Piras, A.; Maccioni, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Gonçalves, MJ; Alves-Silva, JM; Silva, A.; Cruz, MT; Salgueiro, L.; Maxia, A. A Teucrium Scordium L. Subsp. illóolaj kémiai összetétele és biológiai aktivitása. Scordioides (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) Szardínia szigetéről (Olaszország). Nat. Prod. Res. 2021, 36, 5828–5835. [CrossRef] [PubMed]

70. Martinotti, S.; Ranzato, E. Scratch Wound Healing Assay. In epidermális sejtekben: Molekuláris Biológiai módszerek; Turksen, K., szerk.; Humana: New York, NY, USA, 2019; 2109. évfolyam, 225–229.

Felelősség kizárása/kiadói megjegyzés:Az összes publikációban szereplő nyilatkozatok, vélemények és adatok kizárólag az egyes szerző(k) és közreműködő(k) állításai, véleményei és adatai, nem pedig az MDPI-é és/vagy a szerkesztő(k)é. Az MDPI és/vagy a szerkesztő(k) kizárják a felelősséget a tartalomban hivatkozott ötletekből, módszerekből, utasításokból vagy termékekből eredő személyi vagy vagyoni sérülésekért.