Absztrakt

A "Rou-Cong-Rong" néven ismert Cistanche deserticola egy jól ismert gyógyászati ​​és ehető homológ gyógynövény, amely az Orobanchaceae családba tartozik. Ez a tanulmány szisztematikusan értékelte az aktív komponens profilokat és az in vitro antioxidáns kapacitást a különböző szövetrészek (felső, középső, alsó szegmensek) között két gazdafüggő Cistanche fajta, nevezetesen a Haloxylon által parazitált Cistanche (HC, Haloxylon ammodendron host) és a Tamarix által parazitált Cistanche (TC, Tamarix ramosissima gazdaszervezet). Az összes nyersanyagot Cele megyéből, Hotan prefektúrából, Hszincsiangból, Kínából gyűjtötték be.

A bioaktív anyagok esetében jelentős fajták közötti és növényen belüli szöveti különbségeket figyeltek meg. A Tamarix által parazitált Cistanche esetében az összes polifenol, az összes flavonoid, az összes cukor és a verbaszkozid tartalma csökkenő gradienst mutatott: alsó rész > középső rész > felső rész. Az összes polifenol (38,35 mg GAE/g DW) és az összes flavonoid (35,61 mg RE/g DW) a TC alsó szegmensében 2,47-szeres, illetve 10,95-szeresét érte el a HC alsó szövetéhez képest. A Haloxylon-parazitált Cistanche felső szegmense tartalmazta a legmagasabb echinakozid koncentrációt (92,93 mg/g DW) az összes vizsgált minta közül. Az összes triterpenoid tartalom mindkét fajta alsó szövetében statisztikailag magasabb volt, mint a középső és felső szövetekben (P<0.05), with HC lower part reaching peak value of 6.75 mg OAE/g DW.

Mindkét fajta figyelemre méltó szabadgyökfogó antioxidáns teljesítményt mutatott. Az alsó szegmensek kiváló antioxidáns hatást biztosítottak: a DPPH IC50 értékek 7,15 mg/ml (HC-alacsonyabb) és 5,95 mg/ml (TC-alacsonyabb) voltak; Az ABTS⁺ IC50 értékek 5,19 mg/ml-t (HC-alacsonyabb) és 3,28 mg/ml-t (TC-alacsonyabb) értek el. A Pearson-féle korrelációs analízis szignifikánsan negatív korrelációt mutatott ki az IC50 antioxidáns indikátorok és az összes polifenol, összes flavonoid, proantocianidinek, összes cukor és verbaszkozid tartalom szintje között.

A kísérleti eredmények megerősítik, hogy a Haloxylon-parazitált Cistanche felső szegmensei echinakozidban gazdagok; A Tamarix által parazitált Cistanche alsó szegmensei bőséges polifenolokat, flavonoidokat, szacharidokat és verbaszkozidokat halmoznak fel. Ez az adatkészlet gyakorlati elméleti támogatást nyújt a minőségi szabványok elkészítéséhez, a nyersanyagok osztályozásához és a funkcionális élelmiszerek mélyreható fejlesztéséhez a Xinjiangban termesztett Cistanche deserticola számára.

Kulcsszavak: Cistanche deserticola; gazdafajta; szöveti rész; bioaktív vegyületek; in vitro antioxidáns aktivitás; ehető gyógynövény

1. Bevezetés

Cistanche deserticolaegy kötelező, nem fotoszintetikus gyökér-parazita gyógynövény, amelyet a Kínai Gyógyszerkönyv dokumentál, és szárított pikkelyes zamatos szára hagyományos tonik alapanyagként szolgál az étrend-kiegészítő és gyógynövényipar számára. Hszincsiang sivatagi övezeteiben két kereskedelmileg fontos ökotípus nő széles körben: az egyik a hszincsiangi sivatagi övezetekben élősködik.Haloxilon ammodendron(Chenopodiaceae, Haloxylon-host Cistanche), a többi pedig a gyökérrendszert fertőzi meg.Tamarix ramosissima(Tamaricaceae, Tamarix-gazda Cistanche)Google a...

Stresszttűrő parazita fajként a Cistanche túlélhet szikes-lúgos talajban, folyómedersivatagban és száraz homokos élőhelyeken. A Xinjiang Hotan régió a Cistanche egyik legfontosabb mesterséges termesztési bázisa Kínában. A helyi termesztésű Cistanche éves termelése meghaladja a 8 000 tonnát, ami több mint 90%-os hazai piaci keresletet elégít ki Kínában.

A modern fitokémiai vizsgálatok kimutatták, hogy a Cistanche deserticola fő bioaktív frakcióit a feniletanoid-glikozidok, poliszacharidok, triterpenoidok, iridoidok és polifenolok alkotják. A fenil-etanoid-glikozidok (az echinakozid és a verbaszkozid mint reprezentatív markermolekulák) több biológiai funkciót is érvényesítenek: antioxidáns, bélmikrobióta szabályozás, májvédelem, idegvédő hatások, immunmoduláció, daganatellenes és gyulladásgátló bioaktivitások sejt- és glükózkivonatokban... Google frakciók és vízoldható kísérleti modellek A Cistanche funkcionális élelmiszer-adalékanyagként beépült teába, szilárd italba és gyógynövényes borkészítményekbe. A kiváló minőségű termesztett Cistanche iránti piaci kereslet évről évre növekszik.

A vadon élő Cistanche erőforrásai fogyatkoznak, a csökkenő vadgazdanövény-populáció miatt. A nagyméretű mesterséges ültetvények váltak az ipari nyersanyag-felhasználás kielégítésének fő útjává. Mindazonáltal minőségi inkonzisztencia széles körben előfordul a kereskedelmi Cistanche tételek között. A növekedési környezet, a talaj ásványianyag-állapota, a rizoszféra mikrobiális közössége, a gazdanövény típusa és egyetlen húsos szárból származó különböző szövetszegmensek mind jelentős ingadozásokat okoznak a bioaktív anyagok koncentrációjában. Az ilyen minőségi heterogenitás gátat szab a Cistanche nyersanyagok egységes osztályozásának, minőségellenőrzésének és a termékek későbbi hasznosításának.

A korábbi irodalom a Cistanche-összetevők származási helyek közötti eltéréseiről számolt be; azonban a szisztematikus összehasonlító adatok, amelyek két fő hszincsiangi termesztett fajtára vonatkoznak a szár felső-középső-alsó szegmensei között, továbbra sem elegendőek az ipari hivatkozáshoz. Ebben a kutatási munkában a Cele megyéből (Hotan, Xinjiang) gyűjtött Haloxylon-parazitált Cistanche és Tamarix-parazitált Cistanche vett részt kutatási alanyként. Számszerűsítettünk több kulcsfontosságú biovegyületet, és felmértük a DPPH és az ABTS⁺ szabadgyökfogó antioxidáns kapacitását minden szövetszegmensben. A kémiai összetevők és az antioxidáns teljesítmény közötti összefüggést tovább számoltuk. Az eredmények empirikus alapot kívánnak nyújtani a nyersanyag-válogatáshoz, a specifikációk megállapításához és a nagy értékű funkcionális termékfejlesztéshez a Xinjiangban termesztett Cistanche deserticola számára.

2. Anyagok és módszerek

2.1 Növényi anyagok, vegyi reagensek és laboratóriumi műszerek

A friss Haloxylon-host Cistanche és Tamarix-host Cistanche minták Cele megyéből (Hotan, Xinjiang, Kína) származnak. Sértetlen, felületi mechanikai sérülés nélküli mintákat választottunk ki. Mindegyik egész húsos szárat kézzel egyenlően három részre osztották: felső szegmensre, középső szegmensre, alsó szegmensre. A szegmentált mintákat vákuum-fagyasztva szárítóval liofilizáltuk, porítottuk, 60 mesh-es szitán szitáltuk, lezártuk és 4 fokos hűtve tároltuk a későbbi kémiai elemzéshez.

Hiteles referencia standardok: galluszsav, rutin, proantocianidin, oleanolsav, D-glükóz, verbaszkozid, echinakozid a Shanghai Yuanye Bio-Technology Co., Ltd.-től vásárolták. A kromatográfiás minőségű metanolt és hangyasavat a Sinopharm Chemical Reagent Co., Ltd. szállította be a hazai vegyipari termékek.

Főbb analitikai műszerek: Mettler-Toledo PL203/01 elektronikus analitikai mérleg; Eppendorf TGL-16M nagy sebességű hűtött centrifuga; DK-98-1 termosztatikus vízfürdő; Tecan M200 mikrolemez olvasó; Agilent‑1260 Infinity II nagy teljesítményű folyadékkromatográfia (HPLC); FD-1A-50 vákuum fagyasztva szárító; Purkinje TU-1810 UV-Vis spektrofotométer; ultrahangos tisztító fürdőkészülék.

2.2 Kísérleti analitikai protokollok

Minden extrakciós és kimutatási kísérletet három párhuzamos biológiai ismétlésben hajtottak végre. A mérési módszereket kisebb módosításokkal hivatkoztuk a korábban publikált protokollokra.

2.2.1 Az összes polifenoltartalom meghatározása

Folin-Ciocalteu kolorimetriás assayt alkalmaztunk a teljes polifenol mennyiségi meghatározására. Röviden: 0,3 g Cistanche porminta 30 ml 70%-os etanol oldattal elkeverve. Az ultrahangos extrakciót 250 W teljesítménnyel 30 percig végeztük. 10 perces 4 000 fordulat/perc centrifugálás után a felülúszót 10-szeresére hígítottuk munkamintaoldatként. Vegyünk 1,0 ml mintaoldatot, adjunk hozzá 5,0 ml desztillált vizet és 1,0 ml Folin-Ciocalteu reagenst. Homogenizálás után adjunk hozzá 3,0 ml 7,5%-os vizes nátrium-karbonát-oldatot. Tartsa a reakcióelegyet sötét környezetben 30 percig. Rögzítse az abszorbancia leolvasását 760 nm hullámhosszon. A kalibrációs görbe számítási képlete: \\(y=0.018x-0,0079\\), \\(R^2=0.9969\\). A végső eredményeket milligramm galluszsav-ekvivalensben fejezték ki gramm száraztömegű mintában (mg GAE/g DW).

2.2.2 Az összes flavonoid tartalom meghatározása

Nátrium-nitrit-alumínium-nitrát kolorimetriás módszert alkalmaztunk . 1.0 ml mintafolyadékot összekevertünk 0,4 ml 5%-os NaNO₂-oldattal, és 6 percig inkubáltuk. Adjon hozzá 0,4 ml 10%-os Al(NO3)3 oldatot, és tartsa még 6 percig. Ezután fecskendezzen be 4,0 ml 4%-os NaOH-oldatot, és egészítse ki a 70%-os etanolt 10 ml teljes térfogatra. Pihenjen 10 percig, mielőtt spektrofotometriás leolvasást végez 505 nm-en. Normál görbe: \\(y=0.0069x-0,0024\\), \\(R^2=0.9991\\). Az eredményeket mg rutin ekvivalens / g szárazsúly (mg RE/g DW) mértékegységben adták meg.

2.2.3 Az összes cukortartalom meghatározása

Fenol-kénsav-kolorimetriás módszert alkalmaztak. A mintaoldatot desztillált vízzel 0,1 mg/ml koncentrációra hígítottuk. Vegyen fel 2,0 ml mintaoldatot, adjon hozzá 1 ml fenolos reagenst, és öntsön lassan 5,0 ml tömény kénsavat. Vortexeljük és 100 fokos vízfürdő alatt 30 percig melegítjük. Hűtsük le környezeti hőmérsékletre, mérjük meg az abszorbanciát 490 nm hullámhosszon, desztillált vizet állítunk be vak referenciaként. Kalibrációs görbe \\(y=0.0082x-0,002\\), \\(R^2=0.9993\\). Eredmények: mg dextróz egyenérték grammonként száraz tömeg (mg DE/g DW).

2.2.4 Az összes triterpenoid tartalom meghatározása

0,4 ml mintaoldatot vittünk át a kémcsőbe. Az oldószert forró vízfürdőben elpárologtattuk, majd lehűtöttük. Adjon hozzá kevert reagenst, amely 0,4 ml 5%-os vanillin-jégecet-oldatot és 1,6 ml perklórsavat tartalmaz. Inkubáljuk 15 percig 60 fokos vízfürdőben. Lehűlés után adjunk hozzá 5,0 ml etil-acetátot, homogenizáljuk és állni hagyjuk 15 percig. Az abszorbanciát 560 nm-en olvastuk le. Szabványos regressziós képlet \\(y=0.048x+0.00766\\), \\(R^2=0.9963\\). Kimeneti adatok: mg oleanolsav-ekvivalens / g szárazanyag (mg OAE/g DW).

2.2.5 A proantocianidintartalom meghatározása

Vanillin-sósav-spektrofotometriás eljárás. Vegyünk 0,5 ml mintaoldatot; adjunk hozzá 3,0 ml 4%-os vanillin-metanol oldatot és 1,5 ml tömény sósavat. Reagáljon 10 percig szobahőmérsékleten; az abszorbancia értéket 500 nm-en észlelni. Szabványos görbe: \\(y=0.422x+0.0812\\), \\(R^2=0.9993\\). Mértékegysége: mg proantocianidin egyenérték / g szárazanyag (mg PCE/g DW).

2.2.6 Az echinacoside és a verbascoside HPLC kvantifikációja

A HPLC kimutatási paraméterek megfeleltek a Kínai Gyógyszerkönyv Cistanche-monográfiájának. Kromatográfiás oszlop: Alltima C18 analitikai oszlop (4,6 mm × 250 mm, 5 μm). Mozgófázisú rendszer: mobilfázis A (metanol), mobil fázis B (0,1%-os hangyasav vizes oldat). Gradiens elúciós eljárás: 0–17 perc, 26,5 % A / 73,5 % B; 17–20 perc, 29,5 % A / 70,5 % B; 20–37 perc, 29,5 % A / 70,5 % B. Az oszlop hőmérsékletét 25 fokon tartják; az áramlási sebesség 1,00 ml/perc; UV-detektálási hullámhossz 330 nm; injekció térfogata 10 μL. Az echinakozid kalibrációs görbéje: \\(y=17395.5x-11283,4\\), \\(R^2=0.9999\\). A verbascoside kalibrációs görbéje: \\(y=13663.1x-15072.6\\), \\(R^2=0.9998\\).

2.2.7 In vitro antioxidáns aktivitás értékelése

1,2 g mintaport abszolút etanol oldószerrel extraháltunk; 250 W-os ultrahangos extrakció 40 percig, centrifugálás 4 500 fordulat/perc mellett 15 percig. A felülúszó törzsoldatot (40 mg/ml) sorozatosan hígítottuk koncentrációgradiensekre (3 mg/ml, 5 mg/ml, 10 mg/ml, 20 mg/ml, 30 mg/ml, 40 mg/ml) az antioxidáns teszteléséhez.

DPPH szabad gyökfogó vizsgálat: 96 lyukú mikrolemezen 50 μL mintaoldat 200 μL DPPH munkaoldattal keverve. Homogenizáljuk, inkubáljuk 30 percig sötétben, mérjük meg az abszorbancia értékét 517 nm-en. DPPH gyökfogó sebességi képlet:

\\(DPPH\\ radical\\ scavenging\\ rate(\\%)=\\left(1-\\frac{A_1-A_2}{A_0}\\right)×100\\) Ahol: \\(A_0\\)=az etanol plusz DPPH-oldat abszorbanciája; \\(A_1\\)=a mintaoldat és a DPPH-reagens abszorbanciája; \\(A_2\\)=mintaoldattal kevert desztillált víz abszorbanciája. Nemlineáris regressziót használtunk az IC50 érték (félig tartó koncentráció) kiszámításához. Az alacsonyabb IC50 érték erősebb gyökeltávolító képességnek felel meg.

ABTS⁺ kation-gyökfogó vizsgálat: ABTS anyalúg (7 mmol/L), egyenlő arányban elkeverve 2,45 mmol/l kálium-perszulfát oldattal, 12-16 órán át sötétben tartva, hogy ABTS⁺ gyöktörzsoldatot hozzon létre. Mérés előtt hígítsuk a törzsoldatot vízmentes etanollal, amíg az abszorbancia el nem éri a 0,7±0,20-at 735 nm hullámhosszon, ezt ABTS⁺ munkafolyadékként határoztuk meg. Mikrolemez lyukban: 50 μL mintaoldat + 200 μL ABTS⁺ munkaoldat. Reagáljon 10 percig szobahőmérsékleten, rögzítse az abszorbanciát 735 nm-en. ABTS⁺ gyökfogó sebesség számítási képlete:

\\(ABTS^+ radikális\\gyökfogó\\arány(\\%)=\\left(1-\\frac{A_1-A_2}{A_0}\\right)×100\\) Az ABTS⁺ gyökfogó IC₅₀ értékét ennek megfelelően számítottuk ki.

2.3 Statisztikai adatfeldolgozás

Az összes adatkészletet "átlagérték ± standard eltérés" formátumban fejeztük ki. GraphPad Prism 9.5 szoftvert alkalmaztunk a grafikus megjelenítéshez; A statisztikai számításokhoz az SPSS Statistics 27-et használtuk. Egyirányú varianciaanalízist (ANOVA) végeztünk a csoportok közötti különbség szignifikanciaszintjének összehasonlítására; P<0.05 was regarded as statistically significant difference threshold. Pearson correlation coefficient was calculated for correlation analysis between bio‑constituents and antioxidant IC₅₀ parameters.

3. Eredmények és elemzés

3.1. A teljes polifenoltartalom változása

A teljes polifenol antioxidáns potenciállal rendelkező létfontosságú másodlagos fenolos metabolitokat képvisel. Jelentős fajtán belüli különbség volt a különböző szövetszegmensek között a Haloxylon-gazda Cistanche esetében (P<0.05). Upper segment of HC delivered highest total‑polyphenol value (27.90 mg GAE/g DW), middle segment exhibited lowest concentration (14.43 mg GAE/g DW). For Tamarix‑host Cistanche, statistical difference among three stem segments was not obvious. Generally speaking, TC accumulated higher total‑polyphenol level compared to HC. Total‑polyphenol value of TC upper, middle and lower tissues reached 1.36‑fold, 2.66‑fold and 2.47‑fold relative to corresponding HC tissue segments respectively.

3.2 Az összes flavonoid tartalom változása

A teljes flavonoid koncentráció kiemelkedő szövetfüggő gradienst mutatott a Tamarix-gazda Cistanche esetében (P<0.05). Lower‑segment total‑flavonoid content of TC reached 35.61 mg RE/g DW, which was 1.66‑fold of middle segment and 3.30‑fold of upper segment of TC. Total‑flavonoid readings of HC upper, middle, lower tissues were merely 3.25 mg RE/g DW, 1.99 mg RE/g DW and 2.52 mg RE/g DW respectively. Every tissue segment of Haloxylon‑host Cistanche was significantly inferior to counterpart Tamarix‑host Cistanche in flavonoid accumulation (P<0.05). Such divergence may be attributed to host‑plant species, soil‑microbiome composition and mineral‑element nutritional circumstance of planting field. Our observation is consistent with former research conclusion: basal root‑adjacent stem part of Cistanche accumulates more flavonoid and polyphenol compounds.

3.3 A teljes cukortartalom változása

Az összcukortartalom figyelemre méltó szegmenseltérést mutatott a Tamarix-gazda Cistanche esetében (P<0.05). Sugar content progressively increased from upper to lower tissue: upper 56.00 mg DE/g DW; middle 61.11 mg DE/g DW; lower 72.10 mg DE/g DW. In contrast, total‑sugar level of Haloxylon‑host Cistanche maintained narrow range of 14.16‑15.70 mg DE/g DW, without notable tissue‑to‑tissue distinction. Each HC segment had significantly lower total‑sugar concentration than matching TC tissue part (P<0.05). Extreme day‑night temperature difference in Hotan desert climate contributes to carbohydrate accumulation inside Tamarix‑host Cistanche tissues.

3.4 A teljes triterpenoid tartalom változása

Mindkét fajta esetében az alsó szegmens teljes triterpenoid tartalma statisztikailag magasabb volt, mint a középső és felső szegmensben (P<0.05). HC lower‑part total‑triterpenoid attained maximum reading 6.75 mg OAE/g DW. TC‑lower triterpenoid concentration (4.59 mg OAE/g DW) was 1.18‑fold versus TC‑middle, 1.13‑fold versus TC‑upper. In general, Haloxylon‑host Cistanche possessed higher total‑triterpenoid pool compared with Tamarix‑host Cistanche (P<0.05).

3.5 A proantocianidintartalom változása

A proantocianidin koncentráció jelentős szöveti különbségeket mutatott mindkét fajta esetében (P<0.05). Ranking for Haloxylon‑host Cistanche: HC‑lower (0.546 mg PCE/g DW) > HC‑upper (0.423 mg PCE/g DW) > HC‑middle (0.233 mg PCE/g DW). Ranking for Tamarix‑host Cistanche: TC‑lower (0.498 mg PCE/g DW) > TC‑middle (0.447 mg PCE/g DW) > TC‑upper (0.352 mg PCE/g DW). Apart from middle segment, proanthocyanidin contents of HC upper & lower tissues were significantly higher than TC counterpart segments. However, absolute proanthocyanidin magnitude of Cistanche material remained low, matching visual observation: Cistanche stem cross‑section presents whitish color without deep pigmentation characteristic of high‑proanthocyanidin plant organs.

3.6 A verbaszkozid (fenil-etanol-glikozid marker) változata

A Tamarix-gazda Cistanche verbascoside szintje egyértelműen magasabb volt, mint a Haloxylon-gazda Cistanche (P<0.05). Within single TC stem, verbascoside concentration gradient: TC‑lower (265.81 mg/g DW) > TC‑middle (168.39 mg/g DW) > TC‑upper (61.76 mg/g DW). For Haloxylon‑host Cistanche: HC‑lower (59.74 mg/g DW) > HC‑upper (55.06 mg/g DW) > HC‑middle (35.89 mg/g DW). Verbascoside predominantly accumulates at basal lower stem segments for both ecotypes.

3.7. Az echinakozid (fenil-etanol-glikozid marker) variációja

Az echinacoside eloszlási mintázata drasztikusan különbözött a verbaszkozidtól. A HC-felső szegmens 92,93 mg/g DW csúcsértéket ért el, ami az összes mért minta közül a legmagasabb értéknek felel meg. Az echinakozid koncentrációja fokozatosan csökkent a felső részről az alsó részre a Haloxylon-host Cistanche esetében. Ezzel szemben a Tamarix-gazda Cistanche növekvő echinakozidszintet mutatott, amely a felső szövettől a bazális alsó szövet felé haladt. A TC-minták echinakozid-tartalmi tartománya: 40,78–57,68 mg/g DW. A HC felső szegmens echinakozid tartalma 2,27-szeres, 2,11-szeres és 1,61-szeres volt a TC-felső, TC-középső és TC-alsó szegmenshez képest külön-külön. Ennek ellenére a HC-középső és a HC-alsó echinakozid-koncentráció jelentősen a TC-közepes és a TC-alsó értékek alatt volt (P<0.05). This divergent spatial‑accumulation feature of two major phenylethanoid glycosides is consistent with many previously‑reported Cistanche investigations. Nutrient translocation flow inside parasitic stem and host‑specific physiological traits are presumed to drive this phenomenon, yet precise molecular regulatory mechanism needs further exploration.

3.8 In vitro antioxidáns aktivitás eredményei

A kisebb IC50 érték erősebb szabadgyökfogó antioxidáns teljesítménynek felel meg. DPPH gyökfogó vizsgálathoz: A Tamarix-host Cistanche jobb aktivitást mutatott, mint a Haloxylon-host Cistanche. TC IC5₀-DPPH: TC-alacsonyabb 5,95 mg/ml; TC-közép 6,57 mg/ml; TC-felső 9,94 mg/ml. HC esetén: HC-alacsonyabb 7,15 mg/ml; HC-közepes 10,32 mg/ml; HC-felső 12,14 mg/ml. Mindkét fajta alsó szegmensei optimális DPPH gyökoldó képességet biztosítottak.

Az ABTS⁺ kation-gyökfogó teszt hasonló tendenciát generált. TC-alacsonyabb IC₅₀-ABTS⁺=3.28 mg/ml; TC-közép 3,53 mg/ml; TC-felső 5,98 mg/ml. HC-alacsonyabb 5,19 mg/ml; HC-közép 5,42 mg/ml; HC-felső 6,81 mg/ml. Az alsó szárszegmensek rendelkeznek a legerősebb ABTS⁺-semlegesítő hatással. Az antioxidáns kapacitás általános sorrendje: Tamarix-host Cistanche > Haloxylon-host Cistanche; alsó szegmens > középső szegmens > felső szegmens minden ökotípusnál.

3.9 Korrelációs elemzés a bioaktív vegyület tartalma és az antioxidáns IC5₀ között

A Pearson-féle korrelációs mátrix azt szemlélteti, hogy az össz-polifenol-, az összes-flavonoid-, a proantocianidin-, az összcukor- és a verbakozid-tartalom negatív korrelációt mutatott az IC5₀-DPPH és IC5₀-ABTS⁺ paraméterekkel. A negatív korreláció ezen bioanyagok magasabb koncentrációját jelenti, alacsonyabb IC5₀ értékkel (erősebb antioxidáns aktivitás). Az összflavonoid rendkívül szignifikáns pozitív korrelációt mutatott a verbaszkoziddal (P<0.01); total‑polyphenol correlated positively with total‑sugar (P<0.05). The statistical outcome confirms polyphenols, flavonoids, saccharides and verbascoside jointly contribute to in‑vitro antioxidant performance of Cistanche deserticola raw material.

4. Vita

Összehasonlító kísérletünk kimutatta, hogy a gazdanövény-fajta és a szárszöveti szegmens együttesen határozza meg a termesztett Xinjiang Cistanche deserticola kémiai összetételének ujjlenyomatát. A Tamarix által parazitált Cistanche bőséges összpolifenolt, összes flavonoidot, összcukrot és verbaszkozidot halmoz fel alsó szárszövetében, a koncentráció felfelé a középső és felső rész felé csökken. A Haloxylon-host Cistanche esetében a felső szárszövet maximális echinakozidot koncentrál; Az alsó szár szövete tartalmazza a legnagyobb össz-triterpenoid- és proantocianidint. Szövet-eloszlási eredményeink összhangban vannak a különböző földrajzi eredetű, több publikált Cistanche komponenstanulmányokkal.

A Hotan száraz sivatagi övezet szélsőséges napi hőmérséklet-különbsége megkönnyíti a szénhidrátok bioszintézisét és tárolását, részben magyarázva a Tamarix-gazda Cistanche mintáiban mért magas összcukortartalmat. A két marker feniletanoid-glikozid (echinakozid, verbaszkozid) ellentétes térbeli felhalmozódási tendenciát mutat a húsos száron belül: az echinacoside gazdagítja a felső szegmenst a Haloxylon-gazda ökotípushoz, a verbaszkozid főként a bazális alsó szegmenst koncentrálja mindkét ökotípusra. Ez a különleges eloszlási mintázat a parazita-növényi tápanyag-szállításhoz és a másodlagos metabolitok bioszintéziséhez kapcsolódhat, amelyet gazdanövény-fiziológiai jelek modulálnak; mögöttes szabályozási mechanizmus további molekuláris biológiai kutatásokat igényel.

Ipari alkalmazás szempontjából, ha a megcélzott funkcionális termékek magas echinakozid-tartalommal rendelkeznek, a Haloxylon-host Cistanche felső szegmensének anyagát kell előnyben részesíteni nyersanyagként. Ha a termelési cél a polifenol-flavonoid-verbakozidban gazdag antioxidáns-orientált étrend-kiegészítőre összpontosít, a Tamarix-host Cistanche alsó szegmense jobb választást jelent. A mérhető szövetek és fajták közötti komponensek közötti hézagok azt jelzik, hogy a Cistanche-hoz kapcsolódó táplálék-kiegészítő gyártás során figyelembe kell venni a gazdaszervezet típusát és a szárszegmens helyzetét a nyersanyagbeszerzés és a minőség-besorolási eljárás során.

A jelenlegi kutatás korlátai: ez a tanulmány csak in vitro kémiai antioxidáns vizsgálatokat végzett. Az in vivo állatmodell farmakológiai hatékonysági különbsége a különböző Cistanche szövetszegmensek között további ellenőrzést igényel. Emellett a környezeti tényezők, köztük az ültetési év, a betakarítási időszak, a talaj tápanyag-állapota is módosíthatják a bio-alkotóelem profilját; a többtényezős együttes hatást figyelembe kell venni az utóvizsgálat során.

5. Következtetés

Összefoglalva, a gazdanövény típusa és a szárszövet szegmense jelentős hatást gyakorol a bioaktív komponens profiljára és az in vitro antioxidáns kapacitásra a Cele megyéből (Xinjiang) gyűjtött mesterségesen termesztett Cistanche deserticola esetében.

A Tamarix-host Cistanche összes polifenol-, összes flavonoid-, összcukrot és verbaszkozidot tartalmaz, mint a Haloxylon-gazda Cistanche. Ezek az anyagok az alsó szárszegmensben érik el a csúcskoncentrációt, és a felső szegmensek felé csökkennek.

A Haloxylon-gazda Cistanche felső szegmense tartalmazza a legmagasabb echinakozid-tartalmat, míg az alsó szegmensben a maximális össz-triterpenoid anyagok halmozódnak fel.

Mindkét fajta alsó szárú szegmensei erősebb DPPH és ABTS⁺ szabadgyökfogó antioxidáns aktivitást biztosítanak. Az összes polifenol, az összes flavonoid, a proantocianidinek, az összes cukor és a verbaszkozid pozitívan kapcsolódik az antioxidáns hatáshoz.

Ezek a kísérleti eredmények gyakorlati referenciaként szolgálnak a Xinjiangban termesztett Cistanche deserticola nyersanyag-osztályozásához, minőségi specifikációinak kidolgozásához és mélyfeldolgozási funkcionális élelmiszer-fejlesztéséhez.

Hivatkozások

[1] Kínai Gyógyszerkönyvi Bizottság. A Kínai Népköztársaság Gyógyszerkönyve (Ⅰ kötet)[M]. Peking: China Medical Science Press, 2020.

[2] Peng XY, Chen JR, Cui HY és társai. Illékony anyagok elemzése a Xinjiangból származó különböző gazdaszervezetű Cistanche-ban a GC-IMS[J] alapján. Élelmiszeripar tudománya és technológiája, 2024,45(9):272-279.

[3] Niu YQ, Zhao Y, Yu XM és társai. Bioaktív anyag és eredet-különbség elemzés a Cistanche tubulosa esetében Xinjiangban[J]. Journal of Light Industry, 2022, 37(6):25–33.

[4] Zhao Y, Yu XM, Wei YP és mások. Funkcionális komponensek és antioxidáns-aktivitás kutatása a Cistanche tubulosa[J] különböző szövetrészeihez. Élelmiszeripar tudománya és technológiája, 2022,43(11):318-325.

[5] Liu HM, Zhao Y, Yu XM és társai. A sivatagban élő Cistanche deserticola minőségi elemzése és átfogó értékelése Kína több termőterületéről gyűjtött [J]. Élelmiszeripar tudománya és technológiája, 2023,44(8):341-350.

[6] Feng D, Zhou SQ, Zhou YX és társai. A Cistanche deserticolából kivont összes glikozid hatása a HepG2 tumorsejtvonal energia-anyagcseréjére [J]. A táplálkozás határai, 2023, 10:1117364.