Absztrakt

Cistanche tubulosaértékes tonizáló gyógynövény, amelyet a hagyományos kínai orvoslásban széles körben alkalmaznak. Az echinakozid és az akteozid által képviselt feniletanoid-glikozidok a fő bioaktív anyagai. A kutatás célja a modern feldolgozási paraméterek optimalizálásaCistanche tubulosafőzetdarabok, hogy javítsák az echinakozid és az akteozid hozamát, és tovább vizsgálják antioxidáns-stressz és gyulladáscsökkentő mechanizmusát sejtszinten.

Egytényezős kísérleteket végeztek, majd a Box-Behnken válaszfelület optimalizálását a szeletvastagság, a gőzölési idő és a szárítási hőmérséklet befolyásoló tényezővel. Két marker vegyület tartalmának kimutatására nagy teljesítményű folyadékkromatográfiát (HPLC) alkalmaztak. Az LPS által indukált RAW264.7 makrofág sérülési modellt a farmakológiai aktivitások értékelésére hozták létre. Meghatároztuk a reaktív oxigénfajták (ROS), nitrogén-monoxid (NO), malondialdehid (MDA), antioxidáns enzimek aktivitását, beleértve a SOD, CAT, LDH és glutation (GSH) tartalmát. Az ELISA-t a TNF-, IL-1 és IL-6 pro-inflammatorikus citokinek szekréciós szintjének tesztelésére használták. Western blot vizsgálatot végeztünk a p38/AKT/JNK/NF-κB jelátviteli útvonal kulcsfontosságú fehérjék foszforilációs állapotának elemzésére.

Az optimális feldolgozási feltételek a 0,6 cm-es szeletvastagság, a 6 perces gőzölési idő és az 57 fokos szárítási hőmérséklet voltak. Ilyen körülmények között az akteozid tartalom elérte a 7,25%-ot, az echinakozid pedig a 31,62%-ot. Az optimalizált főzetdarabokból származó kivonatok jelentősen csökkenthetik az intracelluláris ROS, NO és MDA túltermelését az LPS-stimulált RAW264.7 sejtekben. Fokozta a SOD, CAT, LDH aktivitását és növelte az intracelluláris GSH szintet, ugyanakkor jelentősen gátolta a TNF-, IL-1 és IL-6 felszabadulását. A Western-blot eredmények azt mutatták, hogy a kivonat csökkentette a p-p38/p38, p-AKT/AKT, p-JNK/JNK és p-NF-κB/NF-κB foszforilációs arányát.

Az optimalizált gőzölős-szárítási feldolgozási technológia hatékonyan növelheti a fő fenil-etanol-glikozidok visszanyerési sebességét.Cistanche tubulosa. A főzetdarabok antioxidáns és gyulladásgátló hatást fejtenek ki az LPS által kiváltott sejtkárosodás ellen a p38/AKT/JNK/NF-κB jelátviteli útvonal gátlásán keresztül. Ez a tanulmány gyakorlati műszaki paramétereket nyújt a szabványosított ipari feldolgozásáhozCistanche tubulosa, és kísérleti bizonyítékokat kínál az ebből a növényi erőforrásból származó funkcionális élelmiszerek és táplálkozási termékek fejlesztésére.

Kulcsszavak: Cistanche tubulosa; főzetdarab-feldolgozási technológia; akteozid; echinakozid; antioxidatív stressz; RAW264.7 makrofág; p38/AKT/JNK/NF‑κB útvonal

1. Bevezetés

Cistanche tubulosa(Schenk) A Wight az Orobanchaceae családba tartozik, gyógyászati ​​része a szárított, húsos szár, pikkelyes levelekkel. Kínában ezt a növényt főként északnyugati száraz területeken ültetik, a legnagyobb ültetési terület pedig Hszincsiang déli részén található. Jól ismert tonizáló gyógynövényként tonizálja a vese-jangot, feltölti az esszenciát és a vért, valamint nedvesíti a beleket a székrekedés enyhítésére. Klinikailag a vese-yang-hiány, az esszencia-vér elégtelensége, a meddőség, a derék és a térd fájdalma és gyengesége, valamint a bélszárazság székrekedésének kezelésére használják.

A fenil-etanoid-glikozidok, főként az echinakozid és az akteozid, az elsődleges hatóanyagok.Cistanche tubulosa. A Kínai Gyógyszerkönyv előírásai szerint a minősített gyógyszeralapanyagok összes echinakozid- és akteozid-tartalma nem lehet kevesebb 1,50%-nál, ami kritikus minőségértékelési mutatóként szolgál. Hagyományos feldolgozási megközelítésekCistanche tubulosatöbbnyire áztatás-nedvesítés, szeletelés-szárítás vagy borpárolási módszereket alkalmaznak. Számos tanulmány összpontosít az aktív komponensek hozamának javítására, míg a feldolgozási technológia optimalizálását a biológiai aktivitás ellenőrzésével kombináló kutatások továbbra sem elegendőek.

Az oxidatív stressz számos anyagcsere- és gyulladásos betegség közös patológiás alapja. A meglévő kutatások bebizonyították, hogy az összes glikozidot kivonják aCistanche tubulosaelnyomhatja a gyulladásos választ és aktiválhatja a Nrf2/HO-1 útvonalat, hogy enyhítse a májkárosodást szepszis állatokban. A gyógynövényből származó lignán-glikozid-frakciók a PI3K/AKT jelátvitel szabályozásával mérsékelhetik a makrofág-gyulladást. Mindazonáltal a modern feldolgozott főzetdarabok farmakológiai tulajdonságai és a mögöttes molekuláris mechanizmusok még további feltárást igényelnek.

Ebben a tanulmányban a Box-Behnken válaszfelület-tervezést egytényezős tesztek alapján alkalmazták, a szeletvastagságot, a gőzölési időt és a szárítási hőmérsékletet változókként a feldolgozási munkafolyamat optimalizálása érdekében. Az optimális műszaki paraméterek elérése után LPS-indukálta RAW264.7 oxidatív károsodást okozó sejtmodellt hoztunk létre az antioxidatív-stressz és gyulladásgátló kapacitás értékelésére, valamint a releváns jelátviteli mechanizmusok feltárására. A munka célja, hogy stabil és működőképes feldolgozási paramétereket biztosítson a kísérleti gyártáshoz, és kísérleti alapot teremtsen aCistanche tubulosaerőforrás.

2. Anyagok és módszerek

2.1 Növényi anyagok, reagensek és műszerek

Friss húsos száraCistanche tubulosaősszel betakarították a hszincsiangi Hotanból. A RAW264.7 egér monocita-makrofág leukémia sejteket a Procell Life Science & Technology Co., Ltd.-től (Wuhan, Kína) vásároltuk.

A HPLC-minőségű acetonitrilt és a metanolt a Merck cégtől szereztük be. Az echinacoside (98%-nál nagyobb vagy egyenlő) és az akteozid (98%-nál nagyobb vagy egyenlő) referenciastandardokat a Peking North Weiye Metrológiai Intézet biztosította. A dimetil-szulfoxidot (DMSO) a Sigma-Aldrich cégtől vásárolták. A DMEM magas glükóztartalmú táptalaj, a magzati szarvasmarha szérum (FBS), a penicillin-sztreptomicin kettős antitest oldat, a BCA fehérje mennyiségi meghatározására szolgáló készlet, a NO, MDA, SOD, CAT, GSH és LDH tesztkészletek, lipopoliszacharid (LPS), MTT reagens és ELISA készletek a gyulladásos citokinek mindegyikéhez.

A kísérleti műszerek között szerepelt a Shimadzu nagy teljesítményű folyadékkromatográf, a rotációs bepárló, a kínai fűszernövény porlasztó, a termosztatikus nagynyomású szárító sütő, a gőzfőző, a teljes hullámhosszú mikrolemez-leolvasó, az elektronikus analitikai mérleg, a hűtött centrifuga, a biológiai biztonsági szekrény és a fordított optikai mikroszkóp.

2.2 Egytényezős feldolgozási kísérlet

FrissCistanche tubulosahúsos szárakat 0,2 cm, 0,4 cm, 0,6 cm, 0,8 cm, 1,0 cm és 1,2 cm vastag szeletekre vágtunk. A szeleteket 3 percig, 6 percig, 9 percig pároltuk, 12 percig, 15 percig, 18 percig és 21 percig, és különböző hőmérsékleti gradiensek mellett szárítottuk, beleértve a szobahőmérsékletet (25 fok), 40 fokot, 50 fokot, 60 fokot, 70 fokot és 80 fokot. A szárított főzetdarabos mintákat összetörték, és 40 mesh-es szitán átszitálták a későbbi kimutatás érdekében. Az átfogó értékeléshez az összetett pontozási képletet alkalmazták: Kompozit pontszám=echinakozid-tartalom × 50 % + akteozidtartalom × 50 %.

2.3. Az akteozid és az echinakozid HPLC meghatározása

A mintaoldat elkészítése: pontosan mérjen le 1,0 g pormintát, adjon hozzá 100 ml 50%-os metanolos oldatot. 30 perces áztatás után 40 percig ultrahangos extrakciót végeztünk. A súlycsökkenést hűtés után 50%-os metanollal egészítettük ki. A felülúszót 0,22 μm-es mikroporózus membránnal szűrtük a HPLC injekció előtt.

Az akteozid és echinakozid vegyes referencia-standard oldatát 50%-os metanollal készítettük, és sorozatkoncentrációkra hígítottuk a standard görbe ábrázolásához. Kromatográfiás körülmények: COSMOSIL C18 kromatográfiás oszlop; a mozgófázisú rendszer 0,1%-os vizes foszforsavoldatból (A) és acetonitrilből (B) állt; a detektálási hullámhosszt 330 nm-re állítottuk be; oszlop hőmérséklete 35 fok; áramlási sebesség 1 ml/perc. A célvegyületek mennyiségi kiszámításához külső standard módszert alkalmaztak.

2.4 Box-Behnken válaszfelületi kísérleti tervezés

Az egytényezős kísérleti eredmények szerint a szeletvastagságot (X₁), a gőzölési időt (X₂) és a szárítási hőmérsékletet (X3) választottuk független változóként. Az akteozidtartalom (Y₂, %) és az echinakozid tartalom (Y₂, %) szolgált válaszértékként. A Design-Expert 13.0 szoftvert használták a háromfaktoros, háromszintű Box-Behnken kísérleti séma létrehozásához, összesen 17 tesztcsoporttal. A modellillesztést, a varianciaanalízist és a paraméter-előrejelzést szoftveresen végeztük el. A gyakorlati verifikációs kísérleteket három párhuzamosban végeztem el, miután az elméleti optimális paramétereket a tényleges gyártási művelethez igazították.

2.5 Sejttenyésztés és minta-előkészítés

Az optimalizált feldolgozási körülmények között kapott főzetdarabos mintát kivonatporrá készítettük. A port feloldottuk DMSO-ban, és tovább hígítottuk 10% FBS-t és 1% penicillin-sztreptomicint tartalmazó komplett DMEM tápközeggel a sejtkísérletekhez. A RAW264.7 sejteket párásított inkubátorban tenyésztettük 37 °C-on, 5% CO 2-vel.

2.6 MTT-vizsgálat a sejtek életképességére

A sejtszuszpenziót 96 lyukú lemezekre oltottuk be 8 × 104 sejt/ml sejtsűrűséggel. A csoportokat oldószeres kontrollcsoportként (0,1% DMSO), LPS modellcsoportként (1 ug/ml LPS) és több koncentrációs csoportként állítottuk be.Cistanche tubulosakivonat (3,125, 6,25, 12,5, 25, 50, 100, 200, 400 ug/ml). A minták 2 órás előinkubálása után 1 ug/ml végső koncentrációjú LPS-t adtunk hozzá, kivéve az oldószer-kontroll lyukakat, és további 24 órán át inkubáltuk. MTT-oldatot (5 mg/ml) adtunk hozzá 4 órás reakcióhoz. A felülúszó eltávolítása után DMSO-t adtunk hozzá a formazánkristály feloldásához. A 490 nm-en mért abszorbanciaértéket mikrolemez-leolvasóval detektáltuk a sejtek életképességének kiszámításához. Az utókövető funkcionális tesztekhez biztonságos koncentrációtartományt választottak.

2.7 Intracelluláris ROS mérés

A RAW264.7 sejteket 6 lyukú lemezekre oltottuk 4 × 105 sejt/lyuk sűrűséggel. A falhoz tapadt sejteket gradiens-koncentrációval előkezeltükCistanche tubulosakivonattal (12,5, 25, 50, 100 ug/ml) 2 órán át, majd 24 órán át 1 ug/ml LPS-sel stimuláltuk. Az intracelluláris ROS szintet fluoreszcens szonda reagenskészlettel detektáltuk. A fluoreszcencia intenzitást 488 nm gerjesztési hullámhosszon és 525 nm emissziós hullámhosszon vettük fel.

2.8 NO, MDA, SOD, CAT, LDH és GSH kimutatása

A sejttenyészet felülúszóját a NO-tartalom Griess-módszerrel történő kimutatására gyűjtöttük össze. A sejteket előhűtött PBS-sel mostuk, és jégen lizáltuk. A sejtlizátumot 10 000 fordulatszámmal centrifugáltuk 4 fok alatt 5 percig, hogy megkapjuk az intracelluláris felülúszót. Az MDA-tartalmat, a SOD-, CAT-, LDH- és GSH-szint enzimaktivitásait szigorúan a kit specifikációi szerint mértük. A teljes fehérje normalizálására BCA módszert alkalmaztunk.

2.9 A gyulladást elősegítő citokinek ELISA kimutatása

A RAW264.7 sejteket mintával és LPS-sel kezeltük 16 órán át. A tenyészet felülúszóját összegyűjtöttük és centrifugáltuk 10 000 fordulat/perc mellett 10 percig. A TNF-, IL-1 és IL-6 szekréciós koncentrációit ELISA kittel határozták meg.

2.10 Western Blot analízis

A minták és az LPS 45 perces beavatkozása után a teljes sejtfehérjét RIPA lízispufferrel extraháltuk. A fehérjekoncentrációt BCA kittel határoztuk meg. Egyenlő mennyiségű fehérjemintát (50 ug minden sávhoz) denaturáltunk, SDS-PAGE elektroforézissel elválasztottuk és PVDF membránra vittük. A membránt 5%-os sovány tejes TBST-oldattal blokkoltuk 1 órán át, majd egy éjszakán át 4 fokon inkubáltuk elsődleges antitestekkel. Ismételt TBST-mosás után a másodlagos antitestet szobahőmérsékleten 1 órán át inkubáltuk. A célfehérje sávokat ECL kemilumineszcens reagenssel tettük láthatóvá. Sáv szürkeárnyalatos elemzést végeztek a foszforiláció-fehérje/összes fehérje arány kiszámításához.

2.11 Statisztikai elemzés

GraphPad Prism 8.0.2 szoftvert használtunk a gráf ábrázoláshoz és a statisztikai elemzéshez. Az adatok összehasonlításához egyutas ANOVA-t és t-tesztet alkalmaztak.P < 0.05 represented statistically significant difference; P < 0.01 and P < 0.001 stood for higher significance. All experimental data were expressed as mean ± standard deviation (\(\bar{x}\pm s\)).

3. Eredmények

3.1 Egytényezős kísérleti eredmények

A szelet vastagsága jelentős hatással volt a célglikozid-tartalomra. A 0,2 cm vastag szeleteket könnyű túlgőzölni, ami a hatóanyagok hőbomlását okozta. A túl vastag szeletek akadályozták a belső hatóanyagok felszabadulását. Ha a gőzölési időt 10 percre, a szárítási hőmérsékletet pedig 60 fokra rögzítettük, az egyfaktoros szűrésnél a 0,4 cm volt az optimális szeletvastagság paraméter.

Az elégtelen gőzölési idő nem tudta teljesen tönkretenni a növényi sejtszerkezetet, és alacsony glikozidhozamhoz vezetett. Ha a gőzölési idő meghaladta a 6 percet, a szövetek szétestek, és az echinakozid, valamint az akteozid lebomlott. Rögzített 0,4 cm-es szeletvastagság és 60 fokos szárítási hőmérséklet mellett 6 perc volt a legjobb párolási idő.

Egy bizonyos tartományon belül a fenil-etanoid-glikozidok tartalma a szárítási hőmérséklet emelkedésével párhuzamosan emelkedett, de a hőmérséklet 60 fok feletti lebomlása megtörtént. A 0,4 cm-es szeletvastagság és a 6 perces gőzölési idő mellett a 60 fok a legjobb átfogó teljesítményt mutatta az egytényezős szűrés során.

3.2 A válaszfelület optimalizálási és ellenőrzési tesztje

A varianciaanalízis azt mutatta, hogy az akteozid és echinakozid tartalom regressziós modelljei szignifikánsak voltak (P < 0.05, P < 0.01). The lack‑of‑fit term was non‑significant (P >0,05), ami jó modellillesztési fokot jelez. Az R² determinációs együttható közel 1 volt, ami magas korrelációt mutatott a becsült érték és a tényleges kísérleti adatok között.

Az akteozid tartalmat befolyásoló tényezők sorrendje a szeletvastagság > szárítási hőmérséklet > gőzölési idő volt. Az echinakozid tartalomnál a sorrend a gőzölési idő > szárítási hőmérséklet > szeletvastagság volt.

A szoftverrel számított elméleti optimális paraméterek a következők voltak: 0,600 cm szeletvastagság, 5,685 perc gőzölési idő és 57,009 fok szárítási hőmérséklet. A gyakorlati gyártási körülményeket figyelembe véve a paramétereket 0,6 cm szeletvastagságra, 6 perc gőzölési időre és 57 fokos szárítási hőmérsékletre állítottuk be. A párhuzamos verifikációs kísérletek három csoportja 7,25%-os akteozid- és 31,62%-os echinakozid-tartalmat ért el. A gyakorlati érték és az elméleti előrejelzett érték közötti eltérés rendre 3,89 %, illetve 4,92 % volt, ami igazolta a válaszfelületi modell megbízhatóságát.

3.3 Sejtéletképességi szűrés eredménye

0-100 ug/ml koncentrációtartományon belül,Cistanche tubulosaa főzetdarabos kivonatnak nem volt nyilvánvaló citotoxicitása a RAW264.7 sejteken, és enyhe proliferációt elősegítő hatást mutatott. Amikor a koncentráció elérte a 200 ug/ml-t vagy afelettit, a sejtek életképessége jelentősen csökkent. Ezért a következő sejtkísérletekhez munkakoncentrációként 12,5 ug/ml, 25 ug/ml, 50 ug/ml és 100 ug/ml-t választottunk.

3.4 Hatás az intracelluláris ROS-szintre

Az oldószer-kontroll csoporthoz képest az LPS modellcsoport jelentősen megnövekedett intracelluláris ROS fluoreszcencia intenzitást mutatott (P < 0.001), proving the successful establishment of oxidative‑stress injury model. Pretreatment of Cistanche tubulosaA kivonat dózisfüggő módon csökkentette a túlzott ROS felhalmozódást (P < 0.001 versus model group).

3.5 Az NO, MDA és az antioxidánsokkal kapcsolatos mutatók szabályozása

Az LPS stimuláció a NO és az MDA tartalom éles növekedését indukálta RAW264.7 sejtekben. Az LPS modellcsoporthoz képest az extraktum-beavatkozás szignifikánsan csökkentette az NO-szintet dózisfüggő tendenciával . 12.5 ug/mL kivonat nem gyakorolt ​​nyilvánvaló hatást az MDA-tartalomra, míg a 25-100 ug/mL kivonat észrevehetően csökkentette az MDA-koncentrációt (P < 0.001).

Az LPS-kezelést követően a SOD, CAT, LDH aktivitása és az intracelluláris GSH tartalom jelentősen csökkent. 12.5 ug/mL kivonat, ami fokozhatja az SOD aktivitást a CAT és LDH aktivitások javulása nélkül. A 25-100 ug/ml koncentrációjú kivonat koncentrációfüggő módon szignifikánsan megemelte a SOD, CAT, LDH enzimaktivitásokat és GSH-tartalmat.

3.6. A gyulladásos citokin szekréciót gátló hatás

Az LPS-stimuláció a TNF-, IL-1 és IL-6 tömeges felszabadulását váltotta ki a RAW264.7 makrofágokban.Cistanche tubulosaA főzetdarabos kivonat előkezelése jelentősen elnyomta a fent említett három gyulladást elősegítő citokin szekrécióját (P < 0.001), presenting prominent dose‑dependent anti‑inflammatory property.

3.7 Moduláció a p38/AKT/JNK/NF‑κB jelátviteli útvonalon

Az oldószer-kontroll csoporthoz képest az LPS-beavatkozás növelte a p-p38/p38, p-AKT/AKT, p-JNK/JNK és p-NF-κB/NF-κB foszforilációs arányát. A közepes és nagy dózisú kivonatok csoportjai jelentősen csökkentették a p-p38/p38 és a p-JNK/JNK arányt. Minden koncentrációcsoport csökkentette a p-AKT/AKT és a p-NF-κB/NF-κB szintet (P < 0.05 or P < 0.001). Results illustrated that optimized Cistanche tubulosafőzetdarabos kivonat gátolta a p38/AKT/JNK/NF-κB jelátviteli útvonal aktiválását a fehérje foszforilációjának gátlásával.

4. Vita

Jelenlegi feldolgozási követelmények aCistanche tubulosaA Kínai Gyógyszerkönyvben rögzítettek csak kvalitatív műveleti lépéseket írnak le pontos mennyiségi paraméterek nélkül. Korábbi kutatások kimutatták, hogy a különböző feldolgozási módszerek nagy különbségeket okoznak a kémiai összetételben és a farmakológiai aktivitásban a nyers és a feldolgozott termékek között.Cistanche tubulosaminták. A feldolgozott termékek jobb antioxidáns és immunszabályozó teljesítményt mutatnak a nyersanyagokhoz képest.

Ebben a kutatásban a válaszfelületi módszerrel optimalizált modern gőzölős-szárítási eljárás sokkal nagyobb echinakozid és akteozid hozamot eredményezett, mint sok hagyományos feldolgozási technika. Azt sugallja, hogy a szeletvastagság, a gőzölés időtartama és a szárítási hőmérséklet pontos szabályozása hatékonyan megtartja és javítja a fenil-etanol-glikozid-tartalmat.Cistanche tubulosa.

Az oxidatív stressz és a gyulladás szorosan összefüggő kóros folyamatok. A túlzott ROS lipid-peroxidációt és MDA-felhalmozódást okoz; eközben aktiválja a downstream gyulladásos kaszkádokat, és elősegíti az NO és a többszörös proinflammatorikus citokinek képződését. A gyulladásos mediátorok tovább gyorsítják a ROS termelését, és ördögi patológiás kört képeznek. A sejtes kísérleti eredményeink azt mutatták, hogy optimalizálva vanCistanche tubulosaA főzetdarabos kivonat megszüntetheti a redundáns ROS-t, csökkentheti az oxidatív károsodást okozó NO és MDA markereket, helyreállíthatja a SOD, CAT, LDH által képviselt antioxidáns enzimrendszer aktivitását és feltöltheti az intracelluláris GSH-t, valamint gátolja a gyulladást elősegítő citokinek felszabadulását nyilvánvaló dózis-hatás összefüggéssel.

A p38, a MAPK családba tartozó JNK és az AKT-NF-κB tengely a makrofágok oxidatív-gyulladásos válaszát közvetítő központi jelátviteli csomópontok. Az LPS-stimuláció elősegíti a p38, JNK és AKT foszforilációját, tovább aktiválja az NF-κB-t, és számos gyulladást elősegítő gén transzkripcióját indukálja. A Western-blot adatok ezt mutatták kiCistanche tubulosafőzetdarab-kivonat blokkolta a p38, JNK, AKT és NF-κB foszforilációját. Ebből arra következtethetünk, hogy az optimalizált feldolgozásból származó, nagy tartalmú echinakozid és akteozid együttesen hozzájárulnak a p38/AKT/JNK/NF-κB jelátviteli kaszkád elnyomásához, hogy enyhítsék az LPS által okozott oxidatív stresszt és gyulladásos sérülést a RAW264.7 makrofágokban.

Ebben a tanulmányban még mindig vannak korlátok. Minden farmakológiai értékelést in vitro sejtmodell segítségével végeztek. További állati szintű kísérletekre van szükség a feldolgozott termékek in vivo hatékonyságának és metabolikus jellemzőinek igazolására.Cistanche tubulosafőzet darabok.

Összefoglalva, ez a tanulmány számszerűsíthető és méretezhető modern feldolgozási technológiát hozott létreCistanche tubulosafőzet darabok. A 0,6 cm-es szeletvastagság, 6 perces gőzölési idő és 57 fokos szárítási hőmérséklet feldolgozási paraméterei mellett a fő fenil-etanoid-glikozidok tartalma jelentősen javul. A feldolgozott főzetdarabok enyhíthetik az oxidatív stresszt és a gyulladásos károsodást az LPS-stimulált RAW264.7 makrofágokban a p38/AKT/JNK/NF-κB jelátviteli útvonal gátlásával. Ez a kutatás gyakorlati technikai referenciaként szolgál az ipari termeléshez, és kísérleti alapot kínál a hszincsiangi eredetű funkcionális élelmiszer- és étrend-kiegészítő termékek fejlesztéséhez.Cistanche tubulosa.

Köszönetnyilvánítás

Ezt a munkát a Hszincsiangi Mezőgazdasági Tudományos Akadémia Ifjúsági Tudományos és Technológiai gerinchálózati innovációs kapacitásfejlesztési projektje (xjnkq‑2022022) és a hszincsiangi „Tianchi Doctor Program” (2021) támogatta.

Hivatkozások

[1] Lin J, Yu H, Zhao Y és mtsai. Az echinakozid kinyerése aCistanche tubulosaés szepszis patkányok májkárosodására kifejtett védő hatásának vizsgálata.Élelmiszertudomány és -technológia. 2023;43:e010523.

[2] Guo J, Tang S, Miao Y és mások. A lignán glikozidok gyulladáscsökkentő hatásaCistanche tubulosaLPS/IFN-indukált RAW264.7 makrofág sejtekből származik a PI3K/AKT útvonalon keresztül.Jelenlegi gyógyszerészeti biotechnológia. 2021;22(10):1380‑1391.

[3] Rani V, Deep G, Singh RK és társai. Oxidatív stressz és anyagcserezavarok: Patogenezis és terápiás stratégiák.Élettudományok. 2016;148:183‑193.

[4] Martínez-de-Toda I, Ceprián N, Díaz-de-Castro E. Az oxi-inflamm-aging szerepe a humán patofiziológiában.Sejtek. 2021;10(11):2974.

[5] Chung YC, Song SJ, Lee A és mások. Az izobavachin enyhíti a lipopoliszacharidok által kiváltott gyulladásos válaszokat a makrofágokban és a zebrahalban azáltal, hogy elnyomja a MAPK és NF-κB jelátviteli útvonalakat.Journal of Ethnopharmacology. 2024;321:117501.