8. Következtetések

A bőrvédő termékekben hagyományosan természetes eredetű molekulákat használnak (1. táblázat, CosIng jegyzék). Következésképpen a mikroorganizmusokból biotechnológiai eszközökkel izolált és/vagy biotechnológiai eszközökkel előállított természetes vegyületeket bőrgyógyászati ​​célokra már használják a helyi kozmetikai készítményekben. Ezek a termékek esztétikailag javíthatják a bőr megjelenését, de megelőzhetik és/vagy kezelhetik az életkorral összefüggő bőrbetegségeket is. A „bevált” molekulákon túl számos olyan mikroorganizmusból származó kis molekula és/vagy enzim létezik, amelyek nagy potenciállal rendelkeznek a kozmetikai vagy kozmetikai készítményekben való felhasználásra (1. táblázat).

A vonatkozó tanulmányok szerint a cisztán egy közönséges gyógynövény, amelyet "az életet meghosszabbító csodanövényként" ismernek. Fő összetevője azcisztanozid, melynek különféle hatásai vannak, mint plantioxidáns, gyulladáscsökkentő, ésaz immunrendszer működésének elősegítése. A mechanizmus a cistanche ésbőrfehérítésa cistanche antioxidáns hatásában rejlikglikozidok. Az emberi bőrben a melanint a tirozin oxidációja katalizáljatirozináz, az oxidációs reakcióhoz pedig oxigén részvétele szükséges, így a szervezetben lévő oxigénmentes gyökök a melanintermelést befolyásoló fontos tényezővé válnak. A Cistanche cisztanozidot tartalmaz, amely antioxidáns, és csökkentheti a szabad gyökök képződését a szervezetben, ígygátlómelaninTermelés.

Kattintson a Cistanche Powder Bulk elemre

További információért:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Érdekes módon számos olyan biomolekula, amely már szerepel az elfogadott kozmetikai összetevők európai jegyzékében (CosIng inventory) [14], az egyik biológiai tevékenységük miatt be van jegyezve, de kozmetikai alkalmazásokban eltérően használják őket. Jellemző példa erre a kojinsav, amely "antioxidánsként" van nyilvántartva, míg a kozmetikumokban fő alkalmazási területe erős anti-tirozináz aktivitása, így bőrfehérítőként való alkalmazása (1. táblázat).

Figyelembe véve a hatalmas mikrobiális biodiverzitást és a mikrobiális alkalmazkodást gyakorlatilag a Föld bármely környezetéhez, várható, hogy a mikrobák rendkívül változatos, potenciális bőrvédő hatású biomolekulák szerkezeti vázát képviselik. Bár a tengeri környezettel kapcsolatos kutatások később kezdenek megfelelni, mint a szárazföldi környezetnek, számos olyan esetünk van, amikor a kozmetikai alkalmazások és szabadalmak a tengeri eredetű mikroorganizmusok mellett szólnak. Amint azt a fényvédő hatásukról ismert MAA-k esetében említettük, számos természetes UV-szűrőre vonatkozó szabadalomban szerepelnek. A legtöbbet azonban tengeri környezetből származó mikroorganizmusokkal fejlesztették ki (72,2 százalék), míg a szárazföldi és édesvízi mikroorganizmusokra kifejlesztett szabadalmak aránya nem haladta meg a 21,4 százalékot, illetve a 2,4 százalékot [135]. Ez a tanulmány azt tükrözi, hogy a mai napig néhány esetben a földi környezetet figyelmen kívül hagyták.

Összeférhetetlenség:A szerzők nem nyilatkoznak összeférhetetlenségről.

Rövidítések

UVB ultraibolya B

Hivatkozások

1. Ma, T.; Deng, Z.; Liu, T. A likopin és más terpenoidok mikrobiális termelési stratégiái és alkalmazásai. World J. Microbiol. Biotechnol. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; Barone, G.; Marcellini, F.; Dell'Anno, A.; Danovaro, R. Tengeri mikrobiális eredetű molekulák és lehetséges felhasználásuk kozmetikai és kozmetikai termékekben. Március Drugs 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Lobanovska, M.; Pilla, G. A penicillin felfedezése és az antibiotikum-rezisztencia: tanulságok a jövőre nézve? J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.

4. Raja, A.; Prabakarana, P. Actinomycetes, and Drug-An Overview. Am. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [CrossRef]

5. Berdy, J. Bioaktív mikrobiális metabolitok. J. Antibiot. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. Ferreira, A.; Vecino, X.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, AB; Rodrigues, LR Lactobacillus paracasei biofelületaktív anyagot tartalmazó új kozmetikai készítmények. Colloids Surf. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Argyropoulou, A.; Aligiannis, N.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL Természetes vegyületek öregedésgátló hatással. Nat. Prod. Rep. 2013, 30, 1412–1437. [CrossRef]

8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. A dermális fibroblasztok UVB-indukált öregedésének molekuláris mechanizmusai és jelentősége az emberi bőr fotoöregedésénél. Exp. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. Az öregedő sejtek megcélzása: A bőr öregedésének késleltetésének lehetséges következményei: Egy mini áttekintés. Gerontológia 2016, 62, 513–518.

10. Trougakos, IP; Sesti, F.; Tsakiri, E.; Gorgoulis, VG Nem enzimatikus poszttranszlációs fehérjemódosítások és proteosztázis hálózat deregulációja a karcinogenezisben. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.

11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; Fokialakis, N.; Trougakos, IP Rák kemoprevenciója proteosztatikus modulok aktiválásával. Cancer Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. Piackutatási jelentések. (Hozzáférés: 2017. augusztus 22.).

13. Hyde, KD; Bahkali, AH; Moslem, MA Gombák – Szokatlan kozmetikai forrás. Gombás búvárok. 2010, 43, 1–9. [CrossRef]

14. Cosing Inventory. Elérhető online: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (Hozzáférés: 2018. március 22.).

15. Chai, TT; jog, YC; Wong, FC; Kim, SK Antioxidáns peptidek enzimekkel segített felfedezése ehető tengeri gerinctelenekből: Áttekintés. Március Drugs 2017, 15, 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG Az emlősök mitokondriumai és öregedése: frissítés. Sejt. Metab. 2017, 25, 57–71. [CrossRef]

17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. Természetes antioxidánsok a kozmetikában. Stud. Nat. Prod. Chem. 2013, 40, 485–505.

18. Abramoviˇc, H.; Grobin, B.; Ulrich, NP; Cigi´c, B. In vitro antioxidáns vizsgálatok jelentősége és szabványosítása: ABTS, DPPH és Folin-Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1–9. [CrossRef]

19. Huang, WY; Cai, YZ; Xing, J. Egy potenciális antioxidáns erőforrás: endofita gombák gyógynövényekből. Econ. Bot. 2007, 61, 14–30. [CrossRef]

20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, T.; Hulikere, MM; Appaiah, KAA Molekuláris profilalkotás és antioxidáns, valamint a polifenoltermelő endofita gomba-Aspergillus austroafricanus CGJ-B3 antibakteriális potenciálja. Mycology 2017, 8, 28–38. [CrossRef]

21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV A Spirulina (Arthospira) platensis antioxidáns tulajdonságai, amelyeket különböző hőmérsékleten és nitrogénrendszerben termesztenek. Braz. Boltív. Biol. Technol. 2007, 50, 161–167. [CrossRef]

22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Speciális körülmények között tenyésztett Chlorella vulgaris mikroalga antioxidáns hatása. Boll. Chim. Farm. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, ES; Shanab, SMM Különböző Spirulina platensis kivonatok radikális és antioxidáns hatásai DPPH és ABTS gyökvizsgálatok ellen. Indian J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [CrossRef]

24. Goiris, K.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; Noten, B.; De Paepe, D.; GJ, B.; De Cooman, L. Flavonoidok kimutatása különböző evolúciós vonalakból származó mikroalgákban. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [CrossRef]

25. Jerez-Martel, I.; García-Poza, S.; Rodríguez-Martel, G.; Rico, M.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Mikroalgák és cianobaktérium törzsekből származó nyers kivonatok fenolos profilja és antioxidáns hatása. J. Food Qual. 2017, 4, 1–8. [CrossRef]

26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Antioxidáns tulajdonságok és polifenoltartalom szárazföldi cianobaktériumokban. 3 Biotech. 2017. [CrossRef]

27. Liu, Y.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, H.; Zhang, D.; Han, X. Resveratrol-termelő endofiták izolálása és azonosítása Cabernet Sauvignon borszőlőből. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Shi, J.; Zeng, Q.; Liu, Y.; Pan, Z. Alternaria sp. MG1, egy resveratrol-termelő gomba: izolálás, azonosítás és optimális tenyésztési feltételek a rezveratrol előállításához. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA A resveratrol öregedésgátló tulajdonságai: áttekintés és jelentés egy új, hatékony antioxidáns bőrápoló készítményről. J. Cosmet. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Y. Resveratrol biokonverziója nem genetikailag módosított Alternaria sp. Biotechnol. Appl. Biochem. 2013, 60, 236–243. [CrossRef]

31. An, SM; Koh, JS; Boo, YC P-kumársav nemcsak az emberi tirozináz aktivitást gátolja in vitro, hanem a melanogenezist is az UVB-sugárzásnak kitett sejtekben. Fitother. Res. 2010, 24, 1175–1180.

32. Lourith, N.; Kanlayavattanakul, M. A Passiflflora edulis magjának antioxidáns hatása és fenoltartalma a légyártási maradékból kinyert. J. Oleo. Sci. 2013, 62, 235–240. [CrossRef]

33. Lopez-Burillo, S.; barna, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, LC; Reiter, RJ A melatonin, a xanthurénsav, a rezveratrol, az EGCG, a C-vitamin és az alfa-liponsav eltérő módon csökkenti a Fenton-reagensek által kiváltott oxidatív DNS-károsodást: egyéni és szinergikus hatásuk tanulmányozása. J. Pineal. Res. 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]

34. Satooka, H.; Kubo, I. Resveratrol mint kcat típusú tirozináz inhibitor: Potentiated melanogenesis inhibitor. Bioorg. Med. Chem. 2012, 20, 1090–1099. [CrossRef]

35. Li, M.; Kildegaard, KR; Chen, Y.; Rodriguez, A.; Borodina, I.; Nielsen, J. De novo Resveratrol előállítása glükózból vagy etanolból mesterségesen módosított Saccharomyces cerevisiae segítségével. Metab. Eng. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. Lim, CG; Fowler, ZL; Hueller, T.; Schaeffer, S.; Koffffas, MA Nagy hozamú rezveratrol termelés mesterséges Escherichia coliban. Appl. Environ. Microbiol. 2011, 77, 3451–3460. [CrossRef]

37. Sydor, T.; Schaeffer, S.; Boles, E. A resveratrol termelésének jelentős növekedése rekombináns ipari élesztőtörzsek által a gazdag táptalaj használatával. Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76, 3361–3363. [CrossRef]

38. Balestrazzi, A.; Bonadei, M.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Leaf-asszociált baktériumok transzgénikus fehér nyárból, amelyek rezveratrolszerű vegyületeket termelnek: izolálás, molekuláris jellemzés és az oxidatív stressz tolerancia értékelése. Tud. J. Microbiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; Zhang, Q.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, A.-L.; Gao, J.-M. A Melia azedarach endofita Botryosphaeria dothidea másodlagos metabolitjai és gombaellenes, antibakteriális, antioxidáns és citotoxikus hatásaik. J. Agric. Food Chem. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. Mou, Y.; Meng, J.; Fu, X.; Wang, X.; Tian, ​​J.; Wang, M.; Peng, Y.; Zhou, L. Antimikrobiális és antioxidáns aktivitások és a 1-hexadecén hozzáadásának hatása palmarumicin C2 és C3 hozamokra endofita gomba Berkleasmium sp. folyékony tenyészetében. Dzf12. Molecules 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. A glutation és N-acetil-cisztein kiegészítők antioxidáns szerepe és a testmozgás által kiváltott oxidatív stressz. J. Int. Soc. Sport Nutr. 2005, 2, 38–44. [CrossRef]

42. Sonthalia, S.; Daulatabad, D.; Sarkar, R. A glutation mint bőrfehérítő szer: tények, mítoszok, bizonyítékok és viták. indiai J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [CrossRef]

43. Fei, L.; Wang, Y.; Chen, S. Javított glutation termelés génexpresszióval Pichia pastorisban. Biofolyamat. Biosyst. Eng. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]

44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, H.; Li, Z.; Igen, Q. Heterológ gshF génexpresszió különböző vektorrendszerekben Escherichia coliban a fokozott glutationtermelés érdekében. J. Biotechnol. 2015, 214, 63–68. [CrossRef]

45. Palozza, P.; Krinsky, NI Az asztaxantin és a kantaxantin erős antioxidánsok a membránmodellben. Boltív. Biochem. Biophys. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Yamamoto, K.; Hara, KY; Morita, T.; Nishimura, A.; Sasaki, D.; Ishii, J. Az asztaxantin termelésének fokozása Xanthophyllomyces dendrorhousban hatékony módszerrel a gének teljes deléciójára. Microb. Cell Fact. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA A tenyésztési körülmények hatása a zöld alga növekedésére - Haematococcus pluvialis és az astaxanthin termelés. Acta Physiol. Növény. 2002, 24, 323–329. [CrossRef]

48. Mueller, L.; Boehm, V. Béta-karotin vegyületek antioxidáns hatása különböző in vitro vizsgálatokban. Molecules 2011, 16, 1055–1069. [CrossRef]

49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, X.; Hu, M.; Deng, Z. Célzott tervezés és a likopin túltermelés növelése Escherichia coliban. Folyamat. Biochem. 2015, 50, 341–346. [CrossRef]

50. Nelis, HJ; De Leenheer, A. P., Reinvestigation of Brevibacterium sp. KY-4313 törzs kantaxantin forrásaként. Appl. Environ. Microbiol. 1989, 55, 2505–2510.

51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. A karotinoid lutein antioxidáns hatása in vitro és in vivo. Indian J. Exp. Biol. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodríguez, H.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG A klorofita mikroalgák karotinoidtartalma: a lutein felhalmozódását meghatározó tényezők Muriellopsis sp. (Chlorophyta). J. Biotechnol. 2000, 76, 51–59. [CrossRef]

53. Venugopalán, V.; Tripathi, SK; Nahar, P.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Új talajból izolált kantaxantin izomerek jellemzése Dietzia sp. és antioxidáns hatásuk. J. Microbiol. Biotechnol. 2013, 23, 237–245. [CrossRef]

54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Endofita Fusarium solani SD5-ből származó exopoliszacharid antioxidáns hatásának in vitro vizsgálata. Int. J. Biol. Macromol. 2013, 53, 62–66. [CrossRef]

55. Zheng, LP; Zou, T.; Ma, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ A Bacillus cereus SZ1 endofita baktériumból származó exopoliszacharidok antioxidáns és DNS-károsodás elleni védelme. Molecules 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Liu, J.; Luo, J.; Igen, H.; Sun, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. A Paenibacillus polymyxa EJS endofita baktériumból származó exopoliszacharidok in vitro előállítása, jellemzése és antioxidáns aktivitása-3. szénhidrát. Polym. 2009, 78, 275–281. [CrossRef]

57. Liu, J.; Luo, J.; Igen, H.; Sun, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. A Paenibacillus polymyxa EJS endofita baktériumból származó exopoliszacharidok közepes optimalizálása és szerkezeti jellemzése-3. szénhidrát. Polym. 2010, 79, 206–213. [CrossRef]

58. Xiao, R.; Zheng, Y. A mikroalga extracelluláris polimer anyagok (EPS) és alkalmazásaik áttekintése. Biotechnol. Adv. 2016, 34, 1225–1244. [CrossRef]

59. Chen, Y.; Mao, W.; Tao, H.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Az Aspergillus sp. mangrove endofita gomba által termelt exopoliszacharid szerkezeti jellemzése és antioxidáns tulajdonságai. Y16. Bioresour. Technol. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; Sassaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, FO; Gorin, PA; Iacomini, M. Savas exopoliszacharid termelésének tenyésztési feltételei a Burkholderia tropica nitrogénmegkötő baktérium által. Tud. J. Microbiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. Trabelsi, L.; Chaieb, O.; Mnari, A.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. A Graesiella sp. termofil mikroalgából származó vizes extracelluláris poliszacharidok részleges jellemzése és antioxidáns és antiproliferatív aktivitása. BMC kiegészítés. Altern. Med. 2016. [CrossRef]

62. Romay, C.; Gonzalez, R.; Ledon, N.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-phycocyanin: egy biliprotein antioxidáns, gyulladáscsökkentő és neuroprotektív hatással. Curr. Protein Pept. Sci. 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. Tasar, OC; Erdal, S.; Taskin, M. Chitosan termelés pszichrotoleráns Rhizopus oryzae által nem steril nyitott fermentációs körülmények között. Int. J. Biol. Macromol. 2016, 89, 428–433. [CrossRef]

64. Asachi, R.; Karimi, K. Enhanced etanol- és kitozántermelés búzaszalmából a Mucor indicus által minimális tápanyag-fogyasztás mellett. Folyamat. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [CrossRef]

65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; Sharmila, K.; Kalaiselvam, M.; Raffiffiffi, SM Kitozán előállítása mangrove környezetből izolált endolit gombákból és antagonista hatása. Ázsiai Pac. J. Trop. Biomed. 2012, 2, 140–143. [CrossRef]

66. Ordonñez, L.; Garciía, J.; Bolanños, G. Kitin és kitin-glükán komplexek előállítása Aspergillus niger biomasszából szubkritikus víz felhasználásával. In Proceedings of the Ibero-American Conference on Supercritical Fluids, Cartagena, Kolumbia, 2013. április 1–5.

67. Guo, J.; Rao, Z.; Yang, T.; Man, Z.; Xu, M.; Zhang, X. Magas szintű melanintermelés a Streptomyces kathirae új izolátuma által. FEMS Microbiol. Lett. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. Tarangini, K.; Mishra, S. Melanin előállítása talajmikrobiális izolátummal gyümölcshulladék-kivonaton: a kulcsfontosságú paraméterek kétlépéses optimalizálása. Biotechnol. Rep. 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. Beckstead, AA; Zhang, Y.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, E.; Foreman, CM A bakteriális pigment violacein ultragyors gerjesztett állapotú deaktiválása. J. Phys. Chem. 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. Ahmad, WA; Yusof, NZ; Nordin, N.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Violacein előállítása és jellemzése mezőgazdasági hulladékban termesztett, lokálisan izolált Chromobacterium violaceum segítségével. Appl. Biochem. Biotechnol. 2012, 167, 1220–1234. [CrossRef]

71. Wang, H.; Jiang, P.; Lu, Y.; Ruan, Z.; Jiang, R.; Xing, X.-H. A tenyésztési feltételek optimalizálása a violacein termeléséhez egy új Duganella sp. B2. Biochem. Eng. J. 2009, 44, 119–124. [CrossRef]

72. Pathak, J.; Sonker, AS; Richa, R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Fényvédő pigment szcitonemin szűrése és részleges tisztítása az indiai Varanasiban és környékén található történelmi emlékeken élő cianobaktérium kéregekből. Microbiol. Res. 2017. [CrossRef]

73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; Ő, S.; Yan, X. Oxidált scytonemin meghatározása Nostoc commune Vauch-ban, különböző körülmények között tenyésztve nagy teljesítményű folyadékkromatográfiával, hármas kvadrupól tömegspektrometriával párosítva. J. Appl. Phycol. 2013, 25, 1001–1007. [CrossRef]

74. Nakashima, T.; Anzai, K.; Kuwahara, N.; Komaki, H.; Miyadoh, S.; Harayama, S. A Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815 által termelt tirozináz inhibitor fizikai-kémiai jellemzői. Biol. Pharm. Bika. 2009, 32, 832–836. [CrossRef]

75. Kurbanoglu, EB; Ozdal, M.; Ozdal, OG; Algur, OF Serratia marcescens MO-1 fokozott prodigiozin-termelése kosszarv-pepton használatával. Braz. J. Microbiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. Boric, M.; Danevcic, T.; Stopar, D. Prodigiosin a Vibrio sp. DSM 14379; új UV-védő pigment. Microb. Ecol. 2011, 62, 528–536. [CrossRef]

77. Lawrence, KP; Gacesa, R.; Hosszú, PF; Young, AR Humán keratinociták molekuláris fotovédelme in vitro a természetben előforduló mikosporinszerű polietilén aminosavval. Br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [CrossRef]

78. Rastogi, RP; Incharoensakdi, A. UV-szűrő vegyületek, mikosporinszerű aminosavak és scytonemin jellemzése a Lyngbya sp. cianobaktériumban. CU 2555. FEMS Microbiol. Ecol. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. Libkind, D.; Moline, M.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, M. A gombás ciklosporin filogenetikai eloszlása ​​a Pucciniomycotinán (Basidiomycota) belül. Yeast (Chichester, Anglia) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

80. Kogej, T.; Gostincar, C.; Volkmann, M.; Gorbushina, AA; Gunde-Cimerman, N.; Kogej, T.; Gorbushina, AA Mikosporinok extremofil gombákban - Új kiegészítő ozmolitok? Environ. Chem. 2006, 3, 105–110. [CrossRef]

81. Wei, S.; Xu, N.; Ji, Z. Kojisavat termelő Aspergillus afflatus F52 azonosítása. Acta Microbiol. Bűn. 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA Kulturális körülmények vizsgálata az Aspergillus parasiticus által okozott kojsav termelésére vonatkozóan. Int. J. Agric. Biol. 2006, 8, 468–473.

83. Mohamad, R.; Ariffff, AB Különféle szénforrások biotranszformációja kojsavvá az A. afflatus Link 44-1 sejthez kötött enzimrendszerével. Biochem. Eng. J. 2007, 35, 203–209. [CrossRef]

84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Többfunkciós és lehetséges bőr UV-védő, (3R)-5-hidroximellein, amelyet a Parmotrema austrosinense-ből izolált endolit gomba termel. Molecules 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Robledo, A.; Aguilera-Carbo, A.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Y.; Aguilar, CN Ellagsav előállítása az Aspergillus niger által gránátalma maradványok szilárd fázisú fermentációjában. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008, 35, 507–513. [CrossRef]

86. Smith, WP A helyi L( plus ) tejsav és az aszkorbinsav hatása a bőrfehérítésre. Int. J. Cosmet. Sci. 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Xilóz metabolizmus a Rhizopus oryzae gombában: a növekedés és a légzés hatása az L plusz tejsavtermelésre. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008, 35, 569–578. [CrossRef]

88. Shih, IL; Van, YT Poli-(gamma-glutaminsav) előállítása mikroorganizmusokból és különféle alkalmazásai. Bioresour. Technol. 2001, 79, 207–225. [CrossRef]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW Az azelainsav lehetséges hatásmechanizmusa az emberi felhámban. Boltív. Dermatol. Res. 1990, 282, 168–171. [CrossRef]

90. Balina, LM; Graupe, K. A melasma kezelése 20 százalékos azelainsavat a 4 százalékos hidrokinonos krémmel szemben. Int. J. Dermatol. 1991, 30, 893–895. [CrossRef]

91. Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Tirozináz inhibitorok azonosítása Pityrosporum tenyészetekben és melanocitotoxikus hatásuk. Pigment. Cell 1979, 4, 234–243.

92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. E-vitamin-szukcinát enzimkatalizált szintézise kémiailag módosított senkivel-435. Áll. J. Chem. Eng. 2011, 19, 135–139. [CrossRef]

93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Összehasonlító vizsgálatok a membrán lipotechoinsav izolálására Lactobacillus fermentációból. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.

94. Tokiwa, Y.; Kitagawa, M.; Raku, T. Az arbutin undecilénsav-észter enzimatikus szintézise és gomba tirozinázt gátló hatása. Biotechnol. Lett. 2007, 29, 481–486. [CrossRef]

95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, U.; Frisvad, JC Potenciálisan biztonságos, ígéretes gombasejt-gyárak azonosítása poliketid természetes élelmiszer-színezékek előállítására kemotaxonómiai alapon. Microb. Cell Fact. 2009. [CrossRef]

96. Dufossé, L. Encyclopedia of Microbiology, 3. kiadás; Academic Press: New York, NY, USA, 2009; Mikrobás pigmentek; 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: Hatékony természetes anyag az UVA által kiváltott idő előtti fényöregedés megelőzésére. Skin Pharmacol. Physiol. 2004, 17, 232–237. [CrossRef]

98. Becker, J.; Schafer, R.; Kohlstedt, M.; Harder, BJ; Borchert, NS; Stoveken, N. Corynebacterium glutamicum rendszer-anyagcsere-tervezése a chaperon-ektoin kémiai előállításához. Microb. Cell Fact. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. A látható fény genotoxicitásának (400-800 nm) és a fotoprotekciós értékelése metszet, L-ergothioneine és mannit, valamint négy fényvédő krém esetében. J. Photochem. Photobiol. B. 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, I.; Nielsen, DR Engineering Escherichia coli a megújuló benzilalkohol előállításához. Metab. Eng. 2015, 2, 39–45. [CrossRef]

101. Ni, J.; Tao, F.; Du, H.; Xu, P. A de novo bioszintézis természetes útjának utánzása: természetes vanillintermelés hozzáférhető szénforrásokból. Sci. Rep. 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Yamada, M.; Okada, Y.; Yoshida, T.; Nagasawa, T. Vanillin termelés a Pseudomonas putida izoeugenol-monooxigenázát túlzottan expresszáló Escherichia coli sejtekkel. Biotechnol. Lett. 2008, 30, 665–670. [CrossRef]

103. Zhao, L.-Q.; Sun, Z.-H.; Zheng, P.; Zhu, L.-L. Az izoeugenol biotranszformációja vanillinné a Bacillus fusiformis új törzsével. Biotechnol. Lett. 2005, 27, 1505–1509. [CrossRef]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Az Ehrlich-útvonal jelentős hozzájárulása a 2-fenil-etanol/rózsaíz előállításához Ashbya gossypii-ben. FEMS Yeast Res. 2014, 14, 833–844. [CrossRef]

105. Eichmann, MMW; Schrader, J. Vizes-szerves kétfázisú biofolyamat a természetes aroma vegyszerek 2-fenil-etanol és 2-fenil-etil-acetát élesztővel történő hatékony előállítására. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2006, 71, 440–443. [CrossRef]

106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen, S.; Buhler, B.; Julsing, MK; Schmid, A. Rekombináns Escherichia coli termelékenységének tervezése glicerinből minimális tápközegben történő limonén képzéshez. Biotechnol. J. 2014, 9, 1000–1012. [CrossRef]

107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, Kr. e.; Freire, G.; Almeida, RV Fokozott ramnolipid termelés a Pseudomonas aeruginosa által, amely túlzottan expresszálja az estA-t egyszerű tápközegben. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [CrossRef]

108. Desai, JD; Banat, IM A felületaktív anyagok mikrobiális előállítása és kereskedelmi potenciáljuk. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, T.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM Karotinoid termelés és génexpresszió egy asztaxantint túltermelő Xanthophyllomyces dendrorhous mutáns törzsben. Boltív. Microbiol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, T.; Christou, P. Táplálkozási szempontból fontos karotinoidok, mint fogyasztói termékek. Phytochem. Rev. 2015, 14, 727–743. [CrossRef]

111. Henriquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Carotenoids in microalgae. In Karotinoidok a természetben; Strange, E., szerk.; Springer International Publishing: New York, NY, USA, 2016; 219–237.

112. Lau, N.-S.; Matsui, M.; Abdullah, AA-A. Cianobaktériumok: fotoautotróf mikrobiális gyárak ipari termékek fenntartható szintéziséhez. J. Biomed. Biotechnol. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. Das, A.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Ó, DK; Kim, SW Frissítés a mikrobiális karotinoidtermelésről: a legújabb anyagcsere-mérnöki eszközök alkalmazása. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007, 77, 505–512. [CrossRef]

114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, A.; Aguilar, CN Karotinoidok biotechnológiai előállítása élesztőgombákkal: Áttekintés. Microb. Cell Fact. 2014. [CrossRef]

115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, H.; Liu, S.; Kan, J.; Jin, C. Az endofitikus exopoliszacharidok legújabb eredményei: Termelés, szerkezeti jellemzés, fiziológiai szerep és biológiai aktivitás. szénhidrát. Polym. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. Liu, F.; Ooi, VE; Chang, ST A gomba poliszacharid kivonatainak szabad gyökfogó hatása. Life Sci. 1997, 60, 763–771. [CrossRef]

117. Jin, M.; Cai, YX; Li, JR; Zhao, H. 1, 10-fenantrolin-Fe2 plusz a H2O2/Fe által termelt hidroxilgyök oxidatív vizsgálata. Prog. Biochem. Biophys. 1996, 23, 553–555.

118. Chen, B.; Te, W.; Huang, J.; Yu, Y.; Chen, W. A Rhodella reticulata-ból származó extracelluláris poliszacharid izolálása és antioxidáns tulajdonsága. World J. Microbiol. Biotechnol. 2010, 26, 833–840. [CrossRef]

119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Az oxidatív stressz kezelése mikroalgákkal. Tud. J. Physiol. Pharmacol. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. Hassan, HM Az oxigyökök citotoxicitása és a szuperoxid-diszmutázok evolúciója. Az oxigénben, a génexpresszióban és a sejtfunkciókban; Massaro, D., Clerch, L., szerk.; Marcel Dekker: New York, NY, USA, 1997.

121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Az antioxidáns enzimek szerepe a baktériumok szerves savakkal szembeni rezisztenciájában. Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. Tanulmányok a szabad gyökökről, antioxidánsokról és kofaktorokról. Clin. Interv. Öregedés 2007, 2, 219–236.

123. Abbott, DA; Suir, E.; Duong, GH; de Hulster, E.; Pronk, JT; van Maris, AJ A kataláz túlzott expressziója csökkenti a tejsav által kiváltott oxidatív stresszt a Saccharomyces cerevisiae-ben. Appl. Environ. Microbiol. 2009, 75, 2320–2325. [CrossRef]

124. Shao, N.; Beck, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, A. A fotoszintetikus elektrontárs a Chlamydomonas reinhardtii kataláz inaktiválásával befolyásolja a H2O2 jelátvitelt. Planta 2008, 228, 1055–1066. [CrossRef]

125. Európai Bizottság. Az állatkísérletek betiltása. Elérhető online: https://ec.europa.eu/growth/sectors/ cosmetics/animal-testing_en (Hozzáférés: 2019. április 14.).

126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Mikrobiális ultraibolya fényvédők. Nat. Rev. Microbiol. 2011, 9, 791–802. [CrossRef]

127. Plonka, PM; Grabacka, M. Melanin szintézis mikroorganizmusokban – biotechnológiai és orvosi vonatkozások. Acta Biochim. Pol. 2006, 53, 429–443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. Gombás melanin: Mit tudunk a szerkezetről? Elülső. Microbiol. 2015. [CrossRef]

129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanin: fényvédelem Bacillus thuringiensis alapú biopeszticidekhez. Biotechnol. Lett. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, K.; Nazififi, E.; Hirai, Y.; Wada, N.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. A cianobaktérium UV-elnyelő pigment scytonemin gyökfogó aktivitást mutat. J. Gen. Appl. Microbiol. 2012, 58, 137–144. [CrossRef]

131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, ND; Castenholz, RW Bizonyíték az extracelluláris pigment scytonemin ultraibolya fényvédő szerepére a Chlorogloeopsis sp. szárazföldi cianobaktériumban. Photochem. Photobiol. 1992, 56, 17–23. [CrossRef]

132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Cianobakteriális fényvédő scytonemin: szerepe a fényvédelemben és az orvosbiológiai kutatásban. Appl. Biochem. Biotechnol. 2015, 176, 1551–1563. [CrossRef]

133. Darshan, N.; Manonmani, HK Prodigiosin és lehetséges alkalmazásai. J. Food Sci. Technol. 2015, 52, 5393–5407. [CrossRef]

134. Duran, N.; Justo, GZ; Duran, M.; Brocchi, M.; Cordi, L.; Tasic, L. Advances in Chromobacterium violaceum és a violacein tulajdonságai – Fő másodlagos metabolitja: Áttekintés. Biotechnol. Adv. 2016, 34, 1030–1045. [CrossRef]

135. Colabella, F.; Moline, M.; Libkind, D. Mikrobás eredetű UV fényvédők: ciklosporin és mikosporinszerű aminosavak. Legutóbbi Pat. Biotechnol. 2014, 8, 179–193. [CrossRef]

136. Khosravi, S.; Khodabandeh, S.; Agh, N.; Bakhtiarian, M. A sótartalom és az ultraibolya sugárzás hatása a mikosporinszerű aminosavak bioakkumulációjára Artemia-ban az Urmia-tóból (Irán). Photochem. Photobiol. 2013, 89, 400–405. [CrossRef]

137. Gorbushina, AA; Whitehead, K.; Dornieden, T.; Niesse, A.; Schulte, A.; Sövények, JI Fekete gombakolóniák, mint a túlélés egységei: sziklában élő mikrotelepi gombák által szintetizált hifális ciklosporin. Tud. J. Bot. 2003, 81, 131–138. [CrossRef]

138. Gillbro, JM; Olsson, MJ A bőrvilágosító szerek melanogenezise és mechanizmusai – meglévő és új megközelítések. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. Smit, N.; Vilanova, J.; Pavel, S. Természetes bőrfehérítő szerek vadászata. Int. J. Mol. Sci. 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. Pillaiyar, T.; Manickam, M.; Namasivayam, V. Bőrfehérítő szerek: a tirozináz inhibitorok gyógyászati ​​kémiai perspektívája. J. Enzyme Inhib Med. Chem. 2017, 32, 403–425. [CrossRef]

141. Pillaiyar, T.; Namasivayam, V.; Manickam, M.; Jung, SH A melanogenezis gátlói: frissített áttekintés. J. Med. Chem. 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. Ha, TJ; Yang, MS; Jang, DS; Choe, SU; Park, GH A Sophora flavecensből izolált flavanonszármazékok gátló hatásai melanogenezisre. Bika. Koreai Chem. Soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; Kang, M.; Chung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK A bőr depigmentáló és világosító szerek felmérése és mechanizmusa. Fitother. Res. 2006, 20, 921–934. [CrossRef]

144. Rosfarizan, M.; Mohd, SM; Nurashikin, S.; Madihah, MS; Arbakariya, BA Kojic sav: A fermentációs folyamatok alkalmazása és fejlesztése a termeléshez. Biotech. Mol. Biol. 2010, 5, 24–37.

145. Ortiz-Ruiz, önéletrajz; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Az ellagsav hatása a melanin bioszintézis útjára. J. Dermatol. Sci. 2010, 5, 24–37. [CrossRef]

146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, A.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. A kreozot bokor (Larrea tridentata) és a kátránybokor (Fluorensia cernua) tanninjainak gombás biodegradációja gallusz- és ellagsav előállításához. Food Technol. Biotechnol. 2008, 46, 213–217.

147. Sepúlveda, L.; Ascacio, A.; Rodríguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Ellagic sav: Biológiai tulajdonságok és biotechnológiai fejlesztés a termelési folyamatokhoz. Afr. J. Biotechnol. 2011, 10, 4518–4523.

148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Zina, G. Azelainsav terápia pigmentációs rendellenességekben. Clin. Dermatol. 1989, 7, 106–119. [CrossRef]

149. Sieber, MA; Hegel, JK Azelainsav: Tulajdonságok és hatásmechanizmus. Skin Pharmacol. Physiol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS A bőr melaninos hiperpigmentációja: melasma, helyi kezelés azelainsavval és egyéb terápiák. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. Usuki, A.; Ohashi, A.; Sato, H.; Ochiai, Y.; Ichihashi, M.; Funasaka, Y. A glikolsav és a tejsav gátló hatása a melanin szintézisére melanoma sejtekben. Exp. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; Jin, B.; Kelly, JM Tejsav előállítása megújuló anyagokból Rhizopus gombák által. Biochem. Eng. J. 2007, 35, 251–263. [CrossRef]

153. Liu, X.; Liu, F.; Liu, S.; Li, H.; Ling, P.; Zhu, X. A Bacillus subtilisből származó poli-gamma-glutamát gátolja a tirozináz aktivitást és a melanogenezist. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2013, 97, 9801–9809. [CrossRef]

154. Mohorˇciˇc, M.; Friedrich, J.; Renimel, I.; André, P.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Gomba eredetű melanin fehérítő enzim előállítása és kozmetikai alkalmazása. Biotechnol. Biofolyamat. Eng. 2007, 12, 200–206. [CrossRef]

155. Antonopoulou, I.; Varriale, S.; Topakas, E.; Rova, U.; Christakopoulos, P.; Faraco, V. Bioaktív vegyületek enzimatikus szintézise nagy potenciállal kozmetikai alkalmazásra. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2016, 100, 6519–6543. [CrossRef]

156. Sugimoto, K.; Nomura, K.; Nishimura, T.; Kiso, T.; Sugimoto, K.; Kuriki, T. Alfa-arbutin-alfa-glikozidok szintézise és humán tirozinázra gyakorolt ​​gátló hatásaik. J. Biosci. Bioeng. 2005, 99, 272–276. [CrossRef]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipid biosurfactants – a globális piac múltja, jelene és jövője. Elülső. Microbiol. 2014. [CrossRef]

158. Marchant, R.; Banat, IM Biosurfactants: fenntartható helyettesítő kémiai felületaktív anyagok? Biotechnol. Lett. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Rhamnose lipidek-bioszintézis, mikrobiális termelés és alkalmazási potenciál. Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999, 51, 22–32. [CrossRef]

160. Haba, E.; Pinazo, A.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; Infante, MR; Manresa, A. Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044 által termelt ramnolipidek fizikai-kémiai jellemzése és antimikrobiális tulajdonságai. Biotechnol. Bioeng. 2003, 81, 316–322. [CrossRef]

161. Piljac, G.; Piljac, T. Ramnolipidek alkalmazása sebgyógyulásban, égési sokk, érelmeszesedés, szervátültetések, depresszió, skizofrénia és kozmetikumok kezelésében. US7262171B1 US szabadalom. 2000.

162. Tuli, HS; Chaudhary, P.; Beniwal, V.; Sharma, AK Mikrobiális pigmentek, mint természetes színforrások: jelenlegi trendek és jövőbeli kilátások. J. Food Sci. Tech. 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. Caro, Y.; Venkatachalam, M.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. Pigmentek és színezőanyagok fonalas gombákból. Gombás Metab. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, LH; Santos, C.; Galvão, LR; Cardoso, PG Pigmentek előállítása és kémiai jellemzése fonalas gombákban. Mikrobiológia 2016, 162, 12–22.

165. Rao, N.; Prabhu, M.; Xiao, M.; Li, WJ Gombás és bakteriális pigmentek: Széles körben alkalmazható másodlagos metabolitok. Elülső. Microbiol. 2017. [CrossRef]

166. Kuddus, M.; Singh, P.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. A C-phycocyanin előállításának és biotechnológiai alkalmazásainak legújabb fejlesztései. Biomed. Res. Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, M. Microalgae Nutraceuticals. Foods 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Heterotróf, nagy sejtsűrűségű Galdieria sulphuraria betáplált szakaszos és folyamatos társtenyészetei és fikocianin termelése. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007, 77, 69–75. [CrossRef]

169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. Illat- és ízvegyületek mikrobiális előállítása. Curr. Opin. Chem. Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. Longo, MA; Sanromán, MA Élelmiszer-aromavegyületek előállítása: mikrobiális és enzimatikus módszertan. Food Technol. Biotechnol. 2006, 44, 335–353.

171. Kempf, B.; Bremer, E. Kompatibilis oldott anyagok felvétele és szintézise, ​​mint mikrobiális stresszreakciók nagy ozmolalitású környezetekre. Boltív. Microbiol. 1998, 170, 319–330. [CrossRef]

172. Soccol, CR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Gombák, élesztőgombák és baktériumok által termelt ízvegyületek. Handb. Food Prod. Gyárt. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Bioízek és illatanyagok gombákon és enzimeiken keresztül. Gombás búvárok. 2003, 13, 153–166.

174. Carrau, F.; Boido, E.; Dellacassa, E. Yeast Diversity, and Flavor Compounds. A gombás metabolitokban; Mérillon, JM, Ramawat, K., szerk.; Springer International Publishing: Cham, Svájc, 2016; 1–29.

175. Priefert, H.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Vanillin biotechnológiai előállítása. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001, 56, 296–314. [CrossRef]

176. Kunjapur, AM; Tarasova, Y.; Prather, KLJ Aromás aldehidek szintézise és felhalmozódása egy módosított Escherichia coli törzsben. J. Am. Chem. Soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; Batth, TS; Adams, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ. Az Escherichia coli metabolikus tervezése limonén és perillil-alkohol előállítására. Metab. Eng. 2013, 19, 33–41. [CrossRef]

178. Okino, T.; Qi, S.; Matsuda, H.; Murakami, M.; Yamaguchi, K. Nostopeptins A és B, elasztáz inhibitorok a Nostoc minutum cianobaktériumból. J. Nat. Prod. 1997, 60, 158–161. [CrossRef]

179. Georgousaki, K.; DePedro, N.; Csincsilla, A.; Aliagiannis, N.; Vicente, F.; de Castro, P.; Fotinos, S.; Genilloud, O.; Fokialakis, N. A mikrobiális biológiai sokféleség nagy áteresztőképességű szűrése új kozmetikai szerek felfedezésére. Panta Med. 2015. [CrossRef]

180. Georgousaki, K.; Tsafantakis, N.; Cheilari, A.; Gumeni, S.; González, I.; González, V.; José, RT; Genilloud, O.; Fotinos, S.; Trougakos, I.; et al. Új kozmetikai szerek felfedezése a spanyol biodiverzitás endofita mikroorganizmusaiból. Planta Med. 2017. [CrossRef]

181. Sykiotis, háziorvos; Bohmann, D. Stressz által aktivált cap'n'collar transzkripciós faktorok öregedésben és emberi betegségekben. Sci. Jel. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. Wedel, S.; Manola, M.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. A fehérjeminőség-ellenőrzési mechanizmusok természetes termékekkel történő megcélzása az egészséges öregedés elősegítése érdekében. Molecules 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostasis és az öregedő proteom az egészségben és a betegségekben. J. Gerontol. A Biol. Sci. Med. Sci. 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. Huang, L.; Chen, CH Proteaszóma szabályozók: aktivátorok és inhibitorok. Curr. Med. Chem. 2009, 16, 931–939. [CrossRef]

185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, M.; Stien, D. Betulinsav, az első csillagfürt-típusú triterpenoid, amelyet mind a Phomopsis sp. és tápnövénye Diospyros carbonara Benoist. Chem. Biológiai búvárok. 2017. [CrossRef] [PubMed]

További információ: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501